菊花‘神马花芽分化期的数字基因表达谱及关键基因的克隆和表达分析

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菊花(Chrysanthemum morifolium Ramat.)是菊科(Asteraceae)菊属(Chrysanthemum)植物,是世界四大鲜切花之一。栽培品种3000多个,用于切花菊的品种多为典型的短日照植物,光周期途径调控开花主要由光受体基因接受光信号,传递给节律钟基因,通过节律钟调控输出基因激活下游转录因子的表达,在叶中上调促进开花基因的表达,输送到茎尖与成花整合因子作用完成花芽分化。本研究以白色切花菊‘神马’为试材,因其典型的短日照特点,能较准确人工调控花芽分化进程,是研究菊花花芽分化分子机理的模式材料。通过大规模高通量测序,获得数据与NCBI核酸蛋白数据库进行比对,经生物信息分析,确定功能分类及涉及的代谢途径,获得菊花花芽分化期相关的基因表达信息,探索在菊花不同花芽分化阶段相关基因的差异表达富集模式及表达谱;对光周期途径的关键基因进行全长的克隆与表达分析,在分子水平上对菊花开花时间的网络途径有初步的了解,为后期进一步进行基因的功能验证及通过分子育种方法(反义抑制或转基因)培育目标花期新品种提供基础理论依据。本研究主要成果如下:1.本试验获得菊花花芽分化期转录组ESTs,对所有unigenes进行功能分类,收集到54,488条分属于分子功能、细胞组分和生物学过程的unigenes。其中参与分子功能的共12种,参与细胞组分的共11种,参与生物学过程的共18种。得到编码蛋白框(CDS)的核酸序列和氨基酸序列为54,644条。用ESTscan比对所有unigenes,得到其CDS的核酸序列和氨基酸序列均为8,506条。将所有unigenes与COG数据库BLAST比对显示,共获得22,871条与已知其他植物同源,属于23类直系同源簇群,未知功能的有780条;得到25,001条参与代谢通路的unigenes,从中收集到与植物节律代谢通路相关unigenes共269条,从中比对到参与光周期途径的光受体基因、生物节律钟基因和生物节律钟输入和输出基因等相似功能基因共20个。2.初步得出菊花花芽分化期涉及植物节律途径的数字基因表达谱:菊花光受体PHYB在花芽分化启动期表达量达最高值,是暗处理前的近五倍,随后稍有下降,到总苞鳞片分化中期仍维持暗处理前的近三倍,到分化完成一直还维持近两倍的表达量;节律钟组件APRS、 TOC1表达高峰值均出现在总苞鳞片分化中期;PIF3高峰值出现在花芽分化启动期,到总苞鳞片分化中期仍维持暗处理前的近三倍;FKF1在花芽分化启动期上调到高峰值,总苞鳞片分化中期下调表达,随后在小花原基分化中期和分化完成期又上调到高峰。节律钟输出基因GI在花芽分化启动期表达量达最高值,在总苞鳞片分化中期稍有下降,分化完成期又有回升。CO暗处理一天后反而表达量降低,在总苞鳞片分化中期表达量达最高值。CHS(查尔酮合成酶)在暗处理一天后表达量上调,启动期达近五倍的最高值,总苞鳞片分化中期表达量稍下降,随后在小花原基分化中期下调表达。3.初步得出菊花花芽分化期差异表达基因显著富集的最主要生化代谢途径和信号转导途径:集中在光合作用及核蛋白体途径中。4.初步得出菊花不同花芽分化阶段差异表达基因富集参与的生物功能:花芽未分化期,植物中蛋白质精氨酸甲基转移酶家族基因和蛋白参与基因转录调控、氧化还原酶活性基因转录加强;花芽分化启动期,脂肪酸合成酶、糖氢共转运蛋白活性基因差异表达富集,蛋白质精氨酸甲基转移酶的差异表达显著;总苞鳞片分化中期,信息显示富集在各种蛋白质、核苷酸糖的合成;小花原基分化中期,蛋白质精氨酸甲基转移酶活性加强,氧化还原酶活性基因转录加强;花冠分化末期即花芽分化完成期,基因差异表达富集仍在结构分子活动、砷酸盐还原酶活性和作为花和花粉发育的能量来源的脯氨酸的累积等方面。5.从菊花‘神马’中克隆得到节律钟输出基因GIGANTEA的cDNA全长序列,命名为CmGI基因,登录号为JQ043439。对其做序列信息分析;菊花CmGI的表达呈昼夜节律表达模式,高峰值出现在16:00;不同花芽分化阶段叶片中CmGI基因mRNA水平差异大,两个高峰值分别出现在花芽分化启动期和小花原基分化中期;盛花期表达量较高。