低温条件下小麦返白系中叶绿体果糖1,6-二磷酸醛缩酶的初步研究

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小麦返白系是在研究冬小麦矮变1号时发现的叶片白化自然突变体,对低温敏感,在冬春季节表现叶片白化现象,是一个能够稳定遗传的特殊遗传材料。目前,已从遗传学、生理生化、叶绿体发育、细胞学等方面对小麦返白系进行了较全面深入的研究,取得了大量重要结果。本研究依据前期侯典云博士等对低温条件下的返白系与亲本矮变1号叶片叶绿体蛋白质组研究结果,选取表达量有差异的叶绿体果糖-1,6-二磷酸醛缩酶(CpFBA)作为研究对象,该酶在低温胁迫下返白系中的表达量明显低于对照材料。果糖-1,6-二磷酸醛缩酶是Calvin循环的重要限速酶之一,参与叶绿体的碳,氮代谢。盐胁迫下,转基因烟草、盐藻和鱼腥藻的光合速率及活性明显提高。本文通过叶绿体果糖-1,6-二磷酸醛缩酶基因序列比对,酶活性测定,实时定量检测、瞬时表达载体转化原生质体等,初步研究小麦叶绿体果糖-1,6-二磷酸醛缩酶编码基因的分子特征和低温条件下的表达模式,并着重研究对低温敏感的返白系中酶的表达特异性。试验主要得到以下结果:1、我们克隆到了返白系与矮变1号的叶绿体果糖-1,6-二磷酸醛缩酶基因组DNA和cDNA,从基因序列比对来看,这两个材料的CpFBA的基因序列基本一致,与已公布的CpFBA基因(Genebank accession No. FJ625793)相比,编码多肽有三个位点的氨基酸残基存在差异。2、室温下,返白系与矮变1号叶绿体果糖-1,6-二磷酸醛缩酶活性差异不大。低温处理后,酶活性发生明显变化,而且两个材料活性变化趋势存在差异:矮变1号的酶活性呈“升高-降低-升高”的周期性变化,而返白系在低温处理第4天时CpFBA酶活性升至最高,之后酶活性逐渐降低。3、我们初步建立了植物原生质体转化体系,并将小麦返白系叶绿体果糖-1,6-二磷酸醛缩酶+eGFP融合基因的瞬时表达载体转入韭菜原生质体,观察到了eGFP在细胞质中的表达。4、荧光实时定量PCR检测CpFBA基因在常温和低温条件下的变化趋势,结果显示:在常温下,两个材料基因的表达量相差不大,矮变1号醛缩酶表达量较高。低温处理后的第4天,返白系中的基因表达量显著降低,矮变1号的表达量升高,高于小麦返白系。在随后持续处理的时间中,矮变1号基因的表达量持续低于常温条件,基本稳定;而返白系中在低温处理第4天之后基因表达量开始逐渐增加,在低温处理第34天,也即处理一个月后表达量出现最高值,与低温处理后第4天矮变1号的表达量相当。
摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
第一章 文献综述第11-22页
    前言第11页
    1.1 果糖-1,6-二磷酸醛缩酶第11-15页
        1.1.1 果糖-1,6-二磷酸醛缩酶生物学特性第11-12页
        1.1.2 果糖-1,6-二磷酸醛缩酶在碳固定反应中的地位第12-13页
        1.1.3 植物中FBA 的研究进展第13-14页
        1.1.4 FBA 在小麦返白系中的研究状况第14-15页
    1.2 实时定量PCR 技术及其应用第15-17页
        1.2.1 实时定量PCR 技术的原理第15-16页
        1.2.2 实时定量PCR(RQ-PCR)技术的应用第16-17页
    1.3 植物原生质体瞬时表达技术研究进展第17-18页
        1.3.1 瞬时表达技术及其研究意义第17页
        1.3.2 原生质体的转化方法第17-18页
    1.4 小麦wcs120 基因及启动子研究现况第18-20页
        1.4.1 wcs120 基因第18-19页
        1.4.2 wcs120 启动子的结构特征第19-20页
        1.4.3 wcs120 启动子的研究状况第20页
    1.5 本研究的目的与意义第20-21页
    1.6 本文的研究技术路线第21-22页
第二章 小麦返白系叶绿体FBA 基因的克隆第22-29页
    2.1 材料与方法第22-24页
        2.1.1 实验材料第22页
        2.1.2 仪器与试剂第22页
        2.1.3 方法第22-24页
    2.2 结果与分析第24-29页
        2.2.1 cDNA 克隆与序列分析第24-26页
        2.2.2 基因组的克隆与序列比较第26-29页
第三章 低温条件下小麦返白系和矮变1 号FBA 活性变化第29-36页
    3.1 材料与方法第29-33页
        3.1.1 实验材料第29页
        3.1.2 主要仪器和试剂第29-30页
        3.1.3 实验方法第30-33页
    3.2 结果与分析第33-36页
        3.2.1 连续循环反应光谱法检测FBA 酶活性的结果第33-34页
        3.2.2 用谢里万诺夫法测定CpFBA第34页
        3.2.3 低温条件下小麦中CpFBA 的酶活性变化第34-36页
第四章 FBA 瞬时表达载体的构建与转化第36-45页
    4.1 材料与方法第36-42页
        4.1.1 实验材料第36页
        4.1.2 仪器与试剂第36-37页
        4.1.3 方法第37-42页
    4.2 结果与分析第42-45页
        4.2.1 连接结果验证第42页
        4.2.2 小麦和韭菜原生质体的制备效果第42-43页
        4.2.3 韭菜原生质体的转化结果第43-45页
第五章 低温下小麦返白系和矮变1 号CpFBA 的基因表达差异第45-49页
    5.1 材料与方法第45-46页
        5.1.1 实验材料第45页
        5.1.2 耗材与仪器第45页
        5.1.3 方法第45-46页
    5.2 实时定量结果与分析第46-49页
第六章 低温诱导启动子WCS120 的克隆第49-52页
    6.1 材料与方法第49-50页
        6.1.1 实验材料第49页
        6.1.2 主要试剂第49页
        6.1.3 方法第49-50页
    6.2 结果与分析第50-52页
第七章 讨论与结论第52-54页
    7.1 讨论第52-53页
        7.1.1 关于FBA 酶活性的测定第52页
        7.1.2 关于FBA 在逆境条件下的表现与功能第52页
        7.1.3 返白系中的CpFBA第52-53页
    7.2 结论第53页
    7.3 创新点第53-54页
参考文献第54-59页
致谢第59-60页
作者简介第60页
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