胰腺癌细胞乏氧环境下Kit配基的表达调控机制及功能研究

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目的:胰腺癌是消化道常见的恶性肿瘤,目前手术、放、化疗治疗胰腺癌的效果并不理想。乏氧是胰腺癌组织常见的生长微环境,胰腺癌细胞如何耐受乏氧环境,在乏氧环境中获得生长优势,机制尚未阐明。Kit配基(Kit ligand, KL),即steel因子,肥大细胞生长因子,干细胞因子。Kit配基过表达于多种肿瘤细胞,如胃肠间质肿瘤、小细胞肺癌、神经母细胞瘤、乳腺癌等。KL特异性配基为c-kit,表达于造血干细胞、肥大细胞、生殖细胞和多种肿瘤细胞表面。KL结合c-kit后,引起后者二聚化,通过不同信号传导通路,引起多种生物学效应。Kit配基除了参与造血、胚胎发育等生理活动外,还与多种肿瘤的恶化、转移密切相关。先前的研究表明,乏氧微环境可以诱导Kit配基的表达,Kit配基是促进肿瘤增殖和血管新生的重要因子,也可能是参与胰腺癌代偿乏氧环境的重要因子。本研究旨在探讨Kit配基在胰腺癌乏氧环境中表达的病生理意义及转录调控机制。方法:比较在常氧和乏氧状态下,胰腺癌细胞BxPC-3中KL的表达情况,采用Western blot方法检测KL蛋白表达水平,采用real-time PCR法检测KL mRNA表达水平,从而明确KL参与肿瘤细胞乏氧过程的调控;通过RNA干扰技术分别下调胰腺癌细胞中HIF-1的表达后,检测KL蛋白及mRNA表达水平的变化;进一步采用染色体免疫共沉淀技术CChIP)明确HIF-1是直接调控KL表达,还是间接通过其他转录因子调控KL表达;进而探讨HIF是否参与对KL基因转录的上调表达,构建HIF-1的过表达载体及不同长度的KL基因启动子荧光素酶表达载体,共同转染胰腺癌细胞,采用双荧光素酶分析法,定量检测HIF过表达前后KL基因启动子荧光素酶表达水平;接下来应用Edu MTT、Transwell实验检查HIF与Kit配基对胰腺癌BxPC-3细胞的增殖、迁移及侵袭情况;最后采用免疫组化染色分析胰腺癌组织中KL、HIF-1表达之间的相关性,验证组织中HIF对KL的调控关系,并通过对随诊资料的分析,探讨HIF-1及KL表达水平对胰腺癌预后的影响。结果:Western blot分析结果显示,BxPC-3细胞在常氧条件下即表达低水平的Kit配基,经过乏氧培养后,Kit配基的蛋白表达水平显著升高。作为调节乏氧相关基因的转录因子,HIF-1在乏氧状态下亦显著升高;Real-time PCR的方法分析相关基因的转录表达情况。乏氧情况下Kit配基的表达水平明显增加,与此同时,HIF-1分子的mRNA表达与Kit配基的上调,显示出一定同步性;转染siRNA并乏氧刺激后通过Western blot分析胰腺癌细胞BxPC-3中HIF-1α/Kit配基的蛋白表达较乏氧对照表达均下调,提示干扰HIF-1α对Kit配基有明显的调节作用。染色体免疫共沉淀分析(ChIP)发现HIF-1可以结合于Kit配基的基因启动子区,而在常氧条件下,未检测出HIF-1与Kit配基的结合。将HIF-1过表达载体或者空载体和构建的Kit配基基因启动子区的荧光素酶表达载体共转染入BxPC-3细胞,过表达HIF-1相对于转染空载体组,Kit配基全长基因启动子转录活性明显增加,提示我们HIF-1不仅结合于Kit配基的基因启动子区,而且可以上调其表达。应用流式细胞仪检测BxPC-3细胞证实其c-kit表达,应用不同浓度的Kit配基蛋白,施加外源刺激,发现随着Kit配基浓度的增加,BxPC-3的增殖作用越旺盛。应用Kit配基的中和抗体,施加于乏氧环境下的BxPC-3细胞,可以抑制其增殖作用。应用MTT试验,我们也观察到了相似的结果。Transwell实验发现加入KL的培养液对细胞具有趋化及促迁移的作用,而这种作用能为抗KL的抗体所阻断。收集95例胰腺癌病人的组织学标本,针对HIF-1和Kit配基的免疫组织化学染色。结果显示:HIF-1α蛋白及Kit配基均定位于细胞浆和细胞核,棕黄色颗粒状弥漫分布,胰腺癌组织高表达HIF-1和Kit配基,胰腺癌癌旁组织及正常胰腺组织均不表达或Kit配基的表达水平较低。Spearman’s相关分析,HIF-1和Kit配基在胰腺癌组织中的表达呈正相关。HIF-1和Kit配基的表达和胰腺癌的肿瘤大小、淋巴结转移及TNM分期密切相关,而与性别、年龄、肿瘤部位、分化程度关系不明显。患者预后生存分析结果显示,HIF-1和KL表达水平与胰腺癌患者预后密切相关。结论:综上所述:Kit配基是促进胰腺癌增殖和侵袭的重要细胞因子;乏氧环境下HIF-1是调节Kit配基表达的关键转录因子;通过干预HIF-1和Kit配基信号通路,有可能成为治疗胰腺癌的潜在靶点。