6.从菊花‘神马’中克隆得到开花相关基因CmCOL的cDNA全长序列,登录号为KC589293,对其做序列信息分析;菊花CmCOL mRNA在叶中高表达,呈昼夜节律表达模式,表达高峰值出现在04:00;短日照处理能上调叶中CmCOL,对芽中的影响不明显;不同花芽分化阶段叶片中高峰值出现在小花原基分化中期;盛花期叶片中高表达。7.菊花CmFTL mRNA只在短日照条件下的叶片中呈现节律表达,00:00时为高峰值;芽中及长日照叶、芽中均检测不到昼夜起伏;不同花芽分化阶段叶片中CmFTLmRNA水平差异大,小花原基分化中期达最高峰值;花蕾期叶中高表达。8.研究显示菊花叶片感应光周期,短日照条件下CmGI首先于暗处理1d后启动上调,花芽分化启动期出现第一个峰值,而CmCOL则滞后CmGI,于花芽分化启动期轻微上调,暗示CmGI位于CmCOL上游,小花原基分化中期CmGI上调至高峰值时CmCOL上调到高峰。CmFTL在CmCOL微调时则无明显变化,在小花原基分化中期CmCOL上调至高峰值时CmFTL也上调到高峰值,暗示CmFTL滞后CmCOL,位于其下游。实验揭示菊花CmGI、CmCOL、CmFTL在SD条件下与拟南芥LD下及水稻SD下的GI-CO-FT调控模式相似。
符号说明第5-12页
中文摘要第12-15页
Abstract第15-18页
1 前言第19-26页
    1.1 植物花芽分化研究的现状和发展趋势第19-24页
        1.1.1 植物调控花芽分化的途径第20页
        1.1.2 光周期途径中涉及的光受体基因第20-21页
        1.1.3 光周期途径中涉及的生物节律钟基因第21-22页
        1.1.4 光周期途径中涉及的节律钟下游基因第22-23页
        1.1.5 菊花与光周期途径相关基因的研究第23-24页
            1.1.5.1 光周期对菊花开花的影响第23-24页
            1.1.5.2 菊花花芽分化研究进展第24页
    1.2 研究的目的意义第24-26页
2 材料与方法第26-48页
    2.1 植物材料和处理第26-28页
        2.1.1 植物材料和试验处理第26-27页
        2.1.2 主要试剂及仪器第27页
        2.1.3 数据分析用软件第27-28页
    2.2 采取的研究方案及技术路线第28页
        2.2.1 研究方案第28页
        2.2.2 技术路线第28页
    2.3 菊花花芽分化期转录组 cDNA 文库的构建及测序分析第28-31页
        2.3.1 菊花总 RNA 的提取第28-30页
            2.3.1.1 试验用品前期处理第28-30页
            2.3.1.2 提取菊花花芽分化阶段总 RNA第30页
        2.3.2 转录组 cDNA 固相文库的构建和测序第30-31页
        2.3.3 转录组 Unigenes 信息分析第31页
    2.4 菊花花芽分化期数字基因表达谱测序及信息分析第31-36页
        2.4.1 数字基因表达谱文库的构建和测序第31-34页
        2.4.2 数字基因表达谱文库测序信息分析第34-36页
            2.4.2.1 基因表达注释第34-35页
            2.4.2.2 差异基因表达模式聚类分析第35页
            2.4.2.3 差异基因表达 Gene Ontology 功能显著性富集分析第35-36页
            2.4.2.4 差异基因表达 Pathway 显著性富集分析第36页
    2.5 菊花光周期途径关键基因的克隆第36-48页
        2.5.1 应用 RT-PCR、RACE 技术克隆关键基因 cDNA 全长序列第36-45页
            2.5.1.1 cDNA 第一链反转录步骤第36-37页
            2.5.1.2 关键基因 CmGI、CmCOL 引物的设计第37-39页
            2.5.1.3 引物验证试验设计第39页
