木霉菌株产酶培养及其特定底物酶解过程研究--Studies on Cellulase-produced Fermentation of Trichoderma Strains and Enzymatic Hydrolysis of the Specific Substrate

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随着能源危机加重和粮食价格上涨,近几年非粮燃料乙醇研发与生产日益受到重视,制约非粮燃料乙醇工业化生产的纤维素酶成本问题,一直是研发的热点和难点。本文以蒸汽爆破胡枝子为特定底物,从产纤维素酶的四种木霉属菌株入手,分别研究了培养方式、培养基组成以及诱变条件等对菌株生产纤维素酶的影响;以不同纤维素底物诱导生产纤维素酶,研究了特异性底物酶解的糖化率及底物残渣的结构变化,并通过比较不同后处理特定底物酶解液中的蛋白浓度、滤纸酶活力以及β-葡萄糖苷酶活力,进一步分析了木质纤维原料复杂的酶水解过程;最后研究了表面活性剂对纤维素酶活力以及特定底物糖化效率的促进作用,主要结论如下:①绿色木霉、拟康氏木霉及康宁木霉液态产酶发酵15天后获得最高滤纸酶活力,分别为0.36、0.24及0.36 FPU/mL,里氏木霉培养11天后获得最高滤纸酶活力0.26FPU/mL。绿色木霉以蒸汽爆破胡枝子为底物进行固态发酵的培养基固液比为1/3.5,碳氮比为5/1,初始pH值为3.5,培养第7天时获得最高滤纸酶活力0.71 FPU/mL。该菌株经过紫外线和硫酸二乙酯复合诱变后滤纸酶活力提高到1.52 FPU/mL。菌株生长力旺盛,用孢子悬液直接接种比用PDA培养基做种子时生产的纤维素酶活力更高,不仅节省了产酶培养时间,还减少了培养过程中的成本。②绿色木霉在蒸汽爆破胡枝子、滤纸、微晶纤维素、羧甲基纤维素钠为底物的四种培养基中生产的纤维素酶在相同条件下水解蒸汽爆破胡枝子的糖化率分别为17.22%,10.63%,9.55%和10.27%。上述结果说明用蒸汽爆破胡枝子培养菌株分泌的纤维素酶对该原料有更好的降解能力,且底物残渣纤维的结晶度、聚合度以及扫描电镜分析可以更好的说明纤维素酶对底物的作用效果。③与其他菌株相比,绿色木霉的纤维素酶对蒸汽爆破胡枝子的原料、综纤维素、纤维素的糖化率最高,分别为32.42%,72.27%,90.09%。通过测定水解液中的蛋白浓度、滤纸酶活力以及β-葡萄糖苷酶活力可知绿色木霉纤维素酶对底物的糖化率最高是因为其酶系的协同作用最好,酶与底物之间的吸附解吸效率最高、有效吸附能力最强,更适合用于水解预处理过的木质纤维原料。木质纤维原料中的木质素与纤维素酶形成稳定的无效吸附,纤维素酶即使解吸到水解液中也无法再恢复其以往活性。④表面活性剂Tween 80、皂荚皂素和茶皂素能够有效提高纤维素酶的酶活力和协同作用,且糠醛渣的糖化率也由25.85%分别提升至33.62%,34.52%,54.07%,加入茶皂素后不同酶水解蒸汽爆破胡枝子的糖化率由22.14%和25.59%提高为23.63%和34.41%。表面活性剂能够有效提高纤维素酶系中三组分的酶活力以及它们之间的协同作用。天然表面活性剂皂荚皂素和茶皂素对纤维素酶的促进作用优于化学表面活性剂Tween80。在酶解过程中茶皂素本身的β-1,4-糖苷键也会遭到破坏,提高绿色木霉纤维素酶的用量,反应48 h后水解液的表面张力依然稳定,说明该酶不会破坏茶皂素的功能性结构,水解木质纤维原料时更适合加入茶皂素来提高酶解效率。在特定的木质纤维原料上进行木霉属菌株产纤维素酶培养、纤维素酶水解木质纤维原料过程中酶蛋白吸附解吸及天然表面活性剂促进木质纤维素酶解等研究成果对纤维素乙醇工业化过程有重要意义。
摘要第3-5页
ABSTRACT第5-6页
1. 引言第10-20页
    1.1. 研究背景第10-12页
    1.2. 纤维素酶的研究第12-14页
        1.2.1. 纤维素酶的结构第12页
        1.2.2. 纤维素酶的反应机制第12-14页
        1.2.3. 纤维素酶生产的调控第14页
    1.3. 产纤维素酶菌株第14-15页
        1.3.1. 野生型菌株第14-15页
        1.3.2. 诱变菌株第15页
    1.4. 纤维素酶的生产方法第15-16页
        1.4.1. 固态发酵第16页
        1.4.2. 深层液态发酵第16页
    1.5. 表面活性剂对纤维素酶的影响第16-18页
        1.5.1. 天然表面活性剂第16-17页
        1.5.2. 表面活性剂在酶解发酵中的应用第17页
        1.5.3. 表面活性剂对酶解机制的影响第17-18页
    1.6. 研究内容和目标第18-20页
2. 四种木霉属菌株培养及纤维素酶发酵条件优化第20-40页
    2.1. 实验材料第20-21页
    2.2. 实验方法第21-25页
        2.2.1. 培养基的配制第21页
        2.2.2. 产纤维素酶菌株的种子培养第21-22页
        2.2.3. 液态发酵生产纤维素酶第22页
        2.2.4. 固态发酵生产纤维素酶第22-23页
        2.2.5. 纤维素酶粗酶液的浓缩纯化第23页
        2.2.6. 纤维素酶酶活力的测定第23-25页
        2.2.7. 纤维素酶溶液中蛋白浓度的测定第25页
    2.3. 结果与讨论第25-39页
        2.3.1. 产纤维素酶菌株的种子培养第25-26页
        2.3.2. 液态发酶生产纤维素酶第26-31页
        2.3.3. 固态发酵生产纤维素酶第31-36页
        2.3.4. 纤维素酶粗酶液浓缩纯化第36-39页