中文摘要第4-6页
Abstracts第6-7页
缩略语/符号说明第10-11页
前言第11-16页
    研究现状、成果第11-14页
    研究目的、方法第14-16页
一、胰腺癌细胞中乏氧微环境对Kit配基表达水平的影响第16-34页
    1.1 材料与仪器第16-20页
    1.2 实验方法第20-26页
        1.2.1 细胞培养和乏氧处理第20页
        1.2.2 Western blot蛋白印迹第20-22页
        1.2.3 实时定量PCR逆转录聚合酶链反应(Real time RT-PCR)第22-25页
        1.2.4 动物实验方法第25-26页
    1.3 结果第26-33页
        1.3.1 乏氧状态下Kit配基及HIF-1在胰腺癌细胞中的蛋白表达第26页
        1.3.2 乏氧状态下Kit配基及HIF-1在胰腺癌细胞中的mRNA表达第26-27页
        1.3.3 RNA干扰HIF-1对Kit配基表达的影响第27-30页
        1.3.4 动物实验中RNA干扰HIF-1对Kit配基表达的影响第30-33页
    1.4 讨论第33-34页
二、HIF-1调节Kit配基表达的分子机制研究第34-46页
    2.1 材料与仪器第34-35页
    2.2 实验方法第35-42页
        2.2.1 染色体免疫共沉淀分析第35-37页
        2.2.2 Kit配基因启动子荧光素酶表达载体的构建第37-41页
        2.2.3 双荧光素酶报告基因检测第41-42页
    2.3 结果第42-44页
        2.3.1 HIF-1直接结合于Kit配基基因启动子区第42页
        2.3.2 HIF-1调节Kit配基转录的具体模式分析第42-44页
    2.4 讨论第44-46页
三、Kit配基在胰腺癌中表达的病生理意义分析第46-57页
    3.1 材料与仪器第46-47页
    3.2 实验方法第47-49页
        3.2.1 Edu细胞增殖实验第47-48页
        3.2.2 MTT细胞存活实验第48页
        3.2.3 Transwell实验第48-49页
    3.3 结果第49-53页
        3.3.1 Kit配基促进胰腺癌细胞增殖第49-52页
        3.3.2 Transwell实验检测结果第52-53页
    3.4 讨论第53-57页
四、胰腺癌组织中HIF-1与Kit配基的表达与及临床病理学分析第57-72页
    4.1 材料与方法第57-58页
    4.2 免疫组织化学染色实验方法第58-60页
    4.3 结果第60-69页
        4.3.1 HIF-1α在胰腺癌组织中的表达第60-62页
        4.3.2 KL在胰腺癌组织中的表达第62-64页
        4.3.3 HIF-1α及KL在胰腺癌组织中的表达及相关性分析第64-65页
        4.3.4 胰腺癌组织HIF-1和Kit配基的表达与临床病理学及预后的关系第65-69页
    4.4 讨论第69-72页
全文结论第72-73页
论文创新点第73-74页
参考文献第74-79页
发表论文和参加科研情况说明第79-81页
综述第81-100页
    参考文献第94-100页
致谢第100页
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