栉孔扇贝(Chlamys farreri)BAC未端序列中SSR和SNP分子标记的开发及初步应用研究

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栉孔扇贝(Chlamys farreri)是我国重要的经济养殖贝类,具有抗逆及快速生长性状群体的选育是栉孔扇贝养殖业得以持续发展的基础。目前迅速发展的分子标记辅助育种技术为优良品种的快速选育提供了有力支撑。本研究以栉孔扇贝为主要研究材料,探讨研究了栉孔扇贝BAC末端序列中SSR和SNP分子标记的开发检测及初步应用。利用本实验室所构建的栉孔扇贝两个BAC文库,随机挑取10,237个BAC克隆进行末端测序并对得到的序列进行生物信息学分析。得到的BAC末端序列(BAC-ended sequences, BESs)经base-calling,去除载体序列、大肠杆菌E. coli基因组等污染序列后,共得到17,447条BESs(cut-off value=Q20),平均读长为446bp,测序总长度为7,773,272bp,可覆盖0.63%栉孔扇贝基因组序列。其中14,628条BESs(83.84%)是7,314个BAC克隆双末端均测序成功的结果。分析显示,栉孔扇贝基因组中(A+T)含量为63.45%,(G+C)含量为36.55%,AT含量明显高于GC含量,可见栉孔扇贝基因组序列中AT分布丰富。经Tandemrepeats finder软件分析显示,8,550条BESs含有串联重复序列,占测得序列的49.0%,其中含有的串联重复序列共计17,785个。重复单元为1-6bp的简单重复序列(SSR序列),≥12bp重复中,以六核苷酸重复为主,五、四核苷酸重复次之,三核苷酸重复最少。经RepeatMasker软件分析,发现了大量的反转录重复元件,其中LTR/Gypsy和LINE/CR1最为丰富,占整个基因组序列的1.87%和1.22%。将栉孔扇贝BESs与Nr、Nt及EST数据库进行blast比对,分别有2,083、1,375和1,901条BESs序列与相应的数据库比对上,其中446(2.56%)条比对上栉孔扇贝相关基因序列。与已完成基因组测序的10种无脊椎动物,以及2种脊椎动物的比较基因组学分析中发现,栉孔扇贝可能与紫色球海胆(Strongylocentrotus purpuratus)亲缘关系最近。利用栉孔扇贝BESs进行了微卫星标记的开发,选择其中14个微卫星标记对大连和青岛两个地理群体进行遗传多样性研究,分析其遗传结构和分化水平。14个基因座在两群体中的平均等位基因数Na分别为18.9286和26.2143,平均有效等位基因数Ne为11.7505和17.0891,平均观察杂合度Ho为0.5100和0.4204,平均期望杂合度He为0.9156和0.9450,多态信息含量PIC分别为0.8940和0.9302,群体遗传多样性水平较高。两群体间的无偏遗传相似性系数为0.4879,遗传距离为0.7177,平均基因分化指数Fst为0.0243,基因流Nm为10.0179,显示群体间遗传分化程度较弱,遗传变异主要来自于群体内个体之间,经Hardy-Weinberg平衡检验,两群体普遍存在杂合子缺失现象。本研究表明,所开发的BES-SSR是高度多态位点,用于群体遗传多样性分析效果很好,显示BES是微卫星标记开发和应用的重要资源。基于栉孔扇贝BESs及本实验室所保存的2005年作图亲本DNA,分别采用PCR扩增后直接测序和基因组测序比对两种策略进行SNP分子标记的开发及检测。第一种策略是根据栉孔扇贝BESs利用BatchPrimer3.0批量设计引物,共合成PCR引物370对,其中260对引物能够在亲本中有效扩增,扩增效率为70.27%。将亲本的PCR扩增产物分别测序,得到的序列利用Sequencer5.0Demo软件进行比对,共开发出候选SNP位点342个,分布在112个BAC克隆上。其中符合拟测交策略的SNP有154个,分布在76个BAC克隆上。利用该方法也开发出19个Indel标记,分布在13个BAC克隆上。这些SNP及Indel标记经分型及连锁分析后可用于遗传图谱的构建。第二种策略是通过基因组高通量测序,获得亲本各约10倍覆盖的Solexa100bpPE测序数据,利用ssahaSNP软件进行SNP的筛选,其中比对的参考序列是栉孔扇贝17,447条BESs。设置参数match、identity和map值分别为80、92和2时,得到候选SNP位点222,182个,候选Indel位点41,250个;当这些参数值分别提高到90、95和5时,显示得到53,398个候选SNP位点,7,092个候选Indel位点。为验证这些SNP,选择32个SNP位点设计引物进行验证,32个位点扩增效率为84.38%,测序成功率为77.78%,在可分析数据中验证SNP正确率为76.19%,其中可用于遗传作图的SNP比例为56.25%。