    2.4. 小结第39-40页
3. 底物对绿色木霉产酶影响及酶水解过程研究第40-52页
    3.1. 实验材料第40-41页
    3.2. 实验方法第41-43页
        3.2.1. 不同底物诱导生产纤维素酶第41页
        3.2.2. 纤维素酶的酶活力及分子量的测定第41-42页
        3.2.3. 蒸汽爆破胡枝子酶水解过程第42页
        3.2.4. 水解液糖分析第42页
        3.2.5. 水解后底物残渣结晶度、聚合度的测定第42-43页
        3.2.6. 水解后底物残渣扫描电镜分析第43页
    3.3. 结果与讨论第43-51页
        3.3.1. 不同底物发酵的纤维素酶的酶活力第43-45页
        3.3.2. SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳及酶谱分析第45-46页
        3.3.3. 纤维素糖化结果第46-47页
        3.3.4. 水解后底物残渣结晶度、聚合度的分析第47-49页
        3.3.5. 水解后底物残渣扫描电镜分析第49-51页
    3.4. 小结第51-52页
4. 四种纤维素酶对蒸汽爆破胡枝子不同后处理原料酶水解过程比较第52-76页
    4.1. 实验材料第52-53页
    4.2. 实验方法第53-54页
        4.2.1. 纤维素酶的生产第53页
        4.2.2. 纤维素酶的酶活力测定第53页
        4.2.3. 综纤维素、纤维素制备第53页
        4.2.4. 蒸汽爆破胡枝子不同后处理原料酶水解第53-54页
        4.2.5. 水解液糖分析第54页
    4.3. 结果与讨论第54-75页
        4.3.1. 不同菌株生产的纤维素酶酶活力第54-55页
        4.3.2. 水解液糖分析第55-60页
        4.3.3. 酶水解液中的蛋白浓度第60-64页
        4.3.4. 水解液中的滤纸酶活力第64-69页
        4.3.5. 水解液中的β-葡萄糖苷酶活力第69-75页
    4.4. 小结第75-76页
5. 以蒸汽爆破胡枝子为特定底物的绿色木霉菌株复合诱变第76-86页
    5.1. 实验材料第76-77页
    5.2. 实验方法第77-79页
        5.2.1. 绿色木霉在特定底物中的种子培养第77页
        5.2.2. 绿色木霉菌株的诱变第77-78页
        5.2.3. 液态发酵生产纤维素酶第78-79页
        5.2.4. 纤维素酶的酶活力测定第79页
    5.3. 结果与讨论第79-84页
        5.3.1. 绿色木霉的紫外线诱变第79-81页
        5.3.2. 绿色木霉的硫酸二乙酯诱变第81-82页
        5.3.3. 绿色木霉菌株在特定底物上的物理、化学复合诱变第82-84页
    5.4. 小结第84-86页
6. 表面活性剂对纤维素酶活力的影响第86-114页
    6.1. 实验材料第86页
    6.2. 实验方法第86-89页
        6.2.1. 待测纤维素酶溶液的准备第86页
        6.2.2. 复配纤维素酶的酶活力第86-87页
        6.2.3. 表面活性剂Tween 80对酶活力的影响第87页
        6.2.4. 表面活性剂皂荚皂素以及茶皂素对酶活力的影响第87页
        6.2.5. 纤维素酶系中各种酶活力的测定方法第87页
        6.2.6. 溶液中的表面张力的测定方法第87-89页
    6.3. 结果与讨论第89-112页
        6.3.1. 纤维素酶系中的各种酶活力第89-91页
        6.3.2. 复配纤维素酶的滤纸酶活力第91-93页
        6.3.3. 表面活性剂Tween 80对酶活力的影响第93-95页
        6.3.4. 表面活性剂皂荚皂素以及茶皂素对酶活力的影响第95-107页
        6.3.5. 酶活力测定反应液中的表面张力第107-112页
    6.4. 小结第112-114页
7. 表面活性剂对木质纤维素原料酶水解的促进作用第114-130页
    7.1. 实验材料第114-115页
    7.2. 实验方法第115-116页
        7.2.1. 纤维素酶的生产第115页
        7.2.2. 纤维素酶系中各种酶活力的测定方法第115页
        7.2.3. 表而活性剂对底物酶水解的影响第115页
        7.2.4. 水解液糖分析第115-116页
        7.2.5. 溶液中的表面张力的测定方法第116页
    7.3. 结果与讨论第116-127页
        7.3.1. 表面活性剂对糠醛渣酶水解的影响第116-120页
        7.3.2. 表面活性剂对蒸汽爆破胡枝子酶水解的影响第120-127页
    7.4. 小结第127-130页
8. 结论与创新点第130-133页
    8.1. 结论第130-131页
    8.2. 创新点第131页
    8.3. 建议第131-133页
参考文献第133-139页
个人简介第139-140页
导师简介第140-141页
获得成果目录第141-143页
致谢第143页
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