重组解脂亚罗酵母合成菜油甾醇的研究

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植物甾醇是一种重要的具有生理活性的固醇类化合物,具有降低血液中胆固醇浓度、抗癌、抗氧化、类激素等作用,植物甾醇及其衍生物被广泛用于保健食品、药品以及化妆品中。酵母中麦角固醇的含量较高,麦角固醇与植物甾醇具有相似的化学结构,其生物合成途径中有植物甾醇合成的前体物质麦角-5,7-二烯醇,因此通过基因工程的手段改造麦角固醇合成途径合成植物甾醇成为可能。本研究建立了一种用GC-MS/SIM检测微生物中甾醇类化合物的方法;并以解脂亚罗酵母(Yarrowia lipolytica polf)为宿主,构建了一株产菜油甾醇的菌株YL-PE,鉴别了其发酵产物,考察了菜油甾醇的合成量。Y.lipolytica是一种产油微生物,胞内油脂能为甾醇类物质提供存储空间,缓解过量甾醇累积对细胞膜流动性造成的影响,同时,胞内油脂的合成与菜油甾醇又共用乙酰CoA等前体物质,因此,细胞中油脂对菜油甾醇的合成既有促进又有竞争作用。如何充分利用油脂对甾醇合成的有利因素,是进一步提高甾醇积累量的基础理论问题。本研究在不同油脂产量的菌株中构建了菜油甾醇的合成途径,研究了油脂产量与菜油甾醇积累之间的关系,并构建转化DHCR7的多拷贝质粒进一步提高了菜油甾醇的产量,发酵罐发酵考察了最优菌株中菜油甾醇的产量,取得的主要研究结果如下:(1)以甾醇混合标样与Y.lipolytica polf发酵液样品为检测对象,建立了一种基于GC-MS/SIM检测微生物中甾醇类化合物的方法。此方法下各色谱峰之间分离度R均大于1.2;SIM模式下各待测组分在3-200μg/mL之间具有较好的线性关系,各组分的检出限大于5.0 μg/mL;精密度、稳定性和加标回收率结果显示,此方法多次测定样品RSD为8.14%,48 h内样品之间的RSD为6.96%,不同梯度的加标回收率在80.69-91.41%之间。方法验证结果说明此方法具有较好的分离度、线性范围、重复性、稳定性和准确度,能满足检测酵母中甾醇类化合物的要求。(2)以Y.lipolyticapolf为宿主,敲除了麦角固醇合成途径中ERG5基因,表达了来自非洲爪蟾的DHCR7基因,构建了一株能合成菜油甾醇的解脂亚罗酵母菌株YL-PE。经过鉴定对照菌株po1f、po1f-ERG5-和重组菌株YL-PE发酵产物,发现敲除ERG5使麦角固醇的合成停留在麦角-5,7-二烯醇,并且对宿主的生长有抑制作用,表达DHCR7基因使麦角-5,7-二烯醇转化成菜油甾醇;重组菌株YL-PE摇瓶发酵得到菜油甾醇的产量为485 μg/g;在5 LBioflo发酵罐发酵菜油甾醇的最大产量为15.2 mg/L。(3)以三株不同油脂产量的菌株(po1f、po1f-mfe-、po1f-pex10--mfe-)为宿主,研究油脂对菜油甾醇合成量的影响,并进一步表达DHCR7多拷贝质粒提高菜油甾醇的积累。结果发现,三个油脂含量依次增高的菌株(po1f-mfe--ERG5-、po1f-ERG5-、po1f-pex10--mfe--ERG5-)中,菜油甾醇的合成量分别为 757.8、480 和 589.9μg/g。其中,po1f-mfe--ERG5-菌株中菜油甾醇的产量最高为757.8μg/g,其油脂含量最少(42.3 mg/g),因此,菜油甾醇产量与油脂积累量没有显现出直接的对应关系,可能是因为甾醇产量较小,并没有以酯化形式存储于油脂中,使油脂提高甾醇产量的作用未能充分体现。同时发现,敲除MFE的菌株中,菜油甾醇产量均高于对照菌株po1f-ERG5-,细胞可能通过提高菜油甾醇的合成参与细胞膜的修复,缓解敲除MFE带来的损伤。另外,增加DHCR7拷贝数提高了DHCR7和ERG4相对表达量,使得碳代谢更多的流向菜油甾醇,显著提高了菜油甾醇的合成量。多拷贝质粒表达菌株中po1f-pex10--mfe--ERG5-菜油甾醇的产量最高,可达1062 μg/g DCW,发酵罐发酵得到49.2 mg/L菜油甾醇。综上,本研究建立了一种用GC-MS/SIM法检测微生物中甾醇类化合物的方法,构建了合成菜油甾醇的菌株YL-PE,并发现通过敲除MFE基因、增加DHCR7拷贝数是提高生物合成菜油甾醇产量的有效途径,研究结果为利用重组酵母生产菜油甾醇奠定了应用基础。
摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
中英文缩略词对照表第8-14页
第一章 绪论第14-28页
    1.1 植物甾醇概述第14-18页
        1.1.1 植物甾醇及其理化性质第14-15页
        1.1.2 植物甾醇的生理功能第15-16页
        1.1.3 植物甾醇的安全性评价第16-17页
        1.1.4 植物甾醇的应用第17-18页
    1.2 植物甾醇的生产方法第18-19页
        1.2.1 植物提取法第18页
