迟缓爱德华氏菌弱毒疫苗的研制和免疫效果

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迟缓爱德华氏菌(Edwardsiella tarda)可引起鱼类的爱德华氏菌病(Edwardsiellosis),导致出血性败血症。疫苗免疫是预防鱼类病害的重要手段。弱毒疫苗可有效刺激机体系统免疫应答,通过浸泡、口服途径提供有效的免疫保护,实用而高效。以弱毒疫苗为载体可研制鱼类多价疫苗。本研究构建了迟缓爱德华氏菌LSE40的多株基因缺失株,筛选了11株弱毒株并检测它们对鱼的免疫保护效果。初步鉴定了LSE40III型分泌系统(T3SS)效应蛋白EseG的分泌信号肽,为进一步以迟缓爱德华氏菌T3SS为异源抗原呈递途径构建弱毒迟缓爱德华氏菌疫苗载体,进而研制鱼类多价疫苗奠定基础。一、迟缓爱德华氏菌LSE40ΔaroA突变株的特征及免疫效果LSE40ΔaroA突变株缺失了编码5-烯醇丙酮莽草酸-3-磷酸合成酶基因aroA。该突变株的细菌形态变长、分裂延迟,在TSB培养基的生长变慢、运动力和菌膜形成能力减弱,在DMEM培养基中不能自凝、3个T3SS输送器蛋白(EseB,EseC, EseD)的表达和分泌减弱,在鱼体内的存活能力下降,对鱼的毒力减弱。将LSE40ΔaroA以注射和浸泡途径免疫大菱鲆,可检测到免疫鱼的血清产生特异抗体,但免疫鱼不能抵抗致病性迟缓爱德华氏菌的感染。二、迟缓爱德华氏菌LSE40基因缺失株的构建及其毒力检测以迟缓爱德华氏菌LSE40的7个与毒力或营养相关基因(腺苷酸基琥珀酸合成酶编码基因purA,天冬氨酸-β-半醛脱氢酶编码基因asd,5-烯醇丙酮莽草酸-3-磷酸合成酶aroA,T3SS调节蛋白编码基因esrB和装置蛋白编码基因esaC,T6SS装置蛋白编码基因evpH,RNA聚合酶sigma S调节蛋白编码基因rpoS)为靶基因,构建了2株单基因缺失株: LSE40ΔpurA,LSE40Δasd;7株双基因缺失株:LSE40ΔaroAΔesrB、LSE40ΔpurAΔesrB、LSE40ΔpurAΔaroA、LSE40ΔaroAΔesaC、LSE40ΔaroAΔrpoS、LSE40ΔaroAΔevpH、LSE40ΔesrBΔevpH;2株三基因缺失株: LSE40ΔaroAΔesrBΔevpH和LSE40ΔaroAΔesaCΔevpH。以蓝蔓龙检测LSE40ΔaroA和11株突变株的LD50,结果显示毒力下降了130-1000倍以上。三、迟缓爱德华氏菌弱毒株的免疫保护效果首先,以LSE40ΔaroA和11株弱毒株注射免疫蓝蔓龙鱼,发现LSE40ΔaroA、LSE40ΔaroAΔesaCΔevpH和LSE40ΔaroAΔesrBΔevpH三株弱毒株没有提供免疫保护;其他9株弱毒株提供21.7%-82.6%免疫保护率(RPS)。然后,取LSE40ΔaroA和有较高RPS的3株弱毒株LSE40ΔaroAΔesrB、 LSE40ΔaroAΔesaC和LSE40ΔaroAΔevpH浸泡免疫牙鲆,在免疫牙鲆的血清检测到特异性抗体效价,注射攻毒的RPS分别为0、45%、25%和20%,浸泡攻毒的RPS为0、100%、66.7%和66.7%。结果显示,LSE40ΔaroAΔesrB、LSE40ΔaroAΔesaC、LSE40ΔaroAΔevpH对牙鲆提供较好的免疫保护。最后,用LSE40ΔaroAΔesrB注射免疫大菱鲆,108和107cfu/ml免疫组的注射攻毒时免疫保护率分别为20%和10%,106cfu/ml免疫组不能提供免疫保护效果;以浸泡和口服途径免疫大菱鲆,均未能提供免疫保护。综合上述结果,弱毒疫苗对蓝蔓龙和牙鲆提供良好的免疫保护,对大菱鲆未提供免疫保护。四、迟缓爱德华氏菌T3SS效应蛋白分泌性信号肽的鉴定利用细菌的T3SS呈递异源抗原,可构建多价疫苗载体。本实验利用生物信息学方法预测分析LSE40T3SS效应蛋白EseG和输送器蛋白EseC的分泌性信号肽区域,构建待定分泌信号肽与内酰胺酶β-lactamase的融合表达载体,在迟缓爱德华氏菌表达,以westernblot检测融合蛋白的表达和分泌情况。结果显示,EseG的1-88aa具有分泌型信号肽的功能,为进一步研究以迟缓爱德华氏菌T3SS为异源抗原呈递途径打下基础。
致谢第4-7页
摘要第7-9页
Abstract第9-11页
目录第12-15页
引言第15-16页
第一章 文献综述第16-33页
    第一节 迟缓爱德华氏菌的研究进展第16-28页
        1.1.1 迟缓爱德华氏菌分类地位、分布特征和感染途径第16-18页
        1.1.2 迟缓爱德华氏菌的致病机制第18-28页
            1.1.2.1 黏附和入侵第18-20页
            1.1.2.2 细胞毒素和胞外酶第20页
            1.1.2.3 抗免疫杀伤机制第20-21页
            1.1.2.4 细菌分泌系统第21-26页
            1.1.2.5 密度感应系统第26-27页
            1.1.2.6 铁摄取第27页
            1.1.2.7 寡肽透过酶第27-28页
    第二节 迟缓爱德华氏菌的防治第28-33页
        1.2.1 化学治疗法第28页
        1.2.2 免疫治疗防治法第28-33页
            1.2.2.1 灭活疫苗第29-30页
            1.2.2.2 空壳疫苗第30页
            1.2.2.3 蛋白疫苗第30-31页
            1.2.2.4 DNA疫苗第31页
            1.2.2.5 弱毒疫苗第31-32页
            1.2.2.6 外膜小泡疫苗第32-33页
第二章 迟缓爱德华氏菌LSE40ΔaroA基因缺失株的特征及免疫效果第33-47页
    2.1 材料与方法第33-37页
        2.1.1 菌株和培养基第33-34页