            2.5.1.4 关键基因片段验证第39-40页
            2.5.1.5 3’RACE第40-41页
            2.5.1.6 5’RACE第41-42页
            2.5.1.7 测序步骤第42-45页
        2.5.2 关键基因的 cDNA 全长序列分析第45-46页
        2.5.3 关键基因的实时荧光定量分析第46-48页
            2.5.3.1 荧光定量引物设计第46页
            2.5.3.2 荧光定量 PCR 体系和数据处理第46-48页
3 结果与分析第48-95页
    3.1 菊花花芽分化期转录组 unigenes 分析第48-57页
        3.1.1 菊花花芽分化期 unigenes 的获取第48-49页
        3.1.2 菊花花芽分化期 unigenes 的 GO 功能分类注释第49-50页
            3.1.2.1 菊花花芽分化期 unigenes 参与的分子功能第49页
            3.1.2.2 菊花花芽分化期 unigenes 涉及的细胞组分第49页
            3.1.2.3 菊花花芽分化期 unigenes 参与的生物过程第49-50页
        3.1.3 菊花花芽分化期 unigenes 涉及的代谢通路分析第50-52页
        3.1.4 菊花花芽分化期涉及植物节律代谢途径的 unigenes 分析第52-54页
        3.1.5 菊花花芽分化期 unigenes 的编码蛋白(CDS)分析第54-55页
        3.1.6 菊花花芽分化期 unigene 的 COG 注释功能第55-57页
    3.2 菊花花芽分化期的数字基因表达谱分析第57-72页
        3.2.1 数字基因表达谱数据评价分析第57-61页
        3.2.2 六个文库部分差异表达基因等级聚类分析第61页
        3.2.3 六个文库差异表达基因统计分析第61-62页
        3.2.4 六个文库涉及植物节律通路的部分 tags 分析第62-63页
        3.2.5 六个文库差异表达基因 Pathway 显著性富集分析第63-65页
        3.2.6 六个文库差异表达基因 Gene Ontology 功能显著性富集分析第65-72页
            3.2.6.1 1-RNAvs2-RNA 文库差异表达基因功能显著性富集分析第65-67页
            3.2.6.2 2-RNAvs3-RNA 文库差异表达基因功能显著性富集分析第67页
            3.2.6.3 3-RNAvs4-RNA 文库差异表达基因功能显著性富集分析第67页
            3.2.6.4 4-RNAvs5-RNA 文库差异表达基因功能显著性富集分析第67-71页
            3.2.6.5 5-RNAvs6-RNA 文库差异表达基因功能显著性富集分析第71-72页
    3.3 菊花节律钟输出基因 CmGI(GIGANTEA)的克隆及序列信息和定量表达分析第72-82页
        3.3.1 CmGI 基因 cDNA 全长克隆第72-74页
        3.3.2 CmGI 蛋白质序列分析第74-76页
        3.3.3 CmGI 蛋白质基本性质分析第76-77页
        3.3.4 CmGI 蛋白质二级结构分析第77页
        3.3.5 CmGI 蛋白质三级结构分析第77-78页
        3.3.6 CmGI 的 mRNA 相对定量表达分析第78-82页
            3.3.6.1 引物设计和扩增特异性的分析第78-79页
            3.3.6.2 菊花 CmGI mRNA 的昼夜相对定量表达分析第79-80页
            3.3.6.3 菊花 CmGI mRNA 在花芽不同分化阶段中的相对定量表达分析第80-81页
