固定化β-葡萄糖苷酶制备龙胆低聚糖工艺研究
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龙胆低聚糖(gentio-oligosaccharides)是一类新型的功能性低聚糖,具有显著增殖肠内有益菌、调节肠内菌群平衡和改善通便效果等生理功能。为了降低龙胆低聚糖的生产成本,为其工业化生产提供技术参数,本文研究了固定化β-葡萄糖苷酶(IBGL)制备龙胆低聚糖的工艺,通过葡聚糖凝胶柱层析分离得到了目的物,并采用电喷雾质谱和核磁共振氢谱对其进行了鉴定。主要研究结果如下:1. BGL的制备工艺:黑曲霉固态发酵,按料液比1:10,自然环境温度下用pH4.8的醋酸-醋酸钠缓冲液浸提3次,浸提率可达93.82%;硫酸铵两步盐析法纯化BGL,纯化倍数为1.6倍。2. IBGL的制备工艺:质量分数为3.5%的海藻酸钠水溶液10mL与2mL适度稀释的酶液充分混合(加酶量为105U/g干载体),加入1%(v/v)的戊二醛,4℃交联3h,滴入2%的氯化钙溶液中硬化12h,所得IBGL凝胶球的酶活为17.78U/g湿凝胶,硬度为658.32g,本工艺的酶活回收率为66.34%。3. IBGL的性质:IBGL的最适反应pH为4.8,最适反应温度为65℃,米氏常数Km值为1.07mmol/L。BGL和IBGL对葡萄糖的转化率分别为47%、43%。与BGL相比,IBGL的耐受pH范围、最适温度和稳定性都有所提高。4. IBGL固定床反应制备龙胆低聚糖工艺:60%(w/v)的葡萄糖缓冲溶液,加酶量为30U/g葡萄糖,pH4.8,温度65℃,转化36h,间歇反应4次。平均葡萄糖的转化率为41.07%,IBGL的剩余酶活为82.23%。IBGL的生产能力约为BGL的3.50倍。5.产物龙胆低聚糖的分离鉴定:1)分离条件:葡聚糖Shephadex G-10凝胶柱Φ1cm×40cm,10%乙醇洗脱,流速10mL/h,柱温50℃。产物经分离后得到了两个组份,TLC鉴定组份Ⅰ为葡萄糖,组份Ⅱ可能为生成的龙胆二糖。2)组份Ⅱ鉴定:ESI-MS测定其相对分子质量与龙胆二糖相同;1H-NMR(400MHz,D2O) δ:5.06,5.05,3.853.65,3.603.50,3.383.25,3.203.00。结合质谱、核磁共振氢谱结果,判定组份Ⅱ为龙胆二糖。6.酶法合成龙胆低聚糖体系中残留底物葡萄糖量的方法学研究:为定量测定酶法合成龙胆低聚糖得率,本文采用葡萄糖试剂盒法,通过测定转化后残留底物葡萄糖的量,间接测定龙胆低聚糖得率。该法在2小时内测定酶法合成龙胆低聚糖体系中葡萄糖量的结果稳定(RSD=0.81%),重复性好(RSD=0.97%),精密度高(RSD=1.55%),干扰小(加样回收率=101.68%)。7.成本分析:BGL制备龙胆低聚糖的总成本是IBGL的2.8倍,IBGL能显著降低龙胆低聚糖的生产成本。
摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
缩写表 | 第9-14页 |
1 绪论 | 第14-28页 |
1.1 功能性低聚糖的概述 | 第14-17页 |
1.1.1 功能性低聚糖的特性 | 第14页 |
1.1.2 以葡萄糖为单体的功能性低聚糖 | 第14-16页 |
1.1.3 功能性低聚糖的国内外研究概况 | 第16-17页 |
1.2 β-葡萄糖苷酶的研究现状 | 第17-19页 |
1.2.1 BGL 的产生菌 | 第17-18页 |
1.2.2 BGL 的物理化学性质 | 第18-19页 |
1.2.3 BGL 酶活的测定 | 第19页 |
1.3 固定化酶技术概况 | 第19-20页 |
1.3.1 固定化酶的优缺点 | 第19页 |
1.3.2 酶的常用固定化方法 | 第19-20页 |
1.4 功能性低聚糖的分离纯化研究概述 | 第20-23页 |
1.4.1 色谱柱分离法 | 第20-23页 |
1.4.2 微生物发酵法 | 第23页 |
1.4.3 酶法 | 第23页 |
1.4.4 膜分离法 | 第23页 |
1.5 功能性低聚糖的分析方法概述 | 第23-25页 |
1.5.1 定量分析方法 | 第23-24页 |
1.5.2 定性分析方法 | 第24-25页 |
1.5.3 结构分析方法 | 第25页 |
1.6 本课题研究的目的与意义 | 第25-26页 |
1.7 本课题研究的主要内容 | 第26页 |
1.8 本课题的创新点 | 第26-28页 |
2 BGL 的制备工艺研究 | 第28-36页 |
2.1 试验材料及仪器设备 | 第28-29页 |
2.1.1 试验材料 | 第28页 |
