玉米赤霉烯酮诱导大鼠Leydig细胞凋亡及自噬保护作用

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玉米赤霉烯酮(Zearalenone, ZEA)是一种非甾体雌激素样作用的霉菌毒素,它广泛存在于世界各地谷类食品中。ZEA具有生殖毒性、遗传毒性和免疫毒性等。然而关于ZEA暴露对雄性动物睾丸间质细胞(Leydig cells)凋亡和自噬的研究报道较少,为探究ZEA雄性生殖毒性的机理,本实验以分离的大鼠原代睾丸间质细胞建立模型,对ZEA在体外诱导Leydig细胞凋亡与自噬、诱导凋亡的信号转导通路以及自噬与凋亡的关系进行了研究。主要研究内容如下:1.ZEA诱导Leydig细胞凋亡。以0,2.5,5,10,20μg/mL的ZEA处理原代Leydig细胞12h, MTT法检测ZEA抑制Leydig细胞的活力影响;Hochest33258染色和透射电镜观察细胞核形态的变化;Annexin V-FITC/PI双荧光染色法定量检测ZEA对Leydig细胞凋亡的变化。结果显示,不同浓度的ZEA处理Leydig细胞12h后,细胞活率极显著低于对照组(p<0.01);20μg/mL的ZEA处理后12h后,细胞核发生明显的固缩、染色质凝聚等凋亡特征;电子显微镜观察到ZEA处理的Leydig细胞发生染色质边缘化、浓染、核固缩以及包内出现空泡等现象;Annexin V-FITC/PI双荧光染色流式细胞术检测显示,与对照组比较,ZEA处理组凋亡率显著升高(p<0.05),随着ZEA剂量的增加,细胞凋亡率逐渐升高,呈现出一定的剂量依赖性关系。结果表明,ZEA可诱导Leydig细胞的凋亡、抑制Leydig细胞的生长,从而影响睾酮的分泌。2.ZEA诱导Leydig细胞凋亡信号转导通路。以0,2.5,5,10,20μg/mL的ZEA处理原代Leydig细胞12h, JC-1探针检测线粒体膜电位的变化情况;Western blot检测凋亡相关蛋白Bax、Bcl-2、Caspase以及PARP的表达变化;Western blot检测细胞色素c(cytochrome c,Cyt c)的释放情况。结果显示,不同浓度的ZEA处理Leydig细胞后,与对照组比较,线粒体膜电位显著降低(p<0.05),随ZEA染毒剂量的增加,线粒体膜电位显著降低,并呈现出一定的剂量依赖性关系;Western blot检测Bax与Bcl-2结果显示,ZEA处理Leydig细胞后能够分别上调Bax和下调Bcl-2蛋白表达,与对照组比较,在10μg/mL和20μg/mL的ZEA处理组中Bax/Bcl-2的比率明显增加(p<0.05);不同浓度的ZEA处理Leydig细胞后,与对照组比,线粒体中的Cyt c表达量下降(p<0.05)并且细胞浆中的Cyt c表达上调;ZEA处理后,蛋白Capsase-3、Capsase-9和PAPR活化表达上调。结果表明,ZEA通过调控Bcl-2和Bax促使线粒体发生去极化,释放Cyt c至包浆激活线粒体途径,随后激活Caspase级联反应最终诱发凋亡发生。3.ZEA对Leydig细胞自噬的影响。以0,2.5,5,10μg/mL的ZEA处理原代Leydig细胞12h,采用免疫荧光与流式细胞术分析检测吖啶橙(Acridine orange, AO)染色后Leydig细胞中酸性囊泡的变化;Western blot检测自噬标志性蛋白LC3和Beclin-1的表达变化;采用免疫荧光和透射电镜分别观察LC3聚点现象和自噬泡的形成。结果显示,不同浓度的ZEA处理Leydig细胞12h后,与对照组比较,细胞中酸性囊泡数量显著增加(p<0.05); Western blot分析自噬标志性蛋白LC3和Beclin-1的表达变化显示,不同浓度的ZEA处理组LC3和Beclin-1蛋白表达量显著高于对照组(p<0.05);免疫荧光观察LC3聚点现象,分析显示,ZEA处理Leydig细胞后出现明显聚点(p<0.05),电子显微镜观察到ZEA处理的Leydig细胞形成自噬泡等典型特征。结果表明,ZEA能够提高大鼠Leydig细胞的自噬水平。4.自噬在ZEA诱导Leydig细胞凋亡中的作用。ZEA联合自噬激活剂(rapamycin,RAP)和自噬抑制剂(chloroquine, CQ)处理Leydig细胞,Wstern blot检测RAP和CQ分别对自噬蛋白LC3的影响;Annexin V-FITC/PI双荧光染色流式细胞术检测Leydig细胞凋亡变化。结果显示,ZEA与RAP联合处理Leydig细胞后与对照组比较,LC3-Ⅱ蛋白表达明显上调(p<0.05), ZEA与CQ联合处理组与对照组比较,LC3-Ⅱ蛋白表达明显上调(p<0.05); Annexin V-FITC/PI双荧光染色流式细胞术检测结果显示,在ZEA诱导的自噬中,RAP能够极显著降低Leydig细胞的凋亡率(p<0.01),CQ能够极显著抑制Leydig细胞的凋亡率(p<0.01)。结果表明,在ZEA诱导Leydig细胞自噬过程中,RAP与CQ能分别激活自噬和抑制自噬。激活自噬能降低凋亡,抑制自噬能够促进凋亡,在ZEA诱导的凋亡事件中,自噬可能扮演保护细胞的角色。实验揭示了ZEA通过线粒体途径信号通路诱导大鼠Leydig细胞发生凋亡,从而抑制其生长的规律,同时发现ZEA能够提高Leydig细胞的自噬水平,自噬能够延迟凋亡的发生。
中文摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
符号说明第11-13页
上篇 文献综述第13-25页
    第一章 细胞凋亡和自噬第13-20页
        1 细胞凋亡第13-16页
            1.1 内源性途径第13-14页
            1.2 外源性途径第14-15页
            1.3 Caspase家族/Bcl-2家族第15-16页
        2 细胞自噬第16-18页
            2.1 自噬的过程第16-18页
            2.2 自噬过程的调控第18页
        3 凋亡与自噬第18-20页
    第二章 玉米赤霉烯酮研究进展第20-25页
        1 ZEA的简介第20-22页
            1.1 ZEA的结构第20-21页
