蛋白酶缺陷型毕赤酵母重组表达人血白蛋白中试发酵工艺的研究
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人血清白蛋白(Human SerumAlbumin, HSA)是一种在医学上应用广泛,需求量大的蛋白质类药物,可维持血液的正常渗透压和促进亲水分子输送,主要用于治疗大量失血、烧伤、休克、水肿及低蛋白血症等[1],国内外市场份额巨大。但是目前临床中应用的HSA均源自于血浆提取的生产工艺,产量仅能满足医药市场需求的10%,且由于病毒等病源微生物的影响,HSA产品的安全性无法得到保障,极大地妨碍了相关多种疾病的临床治疗,间接严重损害患者的健康。应用一种安全、成熟的方法大规模生产HSA无疑将为整个医疗产业带来福音,大幅提升患者健康水平的同时,创造巨额市场价值。近年来,毕赤酵母表达系统由于具有分泌能力强,表达外源蛋白稳定,蛋白糖基化程度低,更适合工业化生产等优势[2-3],使其在外源蛋白表达系统中具有十分大的优势。有关毕赤酵母表达rHSA的研究国外已有报道[4-5]。人血清白蛋白在酵母表达系统中表达时遇到的主要问题之一就是表达产物出现了不同程度的降解[6-7],进一步的研究发现,rHSA的特征性降解可能是由液泡内的蛋白酶A、蛋白酶B、羧肽酶Y等引起的,但是重组表达的外源蛋白的降解,特别是蛋白酶引起的蛋白降解,直接影响了重组蛋白的产量和后续的纯化工作,因此解决蛋白的降解问题具有重要的意义。本文研究根据毕赤酵母遗传密码偏爱性,重新设计合成编码HSA基因,并分别将之转入毕赤酵母菌株GS115NC、GS115pep4-和GS115prb1-,研究蛋白酶缺陷型菌株在摇瓶培养和中试发酵工艺的生长、rHSA表达和降解之间的差异,同时建立了快速、高效的发酵液粗处理工艺。为蛋白酶缺陷菌株,获得高表达、低降解的rHSA毕赤酵母表达工程菌和发酵液粗处理工艺应用奠定基础。
中文摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
英文缩略词表 | 第11-16页 |
第一章 绪论 | 第16-30页 |
1.1 人血清白蛋白 | 第16-18页 |
1.1.1 人血清白蛋白的理化和生物性质 | 第16-17页 |
1.1.2 人血清白蛋白的应用 | 第17-18页 |
1.2 重组蛋白表达系统 | 第18-19页 |
1.3 毕赤酵母蛋白表达系统 | 第19-22页 |
1.3.1 P. pastoris 表达系统的特点 | 第19-20页 |
1.3.2 P.pastoris 表达系统的组成 | 第20-22页 |
1.4 毕赤酵母中试发酵工艺研究进展 | 第22-26页 |
1.4.1 培养基 | 第24-25页 |
1.4.2 温度 | 第25页 |
1.4.3 pH 值 | 第25页 |
1.4.4 溶解氧 | 第25-26页 |
1.4.5 甲醇的流加方式 | 第26页 |
1.5 重组人血清白蛋白表达研究进展简述 | 第26-28页 |
1.6 结论 | 第28-30页 |
第二章 rHSA蛋白酶缺陷型菌株的构建及其中试发酵工艺初探 | 第30-56页 |
2.1 实验仪器、实验试剂及试剂配制 | 第30-35页 |
2.1.1 实验仪器 | 第30-31页 |
2.1.2 实验试剂 | 第31页 |
2.1.3 试剂配制 | 第31-35页 |
2.2 实验方法 | 第35-44页 |
2.2.1 表达载体构建 | 第35-40页 |
2.2.2 菌株筛选、表达及鉴定 | 第40-42页 |
2.2.3 rHSA GS115 NC 中试发酵工艺初探 | 第42-44页 |
2.3 实验结果 | 第44-53页 |
2.3.1 PCR 产物的胶回收纯化鉴定 | 第44-45页 |
2.3.2 重组质粒鉴定结果 | 第45-46页 |
2.3.3 摇瓶培养甲醇诱导阶段 SDS-PAGE 检测结果 | 第46页 |
2.3.4 摇瓶培养甲醇诱导阶段 Western blotting 鉴定结果 | 第46-47页 |
2.3.5 摇瓶培养生物量积累阶段 OD600值检测结果 | 第47-48页 |
2.3.6 摇瓶培养生物量积累阶段湿重结果 | 第48页 |
2.3.7 摇瓶培养甲醇诱导阶段气相色谱结果 | 第48-51页 |
2.3.8 摇瓶培养蛋白表达量的测定结果 | 第51页 |
2.3.9 rHSA GS115 NC 中试发酵工艺初探生物量积累阶段和甲醇诱导阶段细胞湿重和细胞干重结果 | 第51-53页 |
2.3.10 rHSA GS115 NC 中试发酵工艺初探甲醇诱导阶段蛋白表达情况 | 第53页 |
2.4 实验结论 | 第53-56页 |
第三章 rHSA 蛋白酶缺陷型菌株摇瓶规模发酵培养基的开发研究 | 第56-68页 |
3.1 实验仪器和试剂配制 | 第56-59页 |
3.1.1 实验仪器 | 第56页 |
3.1.2 试剂配制 | 第56-59页 |
3.2 实验方法 | 第59-61页 |
3.2.1 培养基筛选研究 | 第59-60页 |
3.2.2 正交实验研究 | 第60-61页 |
3.3 实验结果 | 第61-65页 |
3.3.1 培养基筛选 SDS-PAGE 检测结果 | 第61-62页 |
3.3.2 发酵培养基组成的研究 | 第62-65页 |
3.4 实验结论 | 第65-68页 |
第四章 rHSA蛋白酶缺陷型菌株中试发酵及发酵液粗处理工艺 | 第68-88页 |
4.1 实验仪器和试剂配制 | 第68-71页 |
4.1.1 实验仪器 | 第68-69页 |
4.1.2 试剂配制 | 第69-71页 |
4.2 实验方法 | 第71-77页 |
4.2.1 rHSA GS115 NC 中试发酵工艺研究 | 第71-73页 |
4.2.2 rHSA GS115 pep4-中试发酵工艺研究 | 第73-75页 |
4.2.3 rHSA GS115 prb1-中试发酵工艺研究 | 第75-77页 |
4.2.4 rHSA 样品粗处理工艺研究 | 第77页 |
4.3 实验结果 | 第77-86页 |
4.3.1 中试发酵生物量积累阶段 OD600值、湿重和湿重检测结果 | 第77-79页 |
4.3.2 中试发酵甲醇诱导阶段湿重和干重结果 | 第79-80页 |
4.3.3 中试发酵甲醇诱导阶段 SDS-PAGE 检测结果 | 第80-83页 |
4.3.4 中试发酵白蛋白定量结果 | 第83页 |
4.3.5 中试发酵甲醇诱导阶段 Western blotting 鉴定结果 | 第83-84页 |
4.3.6 中试发酵甲醇诱导阶段蛋白降解率计算结果 | 第84-86页 |
4.4 结论 | 第86-88页 |
第五章 讨论 | 第88-94页 |
第六章 结论 | 第94-96页 |
参考文献 | 第96-106页 |
攻读博士期间所取得的科研成果 | 第106-108页 |
致谢 | 第108页 |
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