摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
第1章 绪论 | 第10-23页 |
1.1 腈水解酶 | 第10-14页 |
1.1.1 腈水解酶的简介 | 第10-12页 |
1.1.2 腈水解酶在有机合成中的应用 | 第12-14页 |
1.2 影响酶催化的重要因素 | 第14-17页 |
1.2.1 诱导剂 | 第14-15页 |
1.2.2 金属离子 | 第15页 |
1.2.3 温度和pH | 第15页 |
1.2.4 反应介质的影响 | 第15-17页 |
1.3 酶分子改造 | 第17-19页 |
1.3.1 化学修饰 | 第17-19页 |
1.3.2 生物酶工程法 | 第19页 |
1.4 酶的共价载体固定化研究 | 第19-21页 |
1.4.1 酶的固定化方法研究 | 第19-21页 |
1.4.2 固定化酶的应用研究 | 第21页 |
1.5 本课题的研究意义、目的和内容 | 第21-23页 |
第2章 腈水解酶的分离、纯化以及部分酶学性质研究 | 第23-35页 |
2.1 前言 | 第23页 |
2.2 实验中的材料和仪器 | 第23-25页 |
2.2.1 主要实验材料 | 第23-24页 |
2.2.2 主要仪器设备 | 第24页 |
2.2.3 培养基和缓冲液的配置 | 第24-25页 |
2.3 实验分析方法 | 第25-28页 |
2.3.1 氨基腈化学合成 | 第25页 |
2.3.2 底物稳定性的研究 | 第25页 |
2.3.3 Bradford法测定蛋白质含量 | 第25-26页 |
2.3.4 重组腈水解酶的诱导表达 | 第26页 |
2.3.5 腈水解酶的亲和层析纯化技术 | 第26页 |
2.3.6 SDS-PAGE蛋白电泳 | 第26-27页 |
2.3.7 酶活力测定 | 第27页 |
2.3.8 温度和pH对酶活性的影响 | 第27页 |
2.3.9 腈水解酶有机溶剂耐受性以及助溶剂浓度对酶活力的影响的研究 | 第27-28页 |
2.3.10 不同缓冲液pH值对腈水解酶立体选择性的影响 | 第28页 |
2.4 结果与讨论 | 第28-34页 |
2.4.1 化学合成氨基腈的稳定性研究 | 第28-30页 |
2.4.2 腈水解酶纯化结果 | 第30-31页 |
2.4.3 腈水解酶的最适反应温度和pH | 第31-32页 |
2.4.4 腈水解酶有机溶剂耐受性及助溶剂浓度对酶活力的影响 | 第32-33页 |
2.4.5 不同缓冲液pH值对腈水解酶立体选择性的影响 | 第33-34页 |
2.5 本章小结 | 第34-35页 |
第3章 重组菌腈水解酶的固定化研究 | 第35-48页 |
3.1 前言 | 第35页 |
3.2 实验中的材料和仪器 | 第35-36页 |
3.2.1 主要实验材料 | 第35-36页 |
3.2.2 主要实验仪器 | 第36页 |
3.3 实验部分 | 第36-37页 |
3.3.1 载体活化 | 第36-37页 |
3.3.2 腈水解酶的固定化的研究 | 第37页 |
3.3.3 固定化酶的酶活力测定 | 第37页 |
3.4 结果与讨论 | 第37-47页 |
3.4.1 腈水解酶氨基载体的固定化条件优化 | 第37-42页 |
3.4.2 腈水解酶环氧载体的固定化条件优化 | 第42-47页 |
3.5 本章小结 | 第47-48页 |
第4章 两种载体固定化酶的酶学性质研究 | 第48-57页 |
4.1 前言 | 第48页 |
4.2 实验中的材料及仪器 | 第48-49页 |
4.2.1 主要实验材料 | 第48页 |
4.2.2 主要实验仪器 | 第48-49页 |
4.3 实验方法 | 第49-50页 |
4.3.1 固定化酶的最适反应温度的测定 | 第49页 |
4.3.2 固定化酶的最适反应pH测定 | 第49页 |
4.3.3 固定化酶的pH稳定性研究 | 第49页 |
4.3.4 固定化酶的热稳定性测定 | 第49页 |
4.3.5 固定化酶的甲醇耐受性研究 | 第49页 |
4.3.6 底物浓度对腈水解酶酶活力的影响 | 第49-50页 |
4.4 结果与讨论 | 第50-56页 |
4.4.1 两种固定化酶的最适反应温度 | 第50-51页 |
4.4.2 两种固定化酶的最适反应pH | 第51-52页 |
4.4.3 两种固定化酶的pH稳定性研究 | 第52-53页 |
4.4.4 两种固定化酶的温度稳定性研究 | 第53-55页 |
4.4.5 两种固定化酶的甲醇耐受性研究 | 第55页 |
4.4.6 最适底物浓度的选择 | 第55-56页 |
4.5 本章小结 | 第56-57页 |
第5章 结论与展望 | 第57-59页 |
5.1 结论 | 第57-58页 |
5.2 展望 | 第58-59页 |
第6章 泥螺多糖的分离、纯化,结构鉴定及生物活性研究 | 第59-73页 |
6.1 前言 | 第59页 |
6.2 实验中的材料及仪器 | 第59-60页 |
6.2.1 主要实验材料 | 第59-60页 |
6.2.2 主要实验仪器 | 第60页 |
6.3 实验方法 | 第60-63页 |
6.3.1 总糖、蛋白含量、硫含量以及糖醛酸的测定 | 第60页 |
6.3.2 泥螺多糖的分离、纯化 | 第60-61页 |
6.3.3 多糖均一性以及分子量的测定 | 第61页 |
6.3.4 泥螺多糖的单糖组成测定 | 第61页 |
6.3.5 单糖的构型测定 | 第61-62页 |
6.3.6 多糖的甲基化研究 | 第62页 |
6.3.7 多糖的红外光谱分析 | 第62页 |
6.3.8 多糖的抗癌活性分析 | 第62-63页 |
6.4 结果与讨论 | 第63-73页 |
6.4.1 多糖的化学组成 | 第63-64页 |
6.4.2 泥螺多糖分离、纯化结果 | 第64页 |
6.4.3 多糖均一性以及分子量的测定结果 | 第64-66页 |
6.4.4 泥螺多糖的单糖组成以及单糖构型结果 | 第66-69页 |
6.4.5 多糖甲基化的结果以及硫酸根位置的分析 | 第69-70页 |
6.4.6 泥螺多糖红外光谱分析结果 | 第70-71页 |
6.4.7 泥螺多糖的抗癌活性与结构之间的分析 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-81页 |
攻读硕士学位期间发表论文 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |