摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 文献综述 | 第13-37页 |
1.1 引言 | 第13-14页 |
1.2 养殖贝类主要疾病——弧菌病 | 第14-20页 |
1.2.1 贝类弧菌病的文献报道 | 第14-15页 |
1.2.2 弧菌的种类与鉴定手段 | 第15-19页 |
1.2.2.1 弧菌的生化鉴定 | 第15-17页 |
1.2.2.2 弧菌的分子鉴定 | 第17-19页 |
1.2.3 弧菌的流行病学与致病机理 | 第19-20页 |
1.3. 贝类的免疫应答 | 第20-28页 |
1.3.1 直接效应免疫相关基因——溶菌酶 | 第21-24页 |
1.3.1.1 溶菌酶的种类与功能 | 第22页 |
1.3.1.2 i 型溶菌酶 | 第22-24页 |
1.3.2 间接效应免疫相关基因——热休克蛋白 | 第24-28页 |
1.3.2.1 热休克蛋白的种类与功能 | 第24-26页 |
1.3.2.2 热休克蛋白70 | 第26-28页 |
1.4 贝类的抗性选育 | 第28-34页 |
1.4.1 贝类抗性选育的原理 | 第28-30页 |
1.4.1.1 数量遗传学的兴起 | 第28-29页 |
1.4.1.2 贝类抗性选育的可行性 | 第29页 |
1.4.1.3 贝类抗病指标的选择 | 第29-30页 |
1.4.2 贝类抗性选育的方法 | 第30-34页 |
1.4.2.1 表型选择与基因型选择 | 第30-33页 |
1.4.2.2 品系选育与家系选育 | 第33-34页 |
1.5 研究的目的和意义 | 第34-37页 |
第二章 文蛤致病菌的分离、鉴定与致病机理分析 | 第37-65页 |
2.1 引言 | 第37-38页 |
2.2 文蛤致病菌副溶血弧菌的分离、鉴定、致病力与致病机理分析 | 第38-51页 |
2.2.1 材料与方法 | 第38-41页 |
2.2.1.1 患病文蛤体内细菌的分离与形态学分析 | 第38页 |
2.2.1.2 细菌的分子鉴定 | 第38-39页 |
2.2.1.3 细菌的生化鉴定与抗生素敏感检测 | 第39页 |
2.2.1.4 细菌致病力的初步筛查分析 | 第39-40页 |
2.2.1.5 毒力最强菌株的定量毒力检验 | 第40-41页 |
2.2.1.6 感染文蛤的细胞病理学观察 | 第41页 |
2.2.1.7 毒力基因toxR,tlh,tdh 的检测 | 第41页 |
2.2.1.8 统计分析 | 第41页 |
2.2.2 结果 | 第41-48页 |
2.2.2.1 细菌的分离及其毒力初步筛查分析 | 第41-42页 |
2.2.2.2 菌株MM21 的鉴定 | 第42-45页 |
2.2.2.3 菌株MM21 的定量毒力分析 | 第45-46页 |
2.2.2.4 感染MM21 后文蛤的细胞病理学变化 | 第46-48页 |
2.2.3 讨论 | 第48-51页 |
2.3 文蛤致病菌类弗尼斯弧菌的分离、鉴定、致病力与致病机理分析 | 第51-65页 |
2.3.1 材料与方法 | 第51-53页 |
2.3.1.1 患病文蛤体内细菌的分离与致病力分析 | 第51页 |
2.3.1.2 细菌的分子鉴定 | 第51-52页 |
2.3.1.3 细菌的生化鉴定 | 第52页 |
2.3.1.4 细菌的毒力检测 | 第52-53页 |
2.3.1.5 感染文蛤的细胞病理学观察 | 第53页 |
2.3.1.6 感染文蛤的组织病理学观察 | 第53页 |
2.3.1.7 统计分析 | 第53页 |
2.3.2 结果 | 第53-62页 |
2.3.2.1 菌株MM5 的形态特征 | 第53-54页 |
2.3.2.2 MM5 的分子鉴定结果 | 第54-55页 |
2.3.2.3 MM5 的生化鉴定结果 | 第55-57页 |
2.3.2.4 MM5 的毒力测试 | 第57页 |
2.3.2.5 感染MM5 文蛤的细胞病理学变化 | 第57-59页 |
2.3.2.6 MM5 引起的组织病理学变化 | 第59-62页 |
2.3.3 讨论 | 第62-65页 |
第三章 文蛤免疫相关基因的克隆及其在宿主免疫应答中的功能分析 | 第65-103页 |
3.1 引言 | 第65-66页 |
3.2 文蛤溶菌酶基因的克隆与功能分析 | 第66-83页 |
3.2.1 材料与方法 | 第66-73页 |
