阿托伐他汀致胆汁淤积型肝毒性机制研究

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一、目的通过考察阿托伐他汀、2-羟基阿托伐他汀酸、4-羟基阿托伐他汀酸对转运蛋白Bsep(bile salt export pump,胆盐输出泵)、Mrp2(multidrug resistance associated protein2,多药耐药相关蛋白2)功能的影响,探讨药物及其代谢物对肝细胞内胆汁相关转运蛋白的影响,从而研究药物引起胆汁淤积型肝毒性可能的机制。二、方法1分离大鼠原代肝细胞,建立“三明治”培养模型使用两步灌流法获得原代肝细胞,台盼蓝染色法选用细胞活性达85%以上的肝细胞用于后续试验。在传统的培养基中,肝细胞无法较好的保持其极性和代谢功能,而“三明治”培养法可以解决这些问题。经过一段时间的培养,肝细胞间形成紧密连接的胆小管网络,肝细胞内的转运蛋白也会表达在相应的细胞膜侧。2细胞毒性试验分离得到的大鼠原代肝细胞采用10%血清的完全培养液进行常规培养24h,用MTT法分别考察曲格列酮、MK-571、阿托伐他汀、2-羟基阿托伐他汀酸、4-羟基阿托伐他汀酸的毒性,考察药物对原代细胞的毒性作用为下一步细胞实验做准备。3“三明治”大鼠原代肝细胞转运实验用阿托伐他汀、2-羟基阿托伐他汀酸、4-羟基阿托伐他汀酸、曲格列酮、MK-571作用于构建的原代大鼠肝细胞模型。CFDA (5-(and6) Carboxy-2,7-dichlorofluorescein diacetate,5(6)-羧基-2,7-二氯荧光素双乙酸盐)、TCA (taurocholic acid,牛磺胆酸)分别为Mrp2和Bsep底物,使用酶标仪检测细胞内CDF(5(and6)-carboxy-2,7-dichlorofluorescein,5(6)-羧基2,7-二氯荧光素)荧光强度,考察待测物对Mrp2蛋白的影响,收集细胞裂解液样本使用LC-MS/MS测定TCA在细胞内外的浓度,用含Ca2+/Mg2+和不含Ca2+/Mg2+中底物浓度计算出胆汁清除率BEI评价药物对Mrp2、Bsep的转运蛋白功能的影响。4建立TCA检测的方法建立LC-MS/MS测定TCA的方法,用LC-MS/MS测定细胞裂解液中TCA的浓度,考察给药组和对照组Bsep蛋白转运TCA的差异。三、结果1细胞分离、培养平均体重约200g的SD大鼠经两步灌流法获得原代肝细胞,用台盼蓝拒染法检测肝细胞存活率,成活率在85%以上细胞培养24h,待大部分细胞贴壁后改用无血清培养基。2细胞毒性实验MTT结果显示曲格列酮、MK-571、阿托伐他汀及其两种活性代谢物对原代肝细胞的毒性作用呈时间依赖性和浓度依赖性。6h的MTT毒性试验结果显示药物各浓度均无明显毒性。12h毒性试验结果显示,MK-571低中高浓度均无显示毒性,曲格列酮作为典型肝毒性药物低浓度(10μmol/L)无明显毒性。24h毒性实验结果显示MK-571、阿托伐他汀及其活性代谢物,4种化合物在低中浓度无明显毒性。由于转运实验中药物作用细胞时间较短,因此曲格列酮选取低浓度,其他药物系列工作液均选取低中高浓度。3阿托伐他汀及其活性代谢物对Bsep、Mrp2转运蛋白功能的影响阿托伐他汀、2-羟基代谢物增加了TCA在细胞内的蓄积量,并且同时降低了BEI值,说明它们抑制了由Bsep介导的TCA从肝细胞排泄的过程。阿托伐他汀和2-羟基代谢物增加细胞内CDF(由Mrp2转运的底物)蓄积量,降低了胆管内CDF排泄量和BEI值。阿托伐他汀和2-羟基代谢物通过抑制Bsep、Mrp2影响了CDF和TCA在细胞中的分布。四结论阿托伐他汀、2-羟基代谢物对Bsep的底物TCA在细胞内和胆管的蓄积量以及BEI值的产生的影响,以及阿托伐他汀、2-和4-羟基代谢物对CDF在肝胆管内的分布的改变,这与他们对Bsep、Mrp2的抑制作用相关。
摘要第4-7页
ABSTRACT第7-10页
目录第11-14页
英文词语缩写表第14-15页
前言第15-18页
1 大鼠原代肝细胞分离、培养及细胞毒性实验第18-26页
    1.1 仪器与材料第18-19页
        1.1.1 仪器第18页
        1.1.2 药品与试剂第18-19页