2.1.2 主要试剂 | 第28页 |
2.1.3 部分溶剂配制 | 第28页 |
2.1.4 仪器设备 | 第28-29页 |
2.1.5 黑曲霉基本培养基 | 第29页 |
2.1.6 黑曲霉固态发酵 | 第29页 |
2.2 分析方法 | 第29-32页 |
2.2.1 BGL 酶活的测定 | 第29-31页 |
2.2.2 蛋白质含量的测定 | 第31页 |
2.2.3 BGL 粗酶液的纯化 | 第31-32页 |
2.3 研究内容与方法 | 第32-33页 |
2.3.1 BGL 的提取工艺研究 | 第32页 |
2.3.2 BGL 粗酶液的纯化工艺研究 | 第32-33页 |
2.4 结果与讨论 | 第33-35页 |
2.4.1 BGL 的提取工艺研究 | 第33-34页 |
2.4.2 BGL 粗酶液的纯化工艺研究 | 第34-35页 |
2.5 小结 | 第35-36页 |
3 BGL 的固定化工艺及其酶学性质研究 | 第36-46页 |
3.1 试验材料与仪器设备 | 第36页 |
3.1.1 试验材料 | 第36页 |
3.1.2 主要试剂 | 第36页 |
3.1.3 仪器设备 | 第36页 |
3.2 分析方法 | 第36-37页 |
3.2.1 IBGL 酶活的测定 | 第36-37页 |
3.2.2 IBGL 硬度的测定 | 第37页 |
3.3 研究内容与方法 | 第37-39页 |
3.3.1 BGL 的固定化工艺研究 | 第37页 |
3.3.2 BGL 与 IBGL 的酶学性质研究 | 第37-38页 |
3.3.3 IBGL 的稳定性研究 | 第38-39页 |
3.4 结果与讨论 | 第39-44页 |
3.4.1 BGL 的固定化工艺研究 | 第39-41页 |
3.4.2 BGL 与 IBGL 的酶学性质研究 | 第41-43页 |
3.4.3 IBGL 的稳定性研究 | 第43-44页 |
3.5 小结 | 第44-46页 |
4 IBGL 合成龙胆低聚糖工艺研究 | 第46-54页 |
4.1 试验材料与仪器设备 | 第46-47页 |
4.1.1 试验材料 | 第46页 |
4.1.2 主要试剂 | 第46页 |
4.1.3 仪器设备 | 第46-47页 |
4.1.4 部分溶剂的配制 | 第47页 |
4.2 分析方法 | 第47-48页 |
4.2.1 反应产物的定性分析 | 第47页 |
4.2.2 反应产物的定量分析 | 第47-48页 |
4.3 研究内容与方法 | 第48-50页 |
4.3.1 葡萄糖试剂盒法测定反应体系中残留葡萄糖的方法学研究 | 第48-49页 |
4.3.2 龙胆低聚糖合成条件研究 | 第49页 |
4.3.3 相同酶活的 BGL 与 IBGL 合成龙胆低聚糖的比较 | 第49-50页 |
4.4 结果与讨论 | 第50-53页 |
4.4.1 葡萄糖试剂盒法测定底物转化率的方法学研究 | 第50-51页 |
4.4.2 龙胆低聚糖合成条件研究 | 第51-53页 |
4.4.3 相同酶活的 BGL 与 IBGL 合成龙胆低聚糖的比较 | 第53页 |
4.5 小结 | 第53-54页 |
5 龙胆低聚糖中龙胆二糖单体的分离与检测 | 第54-60页 |
5.1 试验材料与仪器设备 | 第54-55页 |
5.1.1 试验材料 | 第54页 |
5.1.2 主要试剂 | 第54页 |
5.1.3 仪器设备 | 第54-55页 |
5.2 分析方法 | 第55页 |
5.2.1 反应产物的定性分析 | 第55页 |
5.3 研究内容与方法 | 第55-57页 |
5.3.1 Sephadex G-10 凝胶柱层析分离龙胆低聚糖 | 第55-56页 |
5.3.2 分离组份的检测与表征 | 第56-57页 |
5.4 结果与讨论 | 第57-59页 |
5.4.1 Sephadex G-10 凝胶柱层析分离龙胆低聚糖 | 第57页 |
5.4.3 分离组份的检测与表征 | 第57-59页 |
5.5 小结 | 第59-60页 |
6 成本分析 | 第60-62页 |
7 结论与展望 | 第62-64页 |
7.1 结论 | 第62页 |
7.2 展望 | 第62-64页 |
致谢 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-71页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第71-72页 |
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