            3.3.6.4 菊花 CmGI mRNA 在组培苗、花蕾期及盛花期的相对定量表达分析第81-82页
    3.4 菊花开花相关基因 CmCOL(CONSTANS-Like)的克隆及序列信息分析第82-88页
        3.4.1 CmCOL 基因 cDNA 全长克隆第82-83页
        3.4.2 CmCOL 序列信息分析第83-88页
        3.4.3 CmCOL 蛋白质基本性质分析第88页
        3.4.4 CmCOL 蛋白质的二级结构第88页
        3.4.5 CmCOL 蛋白质的三级结构第88页
    3.5 CmCOL、CmFTL mRNA 相对定量表达分析第88-94页
        3.5.1 引物设计和扩增特异性的分析第88-90页
        3.5.2 CmCOL mRNA 昼夜相对定量表达分析第90-92页
        3.5.3 CmCOL mRNA 在花芽分化不同阶段的相对定量表达分析第92页
        3.5.4 CmCOL mRNA 在组培苗、花蕾期、盛花期的相对定量表达分析第92页
        3.5.5 CmFTL mRNA 昼夜相对定量表达分析第92页
        3.5.6 CmFTL mRNA 在花芽分化不同阶段的相对定量表达分析第92页
        3.5.7 CmFTL mRNA 在组培苗、花蕾期、盛花期的相对定量表达分析第92-94页
    3.6 CmGI、CmCOL、CmFTL mRNA 相对定量表达比较分析第94-95页
4 讨论第95-102页
    4.1 菊花花芽分化期转录组信息第95-96页
        4.1.1 EST 法筛选菊花花芽分化期 unigenes第95页
        4.1.2 菊花花芽分化期 Unigenes 的 GO 功能分类第95页
        4.1.3 菊花花芽分化期 Unigene 的 KEGG 代谢途径注释第95-96页
        4.1.4 转录组序列信息的应用第96页
    4.2 菊花花芽分化期数字表达谱信息第96-100页
        4.2.1 涉及植物节律钟通路的 tags 分析第96-97页
        4.2.2 六个文库主要富集 Pathway 分析第97-98页
        4.2.3 花芽未分化期差异表达基因功能显著性富集分析第98页
        4.2.4 花芽分化启动期差异表达基因功能显著性富集分析第98页
        4.2.5 总苞鳞片分化中期差异表达基因功能显著性富集分析第98-99页
        4.2.6 小花原基分化中期差异表达基因功能显著性富集分析第99页
        4.2.7 花冠分化末期即花芽分化完成期差异表达基因功能显著性富集分析第99页
        4.2.8 数字基因表达谱信息的应用第99-100页
    4.3 菊花 CmGI、CmCOL、CmFTL 基因对光周期响应的关联性第100-102页
5 结论第102-105页
    5.1 菊花花芽分化期转录组 unigenes GO 功能分类第102页
    5.2 菊花花芽分化期转录组 unigenes 涉及的代谢途径第102页
    5.3 菊花花芽分化期涉及植物节律途径的数字基因表达谱第102页
    5.4 菊花花芽分化期差异表达基因显著富集的代谢途径第102页
    5.5 菊花花芽分化期不同阶段差异表达基因富集参与的生物功能第102-103页
    5.6 菊花节律钟输出基因 CmGI 序列信息及表达特征第103-104页
    5.7 菊花开花相关基因 CmCOL 序列信息及表达特征第104页
    5.8 菊花 CmFTL 基因的表达特征第104页
    5.9 菊花 CmGI、CmCOL、CmFTL 基因的关联性表达特征第104页
    本论文的创新点第104-105页
6 参考文献第105-119页
7 附录第119-122页
8 致谢第122-123页
9 攻读学位期间发表论文情况第123页
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