枯草芽孢杆菌E1R-j产抗菌脂肽的发酵条件优化及分离纯化

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枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)能够产生多种抗菌物质,包括脂肽类、肽类、磷脂类、多烯类、氨基酸类和核酸类等多种化合物,这些抗菌物质能抑制真菌、细菌、病毒和菌原体等的正常生长,在植物病害防治方面具有重要的应用价值。而防治植物病害的主要活性物质是脂肽类化合物,但由于其产量不高使其应用受到限制。本研究利用一株分离自小麦根部的内生枯草芽孢杆菌E1R-j,前期试验发现,其无菌发酵滤液对小麦全蚀菌、苹果腐烂菌、小麦赤霉菌、番茄早疫菌等均具有很好的抑制作用,同时也对小麦全蚀菌具有很好的大田防治效果,为了使该菌株在生产实践中得到推广和工业化应用,本研究利用单因素和响应面法相结合的方法,以粗脂肽物质的产量为指标,对其发酵条件进行优化,同时通过质谱鉴定进一步明确具有抑菌活性物质的分子量大小。得到以下结果:1.通过优化过程中的单因素试验结果表明,温度、培养基初始pH、接种量、装液量和转速对枯草芽孢杆菌E1R-j在Landy培养基中的脂肽类物质产量均有显著影响。在单因素筛选出的因素及水平的基础上,利用响应面法确定其最佳发酵条件为:温度40℃,培养基初始pH9.0,接种量3.0%,装液量50mL,转速200rpm。在优化后的发酵条件下培养,粗脂肽物质浓度达1.39g/L,是原发酵条件下0.55g/L的2倍多,极大的提高了粗脂肽物质的产量。2.脂肽物质纯化后共得到四个组分P1、P2、P3和P-4,它们的抑菌活性大小和抑菌谱各不相同,其中P1对小麦全蚀菌和番茄早疫菌有较好的抑制效果,P2只对小麦全蚀菌有较好的抑制效果,二者的抑菌活性均小于P3;P3的抑菌活性最大,且对供试的小麦全蚀菌、苹果腐烂菌、番茄灰霉菌和番茄早疫菌都有很好的抑制效果;P4只对小麦全蚀菌和番茄早疫菌有微弱的抑制效果。3.通过MODI-TOF-TOF/MS质谱鉴定,P1物质组分复杂,未得到有效纯化;P2分子量为915.5576Da;P3是分子量分别为1477.846Da,1491.898Da,1505.960Da和1513.964Da,1527.992Da的两组同系物;P4是分子量为901.6007Da,915.6376Da和902.5656Da,916.5887Da的两组同系物。4.以小麦全蚀菌为靶标菌,研究表明P3在80℃121℃的高温处理后与25℃下的抑菌效果无显著差异,其对温度不敏感;P3对蛋白酶K具有稳定性并且能在不同的有机溶剂甲醇、乙腈、丙酮中均保持活性,但在甲醇中的活性最高。
摘要第6-7页
ABSTRACT第7-8页
第一章 文献综述第11-22页
    1.1 枯草芽孢杆菌的研究概况第11-15页
        1.1.1 枯草芽孢杆菌的生物学特性第11页
        1.1.2 枯草芽孢杆菌生物防治作用的研究进展第11-12页
        1.1.3 枯草芽孢杆菌防治植物病害的应用状况第12-13页
        1.1.4 枯草芽孢杆菌的抗菌机理第13-15页
    1.2 脂肽物质的研究进展第15-20页
        1.2.1 脂肽物质的产生菌株第15-16页
        1.2.2 脂肽物质的种类及结构第16-19页
        1.2.3 脂肽物质的抗菌机理第19-20页
        1.2.4 脂肽物质的合成调控机理第20页
    1.3 本研究的目的意义第20-22页
第二章 E1R-j 菌株产抗菌脂肽类物质发酵条件的优化第22-33页
    2.1 引言第22页
    2.2 试验材料第22页
        2.2.1 供试菌株第22页
        2.2.2 培养基第22页
        2.2.3 主要仪器第22页
    2.3 试验方法第22-24页
        2.3.1 菌种活化第23页
        2.3.2 种子液的制备及其生长曲线的测定第23页
        2.3.3 发酵上清液的制备第23页
        2.3.4 粗脂肽物质的提取第23页
        2.3.5 脂肽浓度的测定第23页
        2.3.6 试验设计第23-24页
        2.3.7 分析方法第24页
    2.4 结果与分析第24-31页
        2.4.1 种子液生长曲线的测定结果第24页
        2.4.2 单因素试验第24-26页
        2.4.3 响应面优化试验第26-31页
    2.5 结论与讨论第31-33页
        2.5.1 结论第31页
        2.5.2 讨论第31-33页
第三章 抗菌脂肽物质的分离纯化第33-42页
    3.1 引言第33页
    3.2 试验材料第33页
        3.2.1 供试菌株第33页
        3.2.2 主要仪器及试剂第33页
    3.3 试验方法第33-35页
        3.3.1 脂肽物质的提取第33-34页
        3.3.2 脂肽物质的分离纯化第34页
        3.3.3 纯化组分的抑菌活性测定第34页
        3.3.4 抗菌活性物质的分子量测定第34页
        3.3.5 抗菌活性物质理化性质的测定第34-35页
    3.4 结果与分析第35-40页
        3.4.1 脂肽物质的分离纯化第35页
        3.4.2 纯化组分的抑菌活性测定第35-37页
        3.4.3 抗菌活性物质的分子量及其结构测定第37-38页
        3.4.4 抗菌活性物质理化性质的测定第38-40页
    3.5 结论与讨论第40-42页
        3.5.1 结论第40页
        3.5.2 讨论第40-42页
参考文献第42-47页
附录第47-49页
致谢第49-50页
作者简介第50页
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