3.2.1.1 感染实验与样品采集 | 第66页 |
3.2.1.2 文蛤溶菌酶cDNA 全长的克隆 | 第66-67页 |
3.2.1.3 序列特性分析 | 第67-69页 |
3.2.1.4 文蛤溶菌酶的原核重组表达 | 第69-70页 |
3.2.1.5 重组蛋白的质谱鉴定 | 第70页 |
3.2.1.6 重组蛋白的溶菌酶活性分析 | 第70-71页 |
3.2.1.7 重组蛋白的抗菌活性分析 | 第71-72页 |
3.2.1.8 文蛤溶菌酶转录本的半定量检测 | 第72页 |
3.2.1.9 文蛤溶菌酶多克隆抗体的制备 | 第72-73页 |
3.2.1.10 文蛤溶菌酶蛋白的半定量检测 | 第73页 |
3.2.1.11 统计分析 | 第73页 |
3.2.2 结果 | 第73-82页 |
3.2.2.1 文蛤溶菌酶的序列分析 | 第73-76页 |
3.2.2.2 文蛤溶菌酶重组蛋白的获得和鉴定 | 第76-78页 |
3.2.2.3 文蛤溶菌酶重组蛋白的活性分析 | 第78-80页 |
3.2.2.4 文蛤溶菌酶的组织分布 | 第80页 |
3.2.2.5 弧菌感染引起的文蛤溶菌酶的表达变化 | 第80-82页 |
3.2.3 讨论 | 第82-83页 |
3.3 文蛤热休克蛋白70 的克隆与功能分析 | 第83-103页 |
3.3.1 材料与方法 | 第83-90页 |
3.3.1.1 感染实验与样品采集 | 第83-84页 |
3.3.1.2 文蛤热休克蛋白70 cDNA 全长的克隆 | 第84-85页 |
3.3.1.3 序列特性分析 | 第85-87页 |
3.3.1.4 文蛤热休克蛋白70 转录本的定量检测 | 第87-88页 |
3.3.1.5 文蛤热休克蛋白70 蛋白的定量检测 | 第88-89页 |
3.3.1.6 统计分析 | 第89-90页 |
3.3.2 结果 | 第90-99页 |
3.3.2.1 文蛤热休克蛋白70 的序列分析 | 第90-93页 |
3.3.2.2 弧菌感染引起的文蛤热休克蛋白70 mRNA 的空间表达变化 | 第93-95页 |
3.3.2.3 弧菌感染引起的文蛤热休克蛋白70 mRNA 的时间表达变化 | 第95-96页 |
3.3.2.4 弧菌感染引起的文蛤热休克蛋白70 蛋白的空间表达变化 | 第96-99页 |
3.3.3 讨论 | 第99-103页 |
第四章 弧菌抗性文蛤群体的选育及溶菌酶SNP 在选育群体中的分析 | 第103-123页 |
4.1 引言 | 第103-104页 |
4.2 弧菌抗性文蛤群体的培育 | 第104-109页 |
4.2.1 材料与方法 | 第104-107页 |
4.2.1.1 文蛤亲本的弧菌感染实验 | 第104页 |
4.2.1.2 文蛤的催产与受精 | 第104-105页 |
4.2.1.3 文蛤幼虫与稚贝的培育 | 第105页 |
4.2.1.4 文蛤F1 子代的弧菌感染实验 | 第105-106页 |
4.2.1.5 统计分析 | 第106-107页 |
4.2.2 结果 | 第107-108页 |
4.2.2.1 弧菌抗性文蛤亲本(09-P)及其F1 子代(09RP)的获得 | 第107-108页 |
4.2.2.2 09RP 的弧菌抗性确认 | 第108页 |
4.2.3 讨论 | 第108-109页 |
4.3 文蛤溶菌酶SNP 与弧菌抗性及生长的相关性分析 | 第109-123页 |
4.3.1 材料与方法 | 第109-112页 |
4.3.1.1 检测所用文蛤群体 | 第109页 |
4.3.1.2 DNA 提取与体重测量 | 第109-110页 |
4.3.1.3 溶菌酶gDNA 片段的PCR 扩增与测序 | 第110-111页 |
4.3.1.4 SNP 检测与分型 | 第111页 |
4.3.1.5 数据分析 | 第111-112页 |
4.3.2 结果 | 第112-120页 |
4.3.2.1 检测到的溶菌酶SNP | 第112页 |
4.3.2.2 溶菌酶SNP 与弧菌抗性的相关性分析 | 第112-116页 |
4.3.2.3 溶菌酶SNP 与生长的相关性分析 | 第116-120页 |
4.3.3 讨论 | 第120-123页 |
结论 | 第123-125页 |
参考文献 | 第125-140页 |
博士期间发表的文章及申请的专利 | 第140-141页 |
致谢 | 第141-142页 |