脂肪酶SMG1-F278N的固定化及其催化合成丙二醇油酸单酯的应用研究

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丙二醇脂肪酸单酯(PGME)是良好的油包水型乳化剂,在食品、医药及化妆品领域具有良好的应用前景。脂肪酶经固定化之后,酶的热稳定性、操作稳定性及重复利用性等会得到改善。目前,国内外关于酶法合成不饱和脂肪酸甘油单酯已有深入研究,然而对酶法合成不饱和PGME研究很少,且无溶剂体系下酶法合成的PGME纯度偏低,产物颜色深,不利于制备高质量产品。目前关于采用偏甘油酯脂肪酶合成PGME的研究还未见报道。因此,本文对偏甘油酯脂肪酶SMG1几种突变体进行筛选,研究酯化活力最高的脂肪酶SMG1突变体SMG1-F278N的固定化及该固定化酶的性质,并将其应用于合成丙二醇油酸单酯的研究,以获得高含量和高纯度的丙二醇油酸单酯,为其合成提供理论依据。主要研究结果如下:1.脂肪酶SMG1-F278N的固定化研究。脂肪酶SMG1各突变体中酯化活力最高的是脂肪酶SMG1-F278N,其酯化活力是脂肪酶SMG1野生型的3倍。最佳固定化条件为:固定化载体为环氧树脂ECR8285,缓冲液初始pH=6.0,缓冲液离子强度为1.5M,酶与载体比为20mg/g,固定化时间为2h。在此条件下获得的固定化酶SMG1-F278N的蛋白吸附量为44.62mg/g,酯化活力为466.96U/g,比酶活为10.47U/mg。2.固定化酶SMG1-F278N的酶学性质及其表征。固定化酶SMG1-F278N电镜扫描和红外结果表明,游离酶SMG1-F278N被成功地固定在环氧树脂ECR8285上。固定化酶SMG1-F278N与游离酶相比,其pH和温度适宜范围均变宽;热稳定性增强;固定化酶具有更好的重复利用性,经过7次循环(固定化酶SMG1-F278N催化的第一次酯化反应定义为第一次循环)后,保留其最初活力的98%。3.固定化酶SMG1-F278N催化合成丙二醇油酸单酯的应用研究。相比1,2-丙二醇,固定化酶SMG1-F278N对1,3-丙二醇的选择性优于1,2-丙二醇。采用分子对接辅助分析其原因,结果显示1,3-丙二醇与酶活性中心的Ser171会发生相互作用,同时与Asn278存在氢键相互作用,而1,2-丙二醇与活性中心的Ser171距离较远,不利于其催化反应。最佳合成条件为:1,3-丙二醇与油酸摩尔比为5:1,反应温度为30oC,酶添加量为7.5%,水添加量为7%。在此条件下反应12h后,1,3-丙二醇油酸单酯产量达到70%,纯度达到84.67%。
摘要第5-6页
abstract第6-7页
第一章 绪论第11-20页
    1.1 丙二醇脂肪酸单酯第11-12页
        1.1.1 丙二醇脂肪酸单酯的性质第11页
        1.1.2 丙二醇脂肪酸单酯的合成第11-12页
    1.2 偏甘油酯脂肪酶第12-15页
        1.2.1 偏甘油酯脂肪酶的来源第12-13页
        1.2.2 偏甘油酯脂肪酶的盖子结构和底物选择性第13-15页
        1.2.3 偏甘油酯脂肪酶的应用第15页
    1.3 固定化酶第15-17页
        1.3.1 固定化载体第15-16页
        1.3.2 固定化技术第16-17页
    1.4 本课题研究意义和研究内容第17-20页
        1.4.1 研究意义第17-18页
        1.4.2 研究内容第18-20页
第二章 脂肪酶SMG1-F278N的固定化研究第20-34页
    2.1 材料与仪器第20-22页
        2.1.1 主要材料与试剂第20-21页
        2.1.2 主要仪器和设备第21-22页
    2.2 实验方法第22-26页
        2.2.1 脂肪酶SMG1突变体酯化活力的测定第22页
        2.2.2 树脂的预处理第22页
        2.2.3 固定化脂肪酶SMG1-F278N的制备第22-23页
        2.2.4 固定化条件优化第23-24页
        2.2.5 蛋白吸附量的测定第24-25页
        2.2.6 固定化脂肪酶SMG1-F278N酯化活力的测定第25-26页
        2.2.7 固定化脂肪酶SMG1-F278N水分含量的测定第26页
    2.3 结果与讨论第26-32页
        2.3.1 脂肪酶SMG1突变体酯化活力的比较第26-27页
        2.3.2 固定化条件优化第27-32页
    2.4 本章小结第32-34页
第三章 固定化酶SMG1-F278N的酶学性质及其表征第34-47页
    3.1 材料与仪器第34-35页
        3.1.1 主要材料与试剂第34-35页
        3.1.2 主要仪器和设备第35页
    3.2 实验方法第35-39页
        3.2.1 固定化酶SMG1-F278N的表征第35-36页
        3.2.2 游离酶和固定化酶SMG1-F278N水解酶活的测定第36-37页
        3.2.3 固定化酶SMG1-F278N的酶学性质第37-39页
    3.3 结果与讨论第39-46页
        3.3.1 固定化酶SMG1-F278N的表征第39-40页
        3.3.2 固定化酶SMG1-F278N的酶学性质第40-46页
    3.4 本章小结第46-47页
第四章 固定化酶SMG1-F278N催化合成丙二醇油酸单酯的应用研究第47-59页
    4.1 材料与仪器第47-48页
        4.1.1 主要材料与试剂第47-48页
        4.1.2 主要仪器和设备第48页
    4.2 实验方法第48-51页
        4.2.1 固定化酶SMG1-F278N的底物选择性第48-49页
        4.2.2 分子对接第49页
        4.2.3 固定化酶SMG1-F278N催化合成 1,3-丙二醇油酸单酯的工艺优化第49-50页
        4.2.4 HPLC分析第50-51页
    4.3 结果与讨论第51-57页
        4.3.1 固定化酶SMG1-F278N的底物选择性第51-52页
        4.3.2 分子对接第52-53页
        4.3.3 固定化酶SMG1-F278N催化合成 1,3-丙二醇油酸单酯的工艺优化第53-57页
    4.4 本章小结第57-59页
结论与展望第59-62页
    结论第59-61页
    展望第61-62页
参考文献第62-69页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第69-70页
致谢第70-71页
附件第71页
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