疏水性IR780经可降解白蛋白纳米粒包裹后用于光热和光动力联合治疗肿瘤

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NIR染料是一类波长在700-1000nm之间的小分子物质,可以作为光敏剂使用。当光敏剂吸收特定波长的近红外光后,其获得的能量部分会以长波长形式释放,产生荧光用于肿瘤成像,而其它能量会转化成以高热以及使周围组织的氧分子转变为活性氧类(Reactive Oxygen Species,简称ROS),导致肿瘤细胞死亡,从而用于光热治疗(Photothermal Therapy,简称PTT)和光动力治疗(Photodynamic Therapy,简称PDT)肿瘤。IR780作为一种近红外小分子染料,凭借其优秀的光学特性受到了广泛的关注。由于肿瘤细胞质膜电位相对较高,有机阴离子转运体多肽(Organic Anion Transporter Peptides,简称OATPs)的作用,IR780能够优先聚集在肿瘤细胞内部,从而区分肿瘤细胞和正常细胞。因此,它能够深入穿透至组织内部并成像,同时可以获得显著的信号对比度。另外,IR780可以选择性进入肿瘤细胞的线粒体中,在近红外激光照射下可以产生大量的活性氧类和高热,从而破坏肿瘤细胞。因此,IR780已经被报道应用于肿瘤成像、光动力治疗和光热治疗。然而,实验中发现,游离IR780具有疏水性强、光稳定性差、耐受性差及体内毒性大等缺点,这些缺点极大地限制了它的临床应用。尽管许多研究者使用纳米载体负载IR780用于肿瘤成像和治疗,如多孔二氧化硅纳米粒、放射性核素标记的聚合物胶束以及肝素-叶酸纳米粒,但都没有解决IR780耐受性差的问题,同时可能会引起体内器官的损伤。为了改善IR780的多项缺点,本次研究利用生物可降解的白蛋白包裹IR780制备了白蛋白-IR780纳米粒(简称HSA-IR780 NPs)。实验结果显示,HSA-IR780NPs显著增加了游离IR780的水溶性(1000倍以上),可以保护IR780防止其在水溶液中聚集导致荧光淬灭以及防止其在自然光下发生降解。另外,我们在水溶液中证明在近红外激光(Near Infrared Light,简称NIR)照射下HSA-IR780 NPs能够产生大量的热和102,具有PTT和PDT的双重效应。接着,体外药效实验同样证实了在NIR激光作用下HSA-IR780 NPs的PDT效应,以及显著的肿瘤细胞杀伤毒性。最后,在体内荷瘤小鼠实验中验证了HSA-IR780 NPs的PTT效应,而NPs联合NIR激光作用可以显著抑制小鼠肿瘤生长。体内毒性实验表明HSA-IR780 NPs能够降低游离IR780的急性毒性,并且可以将游离IR780的耐受剂量由2.5mg/kg提高至25mg/kg,同时不会引起血液及体内器官的病变。综上所述,HSA-IR780 NPs可以极大地改善游离IR780的缺点,并且可以联合利用PTT和PDT这2种光学效应共同杀死肿瘤细胞,抑制生物体内肿瘤的生长。
缩略语表第9-10页
摘要第10-12页
ABSTRACT第12-13页
第一章 绪论第14-34页
    1. 近红外染料(Near-infread dye,NIR dye)简介第14-22页
        1.1. 近红外染料的光热和光动力治疗第15-16页
        1.2. 光动力(PDT)治疗肿瘤的分子机制第16-20页
        1.3. 近红外染料的量子产率第20-22页
    2. IR780研究进展第22-27页
        2.1. IR780简介第22-23页
        2.2. IR780在肿瘤成像和治疗中的优势和局限性第23-24页
        2.3. 用于改善IR780局限性的各类纳米粒载体第24-27页
    3. 本论文的主要内容及创新点第27-29页
        3.1. 本论文的实验原理和主要内容第27-28页
        3.2. 本论文的创新点第28-29页
    参考文献第29-34页
第二章 HSA-IR780纳米粒的制备和表征研究第34-42页
    1. 前言第34页
    2. 实验仪器和材料第34-35页
        2.1. 仪器第34页
        2.2. 试剂和材料第34-35页
    3. 实验方法第35-37页
        3.1. 白蛋白-IR780纳米粒(HSA-IR780 NPs)的制备第35页
        3.2. 纳米粒的载药量和包封率测定第35-36页
        3.3. TEM和SEM电子显微镜观察第36页
        3.4. 纳米粒的稳定性研究第36页
        3.5. 纳米粒的光学性质研究第36-37页
    4. 实验结果第37-40页
        4.1. HSA-IR780 NPs的制备、载药量及包封率测定第37页
        4.2. TEM和SEM电子显微镜观察第37页
        4.3. 纳米粒的水溶性与稳定性研究第37-38页
        4.4. 纳米粒的光学性质研究第38-40页
    5. 总结与讨论第40-41页
    参考文献第41-42页
第三章 HSA-IR780纳米粒水溶液中光热和光动力研究第42-48页
    1. 前言第42页
    2. 实验仪器和材料第42页
        2.1. 仪器第42页
        2.2. 试剂与材料第42页
    3. 实验方法第42-43页
        3.1. 纳米粒溶液的升温曲线和图像测定第42-43页
        3.2. 纳米粒溶液中~1O_2测定第43页
    4. 实验结果第43-46页
        4.1. 纳米粒溶液的升温曲线和图像测定第43-44页
        4.2. 纳米粒溶液中102测定第44-46页
    5. 总结与讨论第46-47页
    参考文献第47-48页
第四章 HSA-IR780纳米粒体外细胞模型药效学研究第48-55页
    1. 前言第48-49页
    2. 实验仪器和材料第49页
        2.1. 仪器第49页
        2.2. 试剂与材料第49页
        2.3. 细胞株第49页
    3. 实验方法第49-51页
        3.1. 细胞模型构建第49-50页
        3.2. 细胞水平上纳米粒光动力研究第50页
        3.3. 细胞凋亡与坏死染色观察第50页
        3.4. 细胞毒性实验第50-51页
    4. 实验结果第51-53页
        4.1. 细胞水平上纳米粒光动力研究第51-52页
        4.2. 细胞凋亡与坏死染色观察第52页
        4.3. 细胞毒性实验第52-53页
    5. 总结与讨论第53-54页
    参考文献第54-55页
第五章 HSA-IR780纳米粒体内药效学和毒性研究第55-64页
    1. 前言第55页
    2. 实验仪器和材料第55-56页
        2.1. 仪器第55页
        2.2. 试剂与材料第55-56页
        2.3. 细胞株第56页
        2.4. 实验动物第56页
    3. 实验方法第56-58页
        3.1. 动物模型构建第56页
        3.2. 体内近红外荧光成像第56页
        3.3. 体内纳米粒升温曲线和图像测定第56-57页
        3.4. 体内药效学研究第57页
        3.5. 体内毒性研究第57-58页
    4. 实验结果第58-62页
        4.1. 体内近红外荧光成像第58-59页
        4.2. 体内纳米粒升温曲线和图像测定第59页
        4.3. 体内药效学研究第59-61页
        4.4. 体内毒性研究第61-62页
    5. 总结与讨论第62-63页
    参考文献第63-64页
全文小结第64-66页
存在的问题及展望第66-67页
致谢第67-68页
附录:已发表的文章第68-69页
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