SELEX技术体外筛选单增李斯特菌适配子及其荧光快速检测方法的建立

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目的:本文采用SELEX技术,以单核细胞增生李斯特菌为靶目标,筛选得到一组拥有高亲和力和高特异性的寡核苷酸适配子,并初步建立单核细胞增生李斯特菌的荧光快速检测方法。方法:1.以单核细胞增生李斯特菌为靶目标,人工合成两端为固定序列,中间含37个随机序列,全长为80nt长度的ssDNA文库。应用SELEX技术进行反复9轮筛选,得到一组高亲和力和高特异性的适配子群。为了减少ssDNA与其他细菌的交叉结合,在第5轮用蜡样芽孢杆菌进行反筛,在第7轮用英诺克李斯特菌进行反筛。利用地高辛-抗地高辛碱性磷酸酶显色系统检测各轮筛选产物与单核细胞增生李斯特菌的结合率。2.最后一轮的筛选产物进行扩增、纯化,克隆、测序。应用Chromas2软件分析适配子的测序峰图,DNA MAN软件对测序出来的适配子序列一级结构进行同源性分析,并用RNA Structure软件预测序列的二级结构。3.通过对适配子结合力和特异性检测,选取最佳的一条适配子,运用荧光结合机制来设计分别标记有FAM和TAMRA的两种荧光适配子,初步建立荧光标记适配子直接检测法(FLADA)。结论:1.随着筛选轮数的增加,筛选条件越来越严格,最终得到一组高亲和力和高特异性的适配子群,初步建立了SELEX体外筛选单核细胞增生李斯特菌适配子的技术。利用克隆技术成功的将筛选获得的适配子进行克隆,测序,并将得到的18条序列分为A、B、C三组。A组中的15条序列的随机区片段长度和预期片段的随机区长度一致,B组中2条序列的随机区片段短于预期片段的随机区长度,C组中的1条序列的随机区片段比预期的多了一个碱基。运用DNAMAN软件分析18条克隆适配子一级结构的同源性,除H09序列剩下的17条序列都有较高的同源性,说明经过9轮SELEX筛选,一级结构同源的适配子得到了一定程度的富集。应用RNA Structure软件模拟适配子的二级结构,以茎环结构为主。2.利用地高辛-抗地高辛碱性磷酸酶显色体系对适配子的结合率进行测定,从得到的18个克隆适配子中选取结合率最高的E01号适配子,并将E01号适配子与多种菌种结合,进行特异性检测,E01号适配子与目标菌单核细胞增生李斯特菌的结合力远远大于其他菌种,高达1.017,说明了E01号适配子的高特异性。3.选择FAM和TAMRA两种荧光基团对E01号适配子进行标记,荧光显微镜下可以直接观测到适配子与单核细胞增生李斯特菌孵育后有较强的荧光,而与蜡样芽孢杆菌和英诺克李斯特菌结合的数量就很少。荧光标记适配子与我们目标菌的检测灵敏度可达10~3/ml。初步建立了荧光基团标记适配子快速检测单核细胞增生李斯特菌的检测方法。
摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
致谢第9-13页
插图清单第13页
表格清单第13-14页
英文缩略词表第14-15页
第一章 绪论第15-24页
    1.1 单核细胞增生李斯特菌概况和危害第15-16页
    1.2 SELEX 技术的发展与应用第16-23页
        1.2.1 经典 SELEX 技术及其原理第16-17页
        1.2.2 适配子(aptamer)的优势第17-20页
        1.2.3 影响 SELEX 筛选的因素第20-21页
        1.2.4 经典 SELEX 技术的发展第21-22页
        1.2.5 SELEX 的应用第22-23页
    1.3 展望第23-24页
第二章 随机 ssDNA 文库的 PCR 扩增条件的摸索第24-32页
    2.1 实验材料第24-25页
        2.1.1 主要试剂第24-25页
        2.1.2 随机 ssDNA 文库的构建、引物的设计与合成第25页
        2.1.3 主要仪器第25页
    2.2 方法第25-26页
        2.2.1 PCR 扩增条件的探索第25页
        2.2.2 PCR 产物的纯化第25-26页
        2.2.3 PCR 产物的 12%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳第26页