            1.2 ZEA的污染状况第21-22页
        2 ZEA的一般毒性第22-23页
            2.1 生殖发育毒性第22页
            2.2 免疫毒性第22-23页
            2.3 遗传毒性第23页
            2.4 ZEA对肿瘤发生的影响第23页
            2.5 ZEA的细胞毒性第23页
        3 ZEA的雄性生殖毒性及其机理第23-25页
下篇 实验部分第25-63页
    第三章 ZEA诱导大鼠LEYDIG细胞凋亡第25-34页
        1 材料第25-26页
            1.1 实验动物第25页
            1.2 主要试剂第25页
            1.3 主要仪器第25-26页
        2 方法第26-29页
            2.1 溶液的配制第26页
            2.2 Leydig细胞原代培养第26-27页
            2.3 分离大鼠Leydig细胞的计数与活率鉴定第27页
            2.4 分离大鼠Leydig细胞的纯度鉴定第27页
            2.5 MTT法第27-28页
            2.6 Hochest 33258染色第28页
            2.7 透射电镜观察第28页
            2.8 流式细胞术检测凋亡第28-29页
            2.9 统计学分析第29页
        3 结果与分析第29-32页
            3.1 细胞活率及纯度第29页
            3.2 ZEA对大鼠睾丸间质细胞活力的影响第29-30页
            3.3 Hoches 33258染色第30-31页
            3.4 透射电镜观察第31页
            3.5 流式细胞术定量测定细胞凋亡第31-32页
        4 讨论第32-33页
        5 小结第33-34页
    第四章 ZEA诱导LEYDIG细胞凋亡信号转导通路第34-48页
        1 材料第34-35页
            1.1 实验动物第34页
            1.2 主要试剂第34页
            1.3 主要仪器第34-35页
        2 方法第35-37页
            2.1 免疫印迹第35-37页
            2.2 JC-1测定线粒体膜电位第37页
            2.3 统计学分析第37页
        3 结果与分析第37-46页
            3.1 线粒体膜电位额变化第37-38页
            3.2 ZEA对Leydig细胞中的Bax和Bcl-2表达的影响第38-39页
            3.3 细胞色素C的释放第39-40页
            3.4 Caspase级联反应在ZEA诱导大鼠Leydig细胞凋亡中的作用第40-41页
            3.5 Z-VAD-fmk对Leydig细胞的保护作用第41-42页
            3.6 Z-VAD-fmk对Leydig细胞凋亡的影响第42-44页
            3.7 Z-VAD-fmk对ZEA诱导Lyedig细胞Caspase-9,-3活性的影响第44-45页
            3.8 Z-VAD-fmk对ZEA诱导Lyedig细胞PARP活性影响第45-46页
        4 讨论第46-47页
        5 小结第47-48页
    第五章 ZEA诱导大鼠LEYDIG细胞自噬第48-56页
        1 材料第48-49页
            1.1 主要试剂第48页
            1.2 主要仪器第48-49页
        2 方法第49-50页
            2.1 酸性囊泡(AVOs)镜检观察第49页
            2.2 AO染色后FCM定量分析AVOs第49页
            2.3 ZEA处理后对Leydig细胞自噬相关蛋白表达的影响第49页
            2.4 ZEA处理后的Leydig细胞中自噬LC3转移与定位第49-50页
            2.5 透射电镜观察自噬泡第50页
        3 结果第50-54页
            3.1 AVOs镜检观察第50页
            3.2 AO染色后FCM定量分析第50-52页
            3.3 ZEA处理Leydig细胞后标志性自噬蛋白的表达第52-53页
            3.4 ZEA处理后的Leydig细胞中自噬LC3转移与定位第53-54页
            3.5 透射电镜观察ZEA处理Leydig细胞机构变化第54页
        4 讨论第54-55页
        5 小结第55-56页
    第六章 自噬在ZEA诱导LEYDIG细胞凋亡中的作用第56-63页
        1 材料第56页
            1.1 主要试剂第56页
            1.2 主要仪器第56页
        2 方法第56-57页
            2.1 RAP和CQ对ZEA处理的Leydig细胞LC3蛋白的影响第56-57页
            2.2 自噬延迟凋亡的作用第57页
        3 结果第57-61页
            3.1 自噬诱导剂RAP对ZEA处理的Leydig细胞LC3蛋白的影响第57-58页
            3.2 自噬抑制剂CQ对ZEA处理的Leydig细胞LC3蛋白的影响第58-59页
            3.3 自噬延迟凋亡的作用第59-61页
        4 讨论第61-62页
        5 小结第62-63页
结论第63-64页
参考文献第64-74页
致谢第74-75页
攻读学位期间发表的学术论文目录第75-76页
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