        2.1.2 实验鱼第34页
        2.1.3 LSE40ΔaroA突变株表型的分析第34-35页
            2.1.3.1 扫描电镜观察细菌形态第34页
            2.1.3.2 培养基检测细菌的生长第34页
            2.1.3.3 泳动实验第34-35页
            2.1.3.4 菌膜形成第35页
            2.1.3.5 细菌自凝第35页
            2.1.3.6 迟缓爱德华氏菌输送器蛋白的检测第35页
        2.1.4 LSE40ΔaroA突变株对大菱鲆的半数致死量第35页
        2.1.5 LSE40ΔaroA在大菱鲆体内存活情况第35页
        2.1.6 LSE40ΔaroA突变株对大菱鲆的免疫第35-36页
            2.1.6.1 注射免疫第36页
            2.1.6.2 浸泡免疫第36页
        2.1.7 免疫相关基因的表达第36-37页
            2.1.7.1 RNA提取、DNA消化和反转录第36-37页
            2.1.7.2 实时定量PCR第37页
    2.2 结果第37-44页
        2.2.1 野生型LSE40 和突变株LSE40ΔaroA的表型特征比较第37-39页
        2.2.2 T3SS输送器蛋白的分泌第39页
        2.2.3 毒力检测第39-40页
        2.2.4 细菌在鱼体内的存活时间第40-41页
        2.2.5 突变株LSE40ΔaroA对大菱鲆的免疫效果第41-43页
            2.2.5.1 注射免疫效果第41-42页
            2.2.5.2 浸泡免疫第42-43页
        2.2.6 免疫相关基因的表达第43-44页
    2.3 讨论第44-47页
第三章 迟缓爱德华氏菌基因缺失突变株的构建、毒力检测及其免疫保护效果第47-73页
    3.1 材料和方法第48-57页
        3.1.1 菌株、质粒、细菌培养、实验鱼和引物第48页
        3.1.2 基因缺失突变株的构建第48-54页
            3.1.2.1 purA基因缺失片段的构建第50-52页
            3.1.2.2 含有purA基因缺失片段的pRE112 质粒构建第52-53页
            3.1.2.3 两次同源重组构建LSE40ΔpurA基因缺失株第53-54页
            3.1.2.4 其它突变株的构建第54页
        3.1.3 突变株对蓝蔓龙的半数致死量第54-55页
        3.1.4 注射免疫蓝蔓龙第55页
        3.1.5 浸泡免疫牙鲆第55-56页
        3.1.6 LSE40ΔaroAΔesrB免疫大菱鲆第56-57页
            3.1.6.1 注射免疫第56页
            3.1.6.2 浸泡免疫第56-57页
            3.1.6.3 灌喂免疫第57页
    3.2 结果第57-69页
        3.2.1 突变株的鉴定及表型特征第57-60页
            3.2.1.1 LSE40ΔpurA第57-58页
            3.2.1.2 LSE40Δasd第58-59页
            3.2.1.3 LSE40ΔaroAΔevpH和LSE40ΔpurAΔaroA第59-60页
            3.2.1.4 LSE40ΔpurAΔesrB 、 LSE40ΔaroAΔesrB 、 LSE40ΔevpHΔesrB 和LSE40ΔaroAΔevpHΔesrB第60页
        3.2.1.5 LSE40ΔaroAΔesaC和LSE40ΔaroAΔesaCΔevpH第60-62页
            3.2.1.6 LSE40ΔaroAΔrpoS第61-62页
        3.2.2 突变株对蓝蔓龙的半数致死量第62-63页
        3.2.3 弱毒株对蓝蔓龙的免疫保护第63-64页
        3.2.4 4 株弱毒株浸泡免疫牙鲆的保护第64-66页
            3.2.4.1 弱毒株在鱼体内的存活时间第64-65页
            3.2.4.2 血清抗体检测第65页
            3.2.4.3 免疫保护第65-66页
        3.2.5 LSE40ΔaroAΔesrB对大菱鲆的免疫保护第66-69页
            3.2.5.1 注射免疫第66-68页
            3.2.5.2 浸泡免疫第68页
            3.2.5.3 灌喂免疫第68-69页
    3.3 讨论第69-73页
第四章 减毒迟缓爱德华氏菌载体疫苗的构建:T3SS效应蛋白分泌性信号肽的鉴定第73-81页
    4.1 材料与方法第74-76页
        4.1.1 菌株、培养基、抗体和质粒第74-75页
        4.1.2 信号肽序列分析第75页
        4.1.3 预测信号肽重组表达质粒的构建第75页
        4.1.4 迟缓爱德华氏菌T3SS的诱导表达、蛋白提取和检测第75-76页
    4.2 结果第76-79页
        4.2.1 分子生物学分析结果第76页
        4.2.2 预测信号肽重组表达质粒的构建第76-77页
        4.2.3 融合蛋白的检测第77-79页
    4.3 讨论第79-81页
结论第81-82页
参考文献第82-94页
简历第94-95页
发表文章和申请专利第95页
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