研究结果初步证实以BESs为参考序列通过基因组测序后大规模比对筛选SNP的策略是可行的,是进行大规模SNP开发以及构建高密度遗传连锁图谱的重要途径。分别采用TP-M13荧光检测技术和MALDI-LOF质谱法对栉孔扇贝BAC末端SSR和SNP分子标记进行分型,成功得到12个SSR和39个SNP的分型结果。利用这些标记以及本实验室已发表的AFLP标记,成功构建了雌雄两张遗传连锁图谱;雌性连锁群有149个标记,其中含16个SNP和4个SSR;雄性连锁图有201个标记,其中含21个SNP和3个SSR。雌雄两连锁群中分别有18和22个标记与物理图谱的contigs对应上,初步实现了物理图谱与遗传图谱的整合。
致谢第4-6页
中文摘要第6-9页
ABSTRACT第9-11页
目录第13-18页
引言第18-21页
第一章 文献综述第21-45页
    第一节 BAC 末端测序及末端序列分析第21-28页
        1.1.1 BAC 末端序列概述第21-22页
            1.1.1.1 BAC 末端序列的产生第21-22页
            1.1.1.2 BAC 末端序列的预处理第22页
        1.1.2 BAC 末端序列分析第22-24页
            1.1.2.1 GC 含量分析第22页
            1.1.2.2 串联重复序列分析第22页
            1.1.2.3 重复单元结构分析第22-23页
            1.1.2.4 蛋白编码序列鉴定和功能注释第23页
            1.1.2.5 比较基因组学分析第23-24页
        1.1.3 BAC 末端序列的应用和意义第24-28页
            1.1.3.1 基因组调查(Genome Survey)第24页
            1.1.3.2 基因发现(gene discovery )第24-25页
            1.1.3.3 基因定位(gene mapping)第25页
            1.1.3.4 分子标记开发第25-26页
            1.1.3.5 图谱整合(map integration)第26页
            1.1.3.6 基因组共线性第26-27页
            1.1.3.7 辅助全基因组序列组装第27-28页
    第二节 微卫星 DNA 的开发与应用第28-35页
        1.2.1 微卫星 DNA 概述第28-29页
        1.2.2 微卫星标记的优点与不足第29-31页
        1.2.3 微卫星标记的开发方法第31-33页
            1.2.3.1 直接文库筛选法第31页
            1.2.3.2 富集法第31-32页
            1.2.3.3 种间转移扩增法第32页
            1.2.3.4 生物信息学方法第32-33页
        1.2.4 微卫星标记在水产动物群体遗传学研究中的应用第33-35页
            1.2.4.1 物种遗传多样性研究第33-34页
            1.2.4.2 群体遗传结构分析第34页
            1.2.4.3 亲缘关系鉴定和系谱分析第34-35页
    第三节 SNP 标记的开发、分型及应用第35-43页
        1.3.1 SNP 标记的概述第35-36页
        1.3.2 SNP 标记的优点与不足第36-37页
        1.3.3 SNP 标记的开发策略第37-40页
            1.3.3.1 直接测序开发 SNP 标记第37-38页
            1.3.3.2 基于 EST 数据库开发 SNP 标记第38-39页
            1.3.3.3 基于基因组数据库开发 SNP 标记第39-40页
        1.3.4 SNP 标记的分型策略第40-43页
            1.3.4.1 基于聚合酶链式反应(PCR)的 SNP 分型方法第40-41页
                1.3.4.1.1 等位基因特异性 PCR(allele-specific PCR. AS-PCR)第40-41页
                1.3.4.1.2 高分辨率熔解曲线(High Resolution Melting, HRM)第41页
            1.3.4.2 基于引物延伸的飞行时间质谱(MALDI-TOF)SNP 分型方法第41-42页
            1.3.4.3 基于杂交的 SNP 分型方法第42-43页
