荞麦中活性成分对Hep G2细胞作用的初步研究

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荞麦不仅营养价值高,而且保健功能强,是最受欢迎的绿色食品。研究表明荞麦中的主要活性成分如胰蛋白酶抑制剂和黄酮类物质具有降低血液胆固醇,抑制脂肪蓄积,抑制大肠癌和胆结石,改善便秘及抗衰老等作用。为进一步揭示其抑制细胞增殖、诱导肿瘤细胞凋亡机理及荞麦药用价值的开发利用,本研究以荞麦胰蛋白酶抑制剂、槲皮素和芦丁为实验材料,对它们的抗肿瘤活性进行了深入研究。荞麦BTI基因转染对人肝癌Hep G2细胞的作用研究实验中,利用先前已构建的pEGFP-N1-BTI真核表达质粒,脂质体介导转染Hep G2细胞,分析BTI诱导细胞凋亡作用及对细胞周期调控因子及细胞侵袭迁移的影响。MTT比色法检测BTI对HepG2细胞的毒理效应,结果显示BTI能够明显降低细胞的存活率,并具有时间依赖性,当作用48h后,抑制率达到35%以上。DAPI染色及流式细胞术检测细胞凋亡,实验结果表明经BTI处理的Hep G2细胞出现凋亡信号并产生凋亡小体。RT-PCR和Westem Blot法检测表明BTI在转染细胞中成功转录和表达。细胞周期调控因子检测结果显示转染BTI的细胞中CyclinDl、CyelinE1、CDK2及CDK7转录减少,而P21和P53的转录增加。Westem B10t研究发现BTI可能通过下调CyclinD1表达和上调P21表达,来抑制细胞增殖,诱导细胞凋亡。另外研究还发现经BTI转染后Hep G2细胞的黏附和侵袭迁移能力均有所降低。荞麦槲皮素及芦丁对Hep G2细胞作用的比较研究实验中,MTT法检测结果表明槲皮素和芦丁对Hep G2细胞增长均具有抑制作用,槲皮素的抑制效果较芦丁大,并具有时间和浓度依赖性。DAPI染色发现细胞核凝集并有凋亡小体产生。划痕实验表明槲皮素和芦丁在一定浓度范围内能够抑制细胞迁移,并且槲皮素对细胞迁移的抑制作用更明显。流式细胞仪检测细胞内活性氧(ROS)水平,结果发现经槲皮素和芦丁处理后细胞内的ROS均有明显提高,并且经槲皮素作用细胞后ROS变化更明显,推断引发ROS水平升高并诱导细胞凋亡可能是黄酮类物质发挥抗肿瘤作用的一个重要机制。总抗氧化能力(T-AOC)检测结果发现芦丁溶液的T-AOC较槲皮素溶液的T-AOC大,而当二者作用Hep G2细胞后,槲皮素作用后细胞内及培养基中的T-AOC要比芦丁作用后的T-AOC大,这表明两种黄酮化合物都具有很好的抗氧化性,在不同体系中它们的抗氧化活性大小不同。真核细胞凋亡的信号转导途径是非常复杂和极其精细的调控网络,需要许多信号分子的参与,胰蛋白酶抑制剂和黄酮类物质诱导细胞凋亡的分子机理仍需要进一步深入地研究,而本文为这个复杂机制的研究及荞麦药用价值的开发利用奠定一定的理论和实验基础,该研究具有一定创新性,研究意义深远。
中文摘要第10-12页
ABSTRACT第12-13页
第一章 文献综述第14-22页
    1.1 引言第14页
    1.2 蛋白酶抑制剂第14-16页
        1.2.1 蛋白酶抑制剂概述第14-15页
        1.2.2 胰蛋白酶抑制剂的应用研究第15-16页
    1.3 生物黄酮类化合物第16-18页
        1.3.1 生物黄酮类化合物概述第16-17页
        1.3.2 生物黄酮类化合物的药用研究第17-18页
    1.4 荞麦研究进展第18-20页
        1.4.1 荞麦的分类、分布第18-19页
        1.4.2 荞麦的功能因子研究第19-20页
    1.5 研究目的及意义第20-22页
第二章 荞麦BTI基因转染对Hep G2细胞的作用研究第22-42页
    2.1 引言第22页
    2.2 实验材料与仪器第22-23页
        2.2.1 细胞、材料及主要试剂第22-23页
        2.2.2 主要实验仪器第23页
    2.3 实验方法第23-27页
        2.3.1 细胞培养第23-24页
        2.3.2 细胞计数第24页
        2.3.3 细胞转染第24页
        2.3.4 MTT检测细胞活性第24-25页
        2.3.5 倒置显微镜观察细胞生长形态第25页
        2.3.6 激光共聚焦显微镜观察绿色荧光蛋白在细胞中的表达情况第25页
        2.3.7 荧光显微镜观察细胞核的形态学变化第25页
        2.3.8 流式细胞仪检测细胞凋亡第25页
        2.3.9 RT-PCR检测在转染细胞中BTI基因的转录第25-26页
        2.3.10 Western检测在转染细胞中BTI的表达第26页
        2.3.11 细胞周期调控因子检测第26页
        2.3.12 细胞粘附实验第26-27页
        2.3.13 划痕擦伤迁移实验检测细胞迁移情况第27页
    2.4 实验结果第27-41页
        2.4.1 MTT检测细胞活性第27-28页
        2.4.2 倒置显微镜观察细胞生长形态第28页
        2.4.3 激光共聚焦显微镜观察绿色荧光蛋白在细胞中的表达情况第28-29页
        2.4.4 荧光显微镜观察细胞核的形态学变化第29页
        2.4.5 细胞凋亡检测第29-32页
        2.4.6 RT-PCR检测在转染细胞中BTI基因的转录第32-34页
        2.4.7 Western Blot检测在转染细胞中BTI的表达第34-35页
        2.4.8 细胞周期调控因子检测第35-39页
        2.4.9 细胞粘附实验第39-40页
        2.4.10 划痕擦伤迁移实验检测细胞迁移情况第40-41页
    2.5 小结第41-42页
第三章 荞麦槲皮素及芦丁对Hep G2细胞作用的比较研究第42-55页
    3.1 引言第42页
    3.2 实验材料与仪器第42页
        3.2.1 细胞、材料及主要试剂第42页
        3.2.2 主要实验仪器第42页
    3.3 实验方法第42-44页
        3.3.1 槲皮素和芦丁的样品制备第42-43页
        3.3.2 细胞培养第43页
        3.3.3 MTT法检测槲皮素和芦丁对Hep G2细胞增殖的影响第43页
        3.3.4 倒置显微镜观察细胞生长的变化第43页
        3.3.5 Hep G2细胞核的形态学观察第43页
        3.3.6 划痕擦伤实验检测细胞迁移第43-44页
        3.3.7 流式细胞术检测细胞内活性氧ROS第44页
        3.3.8 总抗氧化能力T-AOC测定第44页
    3.4 实验结果第44-53页
        3.4.1 MTT法检测槲皮素和芦丁对Hep G2细胞增殖的影响第44-46页
        3.4.2 倒置显微镜观察细胞生长的变化第46-47页
        3.4.3 Hep G2细胞核的形态学观察第47-48页
        3.4.4 划痕擦伤实验检测细胞迁移第48-49页
        3.4.5 流式细胞术检测细胞内活性氧ROS第49-51页
        3.4.6 总抗氧化能力测定第51-53页
    3.5 小结第53-55页
结语第55-56页
参考文献第56-63页
攻读学位期间取得的研究成果第63-64页
致谢第64-65页
个人简介及联系方式第65-67页
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