铅干扰细胞内稳态诱导小鼠成纤维细胞凋亡的研究

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农产品是人们赖以生存的主要食物,在不同处理过程中容易受到铅的污染,铅在生物链中富集对人体组织和大脑均有毒性,可促使细胞发生凋亡并对多个系统造成损伤。本研究选择小鼠成纤维细胞构建铅诱导细胞凋亡模型,采用细胞生物学和分子生物学方法从细胞、亚细胞及分子水平上研究铅诱导成纤维细胞的凋亡作用及机制,为深入研究铅诱导成纤维细胞凋亡提供科学、客观的实验数据和方法,为铅毒害作用的预防和治疗提供新的思路和途径。建立铅诱导小鼠成纤维细胞凋亡模型,采用MTT法进行细胞毒性分析,激光共聚焦显微镜和透射电子显微镜分析凋亡细胞显微及亚显微结构变化;流式细胞术检测凋亡率与铅处理浓度及时间的关系;检测细胞周期进程、线粒体膜电位变化,探讨铅对细胞增殖及线粒体的损伤;分析胞内游离钙离子浓度变化、监测胞外钙离子流速研究影响钙离子变化的根源;测定胞内活性氧的变化探讨铅对细胞的氧化应激作用;RT-PCR检测凋亡相关基因表达,分析基因表达调控与细胞凋亡的关系。40μM,80μM与160μM Pb(Ac)2在12-48h内对小鼠成纤维细胞具有一定的凋亡作用,细胞发生典型的凋亡形态学变化,且凋亡率呈现浓度及时间依赖性。铅可使细胞增殖阻滞在G0/G1期及线粒体跨膜电位下降;铅打破了胞内钙稳态,胞内钙离子浓度的增加是由于内源性的钙库释放所引起的;铅可破坏细胞氧化-抗氧化平衡,导致细胞氧化损伤;基因Bax与Bcl-2表达量之比值随铅浓度增加而上升,P53表达量随铅浓度增大呈上升趋势。铅对小鼠成纤维细胞具有诱导凋亡作用,凋亡率呈现浓度与时间依赖性。铅通过抑制DNA合成,降低线粒体膜电位破坏其功能,打破钙稳态,氧化损伤和调控基因表达来诱导小鼠成纤维细胞凋亡。
摘要第8-9页
Abstract第9页
英文缩略语第10-11页
第一章 前言第11-19页
    1.1 国内外农产品重金属污染状况第11-12页
        1.1.1 国外农产品重金属污染状况第11-12页
        1.1.2 国内农产品重金属污染状况第12页
    1.2 铅对人体健康的影响第12-13页
    1.3 细胞凋亡第13-15页
        1.3.1 细胞凋亡的形态学变化第13-14页
        1.3.2 细胞凋亡的执行第14-15页
            1.3.2.1 caspase与细胞凋亡的执行第14页
            1.3.2.2 Bcl-2家族与细胞凋亡的执行第14-15页
        1.3.3 诱导细胞凋亡的因子第15页
        1.3.4 细胞凋亡的生物学意义第15页
    1.4 铅与细胞凋亡第15-17页
        1.4.1 铅诱导细胞凋亡第16页
        1.4.2 铅诱导细胞凋亡的机制第16-17页
            1.4.2.1 铅与钙的竞争作用第16页
            1.4.2.2 氧化损伤第16-17页
            1.4.2.3 基因调控与细胞凋亡第17页
    1.5 本研究的目的、意义第17-18页
    1.6 研究的主要内容第18-19页
        1.6.1 小鼠成纤维细胞培养和铅诱导小鼠成纤维细胞凋亡研究第18页
        1.6.2 铅诱导小鼠成纤维细胞凋亡机制研究第18-19页
第二章 铅诱导小鼠成纤维细胞凋亡研究第19-35页
    2.1 前言第19页
    2.2 材料与方法第19-25页
        2.2.1 材料第19-22页
            2.2.1.1 细胞第19-20页
            2.2.1.2 主要试剂第20-21页
            2.2.1.3 主要仪器第21-22页
            2.2.1.4 主要溶液的配制第22页
        2.2.2 方法第22-25页
            2.2.2.1 细胞复苏第22页
            2.2.2.2 细胞培养及传代第22-23页
            2.2.2.3 细胞冻存第23页
            2.2.2.4 细胞活率检测第23页
            2.2.2.5 细胞生长动力学第23页
            2.2.2.6 细胞毒性检测第23-24页
            2.2.2.7 吖啶橙(AO)/溴化乙锭(EB)复染第24页
            2.2.2.8 Hoechst33258染色第24页
            2.2.2.9 透射电子显微镜观察细胞亚显微结构第24页
            2.2.2.10 AnnexinV-FITC/PI双染第24-25页
            2.2.2.11 统计学处理第25页
    2.3 结果与分析第25-31页
        2.3.1 细胞活率检测第25页
        2.3.2 细胞生长动力学第25-26页
        2.3.3 细胞毒性分析第26-27页
        2.3.4 AO/EB复染第27-28页
        2.3.5 Hoechst33258染色第28-29页
        2.3.6 透射电镜观察凋亡细胞亚显微结构第29页
        2.3.7 AnnexinV-FITC/PI双染第29-31页
    2.4 讨论第31-34页
        2.4.1 细胞活率检测第31页
        2.4.2 细胞培养及传代第31-32页
        2.4.3 细胞生长动力学第32页
        2.4.4 细胞毒性分析第32-33页
        2.4.5 AO/EB复染观察凋亡细胞形态第33页
        2.4.6 Hoechst33258染色观察凋亡细胞核第33页
        2.4.7 透射电子显微镜分析凋亡细胞超微结构第33-34页
        2.4.8 细胞凋亡率的测定第34页
    2.5 小结第34-35页
第三章 铅诱导小鼠成纤维细胞凋亡机制研究第35-52页
    3.1 前言第35-36页
    3.2 材料与方法第36-41页
        3.2.1 材料第36-37页
            3.2.1.1 细胞材料第36页
            3.2.1.2 主要仪器第36页
            3.2.1.3 主要试剂第36-37页
            3.2.1.4 主要试剂的配制第37页
        3.2.2 方法第37-41页
            3.2.2.1 细胞周期检测第37页
            3.2.2.2 线粒体膜电位检测第37页
            3.2.2.3 胞内钙离子稳态分析第37-38页
            3.2.2.4 胞内活性氧检测第38页
            3.2.2.5 胞外钙离子流速监测第38-39页
            3.2.2.6 RT-PCR检测第39-40页
            3.2.2.7 统计学处理第40-41页
    3.3 结果与分析第41-48页
        3.3.1 细胞周期检测第41-43页
        3.3.2 线粒体膜电位检测第43-44页
        3.3.3 胞内钙离子稳态分析第44-45页
        3.3.4 胞内活性氧的检测第45-46页
        3.3.5 胞外钙离子流速监测第46页
        3.3.6 RT-PCR检测第46-48页
    3.4 讨论第48-51页
        3.4.1 细胞周期测定第48页
        3.4.2 线粒体膜电位的检测第48页
        3.4.3 胞内钙离子稳态分析第48-49页
        3.4.4 胞内活性氧的检测第49页
        3.4.5 胞外钙离子流速监测第49-50页
        3.4.6 RT-PCR检测第50-51页
    3.5 小结第51-52页
第四章 结论与创新点第52-53页
    4.1 结论第52页
    4.2 创新点第52-53页
参考文献第53-59页
在学期间科研成绩第59-60页
致谢第60-61页
个人简介第61-63页
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