                1.3.4.3.1 TaqMan 探针技术第42页
                1.3.4.3.2 DNA 芯片(DNA Chips)技术第42-43页
            1.3.4.4 基于测序技术的 SNP 分型方法第43页
    第四节 本章小结第43-45页
第二章 栉孔扇贝 BAC 末端测序及末端序列分析第45-60页
    第一节 前言第45页
    第二节 材料与方法第45-50页
        2.2.1 实验材料与设备第45-47页
            2.2.1.1 栉孔扇贝 BAC 文库第45页
            2.2.1.2 栉孔扇贝 BAC 末端测序所采用的引物第45-46页
            2.2.1.3 主要实验试剂第46页
            2.2.1.4 主要实验仪器第46-47页
        2.2.2 实验方法第47-50页
            2.2.2.1 栉孔扇贝 BAC 克隆的挑取与培养第47页
            2.2.2.2 栉孔扇贝 BAC 质粒 DNA 的提取第47-48页
            2.2.2.3 栉孔扇贝细菌人工染色体 BAC 末端测序第48-49页
                2.2.2.3.1 测序 PCR第48页
                2.2.2.3.2 PCR 产物纯化第48-49页
            2.2.2.4 栉孔扇贝 BAC 末端测序数据分析第49页
            2.2.2.5 栉孔扇贝 BAC 末端序列初步分析第49-50页
    第三节 实验结果与分析第50-59页
        2.3.1 栉孔扇贝 BES 概述第50-52页
        2.3.2 栉孔扇贝 BESs 中串联重复序列(tandem repeats sequences)分析第52-54页
        2.3.3 栉孔扇贝 BESs 中散在重复序列和低复杂度 DNA 序列分析第54-55页
        2.3.4 栉孔扇贝 BESs 注释第55-57页
        2.3.5 栉孔扇贝 BESs 与其他基因组序列的比较分析第57-59页
    第四节 讨论第59-60页
第三章 栉孔扇贝 BAC 末端 SSR 的开发及遗传多样性研究第60-76页
    第一节 前言第60-61页
    第二节 实验材料与方法第61-68页
        3.2.1 实验材料与设备第61-63页
            3.2.1.1 序列来源第61页
            3.2.1.2 实验材料第61页
            3.2.1.3 实验主要试剂第61-62页
            3.2.1.4 实验主要仪器设备第62-63页
        3.2.2 实验方法第63-68页
            3.2.2.1 栉孔扇贝基因组 DNA 的提取第63-64页
            3.2.2.2 栉孔扇贝基因组 DNA 的扩增第64-65页
            3.2.2.3 栉孔扇贝 BES-SSR 引物的设计和筛选第65页
            3.2.2.4 PCR 扩增检测引物的有效性第65-66页
            3.2.2.5 栉孔扇贝 BES-SSR 的多态性检测第66-67页
            3.2.2.6 栉孔扇贝遗传多样性研究第67-68页
    第三节 实验结果与分析第68-73页
        3.3.1 栉孔扇贝 BES-SSR 引物的设计和筛选第68页
        3.3.2 引物的有效性检测第68页
        3.3.3 栉孔扇贝 BES-SSR 多态性检测第68-70页
        3.3.4 栉孔扇贝大连群体与青岛群体遗传多样性分析第70-72页
        3.3.5 栉孔扇贝大连群体和青岛群体遗传结构和遗传分化分析第72-73页
    第四节 讨论第73-76页
        3.4.1 栉孔扇贝 SSR 的开发第73-74页
        3.4.2 群体遗传多样性和遗传分化第74-76页
第四章 栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 标记的开发与验证第76-90页
    第一节 前言第76-77页
    第二节 PCR 直接测序开发栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 标记第77-81页
        4.2.1 实验材料第77页
        4.2.2 实验方法第77-79页
            4.2.2.1 栉孔扇贝 BAC 末端测序及数据处理第77页
            4.2.2.2 栉孔扇贝作图亲本 DNA 的扩增第77页
            4.2.2.3 栉孔扇贝批量引物设计第77-78页
            4.2.2.4 PCR 扩增第78页
            4.2.2.5 PCR 产物测序及候选 SNP 开发第78-79页
        4.2.3 实验结果第79-81页
    第三节 基因组测序开发栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 标记第81-86页
        4.3.1 实验材料第81页
        4.3.2 实验方法第81-84页
            4.3.2.1 栉孔扇贝 BAC 测序及数据处理第81页
            4.3.2.2 栉孔扇贝作图亲本 DNA 的扩增第81页
            4.3.2.3 栉孔扇贝亲本 Jd 和 Cg 基因组测序第81-82页
            4.3.2.4 栉孔扇贝 BAC 末端候选 SNP 标记的筛查第82-84页
        4.3.3 实验结果第84-86页
            4.3.3.1 栉孔扇贝亲本 Jd 和 Cg 基因组测序结果第84页
            4.3.3.2 栉孔扇贝 BAC 末端候选 SNP 标记的筛查第84-86页
    第四节 讨论第86-90页
        4.4.1 PCR 直接测序法开发栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 标记第87页
        4.4.2 基因组测序开发栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 标记第87-89页
        4.4.3 基因组测序开发栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 标记的应用前景第89-90页
第五章 栉孔扇贝物理图谱与遗传图谱的初步整合第90-104页
    第一节 前言第90-91页
    第二节 TP-M13 自动荧光技术检测栉孔扇贝 BAC 末端 SSR 基因型第91-93页
        5.2.1 实验材料第91页
        5.2.2 实验方法第91-92页
            5.2.2.1 SSR 引物合成第91页
            5.2.2.2 PCR 扩增第91-92页
            5.2.2.3 自动荧光检测第92页
        5.2.3 实验结果第92-93页
    第三节 栉孔扇贝 BAC 末端 SNP 基因分型第93-96页
        5.3.1 实验材料与仪器第93页
        5.3.2 实验方法第93-96页
            5.3.2.1 引物设计第93页
            5.3.2.2 合成引物并进行引物分子量的质检第93页
            5.3.2.3 DNA 样品浓度和纯度质检第93页
            5.3.2.4 引物稀释第93页
            5.3.2.5 PCR 反应第93-94页
            5.3.2.6 SAP 酶消化反应第94-95页
            5.3.2.7 单碱基延伸反应第95页
            5.3.2.8 树脂纯化第95页
            5.3.2.9 进行质谱检测,并收集数据第95-96页
        5.3.3 实验结果第96页
    第四节 栉孔扇贝物理图谱与遗传图谱的初步整合第96-102页
        5.4.1 实验材料第96页
        5.4.2 实验方法第96-97页
        5.4.3 实验结果第97-102页
    第五节 讨论第102-104页
        5.5.1 栉孔扇贝 BAC 末端 SSR 分型技术第102页
        5.5.2 栉孔扇贝 BAC 末端 SSR 分型技术第102页
        5.5.3 栉孔扇贝遗传图谱构建及与物理图谱的初步整合第102-104页
结论第104-107页
参考文献第107-123页
个人简历第123-124页
硕士期间已发表论文第124页
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论文编号ABS563978,这篇论文共124页
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