    2.3 结果第26-29页
        2.3.1 退火温度对 PCR 扩增的影响第26-27页
        2.3.2 循环次数对 PCR 扩增的影响第27-28页
        2.3.3 模板量对 PCR 扩增的影响第28页
        2.3.4 引物浓度对 PCR 扩增的影响第28-29页
        2.3.5 Mix 含量对 PCR 扩增的影响第29页
    2.4 讨论第29-31页
    2.5 小结第31-32页
第三章 SELEX 技术筛选单增李斯特菌适配子方法的建立第32-57页
    3.1 实验材料第32-36页
        3.1.1 随机 ssDNA 文库的构建、引物的设计与合成第32页
        3.1.2 单增李斯特菌悬液及反筛菌菌悬液的制备第32页
        3.1.3 主要试剂第32-35页
        3.1.4 主要仪器第35-36页
    3.2 方法第36-39页
        3.2.1 SELEX 筛选过程第36-37页
        3.2.2 磁珠捕获法制备 ssDNA 文库第37页
        3.2.3 SELEX 的消减筛选第37-38页
        3.2.4 筛选的 ssDNA 文库与单增李斯特菌特异结合率的测定第38页
        3.2.5 筛选产物的克隆第38-39页
        3.2.6 测序第39页
        3.2.7 适配子的软件分析第39页
    3.3 结果第39-53页
        3.3.1 SELEX 筛选过程第39-41页
        3.3.2 筛选的 ssDNA 文库与单增李斯特菌特异结合率的测定第41-42页
        3.3.3 克隆适配子一级结构分析第42-49页
        3.3.4 适配子二级结构模拟分析第49-53页
    3.4 讨论第53-56页
        3.4.1 随机 ssDNA 文库及引物的设计第53-54页
        3.4.2 文库用量和靶目标浓度的选择第54页
        3.4.3 反向筛选对筛选结果的影响第54-55页
        3.4.4 次级文库的制备第55页
        3.4.5 筛选轮数的选择第55页
        3.4.6 PCR 扩增产物的纯化第55页
        3.4.7 适配子的一级结构第55-56页
        3.4.8 适配子的二级结构第56页
    3.5 小结第56-57页
第四章 适配子的鉴定、分析与应用第57-68页
    4.1 实验材料第57-58页
        4.1.1 标记引物的合成第57页
        4.1.2 主要试剂第57-58页
        4.1.3 主要仪器第58页
    4.2 方法第58-60页
        4.2.1 克隆子质粒的提取第58页
        4.2.2 地高辛标记的 ssDNA 的制备第58页
        4.2.3 挑选的适配子与单增李斯特菌及反筛菌结合力的测定第58页
        4.2.4 适配子 E01 和 F01 与单增李斯特菌亲和力解离常数的测定第58-59页
        4.2.5 E01 号适配子群落的特异性检测第59页
        4.2.6 建立荧光基团标记适配子 E01 快速鉴定单增李斯特菌的检测方法第59页
        4.2.7 适配子 E01 的灵敏度检测比较第59-60页
    4.3 结果第60-66页
        4.3.1 挑选的适配子与单增李斯特菌及反筛菌结合力的测定结果第60-61页
        4.3.2 适配子 E01 和 F01 与单增李斯特菌饱和力的测定结果第61-62页
        4.3.3 E01 号适配子群落的特异性检测第62-63页
        4.3.4 荧光显微镜观察结果第63-65页
        4.3.5 适配子 E01 的灵敏度检测比较第65-66页
    4.4 讨论第66-67页
    4.5 小结第67-68页
第五章 结论第68-69页
参考文献第69-73页
攻读硕士学位期间发表的论文第73-75页
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