        1.2.2 生物合成法第18-19页
    1.3 甾醇类化合物的生物合成途径第19-24页
        1.3.1 麦角固醇的生物合成概述第19-21页
        1.3.2 甾醇类化合物的生物合成途径第21-24页
    1.4 解脂亚罗酵母菜油甾醇合成相关代谢工程研究第24-25页
        1.4.1 解脂亚罗酵母概述第24页
        1.4.2 利用解脂亚罗酵母合成菜油甾醇研究进展第24-25页
    1.5 研究目的、意义及内容第25-28页
        1.5.1 研究目的及意义第25-26页
        1.5.2 研究内容第26-28页
第二章 基于GC-MS/SIM检测酵母中甾醇类化合物方法的建立第28-40页
    2.1 前言第28-29页
    2.2 实验材料第29-30页
        2.2.1 菌株第29页
        2.2.2 试剂和仪器第29页
        2.2.3 标准溶液的配置第29-30页
    2.3 试验方法第30-32页
        2.3.1 气质联用分析甾醇含量第30页
        2.3.2 方法学考察建立方法有效性第30-32页
        2.3.3 皂化提取菌体中的甾醇第32页
    2.4 结果与分析第32-38页
        2.4.1 内标物的选择第32-33页
        2.4.2 方法专属性的考察第33-34页
        2.4.3 特征离子的选择、线性范围和检出限第34-36页
        2.4.4 方法的精密度、稳定性及加标回收率第36-38页
    2.5 本章小结第38-40页
第三章 高产菜油甾醇的解脂亚罗酵母菌株的构建第40-64页
    3.1 前言第40-42页
    3.2 实验材料第42-44页
        3.2.1 质粒和菌株第42-43页
        3.2.2 培养基第43页
        3.2.3 试剂和酶第43-44页
        3.2.4 仪器和设备第44页
    3.3 试验方法第44-50页
        3.3.1 解脂亚罗酵母菌株基因组DNA的提取第44-45页
        3.3.2 目标基因的PCR扩增第45-46页
        3.3.3 琼脂糖凝胶电泳及PCR产物的纯化第46-47页
        3.3.4 限制性内切酶酶切及酶切产物的连接第47页
        3.3.5 大肠杆菌的转化第47-48页
        3.3.6 质粒的提取及酶切验证第48页
        3.3.7 解脂亚罗酵母的转化第48-49页
        3.3.8 基因敲除菌株的筛选、验证及URA3标记的去除第49-50页
        3.3.9 生物量及细胞干重的测定第50页
        3.3.10 甾醇含量分析第50页
    3.4 结果与分析第50-62页
        3.4.1 ERG5基因敲除质粒的构建及验证第50-53页
        3.4.2 ERG5-菌株的筛选第53-55页
        3.4.3 DHCR7表达质粒的构建及转化第55-57页
        3.4.4 重组菌株YL-PE甾醇产物确认及产量分析第57-60页
        3.4.5 重组菌株的发酵罐发酵第60-62页
    3.5 本章小结第62-64页
第四章 菜油甾醇合成与油脂积累关系的研究第64-82页
    4.1 前言第64-65页
    4.2 实验材料第65-67页
        4.2.1 质粒和菌株第65-67页
        4.2.2 培养基第67页
        4.2.3 酶和试剂第67页
        4.2.4 仪器和设备第67页
    4.3 试验方法第67-71页
        4.3.1 脂肪酸产量分析第67-68页
        4.3.2 酵母总RNA的提取及反转录第68-69页
        4.3.3 qPCR基因表达水平的检测第69-71页
    4.4 结果与分析第71-79页
        4.4.1 不同油脂产量菌株中合成菜油甾醇途径的重构及其产量分析第71-74页
        4.4.2 DHCR7多拷贝质粒的构建表达及其产量分析第74-77页
        4.4.3 DHCR7基因相对表达量的分析第77-79页
        4.4.4 重组菌株的发酵罐发酵第79页
    4.5 本章小结第79-82页
第五章 结论与展望第82-84页
    5.1 结论第82-83页
    5.2 展望第83-84页
参考文献第84-92页
致谢第92-94页
攻读学位期间的研究成果第94页
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