NO对非洲菊切花衰老的影响及作用机理的研究

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本文以非洲菊(Gerbera jamesonii)为材料,研究NO对非洲菊切花衰老的影响及其作用机理。本文采用NO供体SNP对非洲菊鲜切花进行瓶插处理和脉冲处理,探讨外源NO对非洲菊鲜切花衰老的影响及其作用机理;同时,采用NO清除剂Hemoglobin对非洲菊切花进行瓶插处理和脉冲处理清除内源NO,探讨内源NO对非洲菊切花衰老的影响及其作用机理;最后探讨NO对非洲菊不同基因型切花衰老的影响,研究NO对非洲菊不同基因型切花衰老的影响机理。结果如下:1、NO供体SNP处理对非洲菊切花衰老的影响及其作用机理的研究不同浓度的NO供体SNP溶液对非洲菊切花衰老的影响:分别采用0μmol L-1、10μmol L-1、100μmol L-1、500μmol L-1SNP溶液对非洲菊切花进行瓶插处理,结果表明:低浓度SNP溶液延缓非洲菊切花的衰老,高浓度SNP溶液加速非洲菊切花的衰老,其中100μmol L-1SNP溶液能够显著延缓非洲菊切花的衰老。NO供体SNP对非洲菊切花衰老影响机理的研究:用100μmol L-1SNP溶液对非洲菊切花分别进行瓶插处理和脉冲处理,结果表明:各处理均能够显著增加切花的相对含水量,提高SOD、POD的活性,延缓MDA、H2O2含量的增加,延缓可溶性蛋白的降低,增加非洲菊切花的观赏价值。2、NO清除剂Hemoglobin处理对非洲菊切花衰老的影响及作用机理的研究不同浓度的NO清除剂Hemoglobin溶液对非洲菊切花衰老的影响:分别采用0μmol L-1、5μmol L-1、15μmol L-1Hemoglobin溶液对非洲菊切花进行瓶插处理,结果表明:各处理均加速了非洲菊的衰老。NO清除剂Hemoglobin对非洲菊切花衰老影响机理的研究:用15μmol L-1Hemoglobin溶液分别对非洲菊切花进行瓶插处理和脉冲处理,结果表明:各处理均显著降低切花的相对含水量,降低SOD、POD的活性,促进MDA、H2O2含量的增加,促进可溶性蛋白的降低,降低非洲菊切花的观赏价值。3、NO对非洲菊不同基因型切花衰老的影响及作用机理的研究分别用100μmol L-1SNP溶液对非洲菊三种不同基因型切花(品种为‘阳光海岸’、‘玲珑’、‘丽朵’)进行瓶插处理,结果表明:该处理能够显著延长非洲菊三种不同基因型切花的瓶插寿命,增大花径,提高切花鲜重增加率,增加相对含水量,提高SOD、POD活性,延缓MDA、H2O2含量的增加,延缓可溶性蛋白的降低,增加非洲菊切花的观赏价值。由此可见,NO具有双重作用,高浓度NO加速非洲菊切花的衰老,低浓度NO延缓非洲菊切花的衰老;内源NO具有延缓非洲菊切花衰老的作用;NO对非洲菊三种不同基因型切花均有延缓衰老的作用。
摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
1 文献综述第10-19页
    1.1 非洲菊的概况第10-11页
    1.2 切花采后生理生化的变化第11-14页
        1.2.1 呼吸作用增加第11页
        1.2.2 水分代谢失衡第11-12页
        1.2.3 营养物质缺乏第12页
        1.2.4 膜透性、活性氧和抗氧化酶活性的变化第12-13页
        1.2.5 激素的变化第13页
        1.2.6 非洲菊弯茎现象第13-14页
    1.3 NO 在植物体内的生理作用第14-17页
        1.3.1 植物体内 NO 的生物合成第14-15页
        1.3.2 植物体中 NO 的分布第15页
        1.3.3 NO 在植物中的生理作用第15-17页
    1.4 国内外非洲菊切花保鲜研究进展第17-18页
    1.5 本研究的目的和意义第18-19页
2 不同浓度 SNP 处理对非洲菊切花衰老影响的研究第19-23页
    2.1 试验材料第19页
    2.2 试验方法第19页
    2.3 测定指标第19页
        2.3.1 瓶插寿命的测定第19页
        2.3.2 鲜重增加率的测定第19页
        2.3.3 花径大小的测定第19页
    2.4 试验结果与分析第19-22页
    2.5 小结第22-23页
3 外源 NO 对非洲菊切花衰老影响机理的研究第23-31页
    3.1 试验材料第23页
    3.2 试验方法第23页
    3.3 测定指标第23-25页
        3.3.1 相对含水量的测定第23页
        3.3.2 可溶性蛋白含量的测定第23页
        3.3.3 MDA 含量的测定第23-24页
        3.3.4 H_2O_2含量的测定第24页
        3.3.5 SOD 活性的测定第24-25页
        3.3.6 POD 活性的测定第25页
    3.4 试验结果与分析第25-30页
    3.5 小结第30-31页
4 不同浓度 Hemoglobin 处理对非洲菊切花衰老影响的研究第31-35页
    4.1 试验材料第31页
    4.2 试验方法第31页
    4.3 测定指标第31页
        4.3.1 瓶插寿命的测定第31页
        4.3.2 鲜重增加率的测定第31页
        4.3.3 花径大小的测定第31页
    4.4 试验结果与分析第31-34页
    4.5 小结第34-35页
5 内源 NO 对非洲菊切花衰老影响机理的研究第35-43页
    5.1 试验材料第35页
    5.2 试验方法第35页
    5.3 测定指标第35-37页
        5.3.1 相对含水量的测定第35页
        5.3.2 可溶性蛋白含量的测定第35页
        5.3.3 MDA 含量的测定第35-36页
        5.3.4 H_2O_2含量的测定第36页
        5.3.5 SOD 活性的测定第36-37页
        5.3.6 POD 活性的测定第37页
    5.4 试验结果与分析第37-42页
    5.5 小结第42-43页
6 外源 NO 对非洲菊不同基因型切花衰老影响机理的研究第43-53页
    6.1 试验材料第43页
    6.2 试验方法第43页
    6.3 测定指标第43-45页
        6.3.1 瓶插寿命的测定第43页
        6.3.2 鲜重增加率的测定第43页
        6.3.3 花茎大小的测定第43页
        6.3.4 相对含水量的测定第43页
        6.3.5 可溶性蛋白含量的测定第43-44页
        6.3.6 MDA 含量的测定第44页
        6.3.7 H_2O_2含量的测定第44页
        6.3.8 SOD 活性的测定第44-45页
        6.3.9 POD 活性的测定第45页
    6.4 试验结果与分析第45-52页
    6.5 小结第52-53页
7 讨论与结论第53-58页
    7.1 讨论第53-56页
    7.2 结论第56页
    7.3 展望第56-58页
参考文献第58-67页
缩写词目录第67-68页
附图第68-70页
作者简介第70-71页
致谢第71页
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