    1.2 试验方法第19-22页
        1.2.1 大鼠原代肝细胞提取与培养第19-20页
        1.2.2 细胞特性评价第20页
        1.2.3 细胞毒性试验第20-22页
            1.2.3.1 MTT液的配制第20页
            1.2.3.2 系列工作液的配制第20-21页
            1.2.3.3 MTT实验第21-22页
    1.3 结果第22-25页
        1.3.1 细胞形态学考察第22页
        1.3.2 OD值第22-24页
        1.3.3 细胞存活率第24-25页
    1.4 讨论第25-26页
2 阿托伐他汀及其活性代谢物对Mrp2功能影响第26-36页
    2.1 仪器与材料第26页
    2.2 试验方法第26-30页
        2.2.1 溶液配制第26-28页
        2.2.2 胆管形态观察第28页
        2.2.3 不同浓度药物对Mrp2的功能影响第28-30页
        2.2.4 BCA(Bicinchoninic Acid)法测定总蛋白量第30页
        2.2.5 CFDA标准曲线第30页
        2.2.6 数据处理第30页
    2.3 结果第30-35页
        2.3.1 胆管形态学观察第30-31页
        2.3.2 BCA法测定蛋白量第31-32页
        2.3.3 CFDA标准曲线及线性范围第32页
        2.3.4 阿托伐他汀及其代谢物对CDF在肝细胞内胆管侧外排的影响第32-33页
        2.3.5 阿托伐他汀及其代谢物对CDF在肝细胞、胆管分布的影响第33-35页
    2.4 讨论第35-36页
3 阿托伐他汀及其活性代谢物对Bsep功能影响第36-49页
    第1节 HPLC/MS/MS测定牛磺胆酸的浓度第37-43页
        3.1 仪器与材料第37页
            3.1.1 仪器第37页
            3.1.2 药品与试剂第37页
        3.2 试验方法第37-40页
            3.2.1 溶液配制第37页
            3.2.2 色谱条件第37-39页
            3.2.3 质谱条件第39页
            3.2.4 样品处理第39页
            3.2.5 方法学考察第39-40页
        3.3 结果第40-43页
            3.3.1 色谱-质谱行为第40-41页
            3.3.2 标准曲线第41-42页
            3.3.3 精密度与回收率第42页
            3.3.4 稳定性第42-43页
    第2节 阿托伐他汀及其活性代谢物对Bsep功能影响第43-47页
        3.1 仪器材料第43页
        3.2 实验方法第43-45页
            3.2.1 溶液配制第43-44页
            3.2.2 不同浓度药物对Bsep的功能影响第44-45页
            3.2.3 BCA(Bicinchoninic Acid)法测定蛋白量第45页
            3.2.4 样品中牛磺胆酸(TCA)的测定第45页
            3.2.5 数据处理第45页
        3.3 结果第45-47页
            3.3.1 阿托伐他汀及其代谢物对牛磺胆酸在肝细胞内胆管侧排泄的影响第45-46页
            3.3.2 阿托伐他汀及其代谢物对牛磺胆酸在肝细胞、胆管分布的影响第46-47页
    讨论第47-49页
4 全文总结第49-50页
参考文献第50-56页
综述第56-64页
    参考文献第61-64页
攻读学位期间研究成果第64-65页
致谢第65页
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