| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词 | 第10-11页 |
| 第1章 综述 | 第11-24页 |
| 1.1 微管与微丝 | 第11-16页 |
| 1.1.1 树突棘的形态多样性以及动态性 | 第11页 |
| 1.1.2 微丝 | 第11-14页 |
| 1.1.3 微管 | 第14-15页 |
| 1.1.4 微丝与微管的关系 | 第15-16页 |
| 1.2 脑缺血与神经元细胞死亡的相关机制 | 第16-19页 |
| 1.2.1 钙离子内流增加 | 第16-17页 |
| 1.2.2 线粒体功能紊乱 | 第17-18页 |
| 1.2.3 受体表达异常 | 第18页 |
| 1.2.4 氧化应激 | 第18页 |
| 1.2.5 DNA损伤 | 第18-19页 |
| 1.3 脑缺血与微管和微丝的关系 | 第19-22页 |
| 1.3.1 脑缺血后树突棘的相关变化 | 第19-20页 |
| 1.3.2 脑缺血与微丝的关系 | 第20-21页 |
| 1.3.3 脑缺血与微管的关系 | 第21-22页 |
| 1.4 展望 | 第22-24页 |
| 第2章 材料与方法 | 第24-34页 |
| 2.1 实验仪器、试剂 | 第24-26页 |
| 2.2 实验试剂配制 | 第26-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.3.1 4-VO全脑缺血模型制备 | 第29-30页 |
| 2.3.2 组织样品制备 | 第30页 |
| 2.3.3 WesternBlot | 第30页 |
| 2.3.4 F-JB染色 | 第30-31页 |
| 2.3.5 NeuN、MAP2、β-Tubulin免疫组织化学染色 | 第31页 |
| 2.3.6 双重荧光染色 | 第31-32页 |
| 2.3.7 F-actin标记 | 第32页 |
| 2.3.8 原代海马神经元培养 | 第32-33页 |
| 2.3.9 统计学分析 | 第33-34页 |
| 第3章 实验结果 | 第34-45页 |
| 3.1 缺血诱导的CA1区神经元细胞损伤情况 | 第34-37页 |
| 3.2 缺血再灌注之后微管的变化 | 第37-40页 |
| 3.3 缺血再灌注之后F-actin的相关变化 | 第40-42页 |
| 3.4 微管和微丝的体外研究 | 第42-45页 |
| 第4章 讨论 | 第45-48页 |
| 第5章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-59页 |
| 作者简介及科研成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
