PAR-1,HIF-1a,MMP-9及TIMP-1在人脑出血灶周表达的实验研究

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目的:近年来,大量动物实验或人外周血中研究表明凝血酶作为神经毒性物质,在高血压脑出血后脑水肿的形成机制中起着重要作用。同时凝血酶通过P38MAPK途径活化血管平滑肌细胞的HIF-1,P38通过使HIF-1磷酸化来调节HIF-1的过量表达,且凝血酶及HIF-1a的激活又启动了另一种脑水肿致病因子MMP-9的表达,共同参与脑水肿的形成。但是,据文献所查,目前少见人类脑组织的PAR-1、HIF-1a、MMP-9、TIMP-1相关临床研究的报道。凝血酶的血管外作用是通过凝血酶受体PAR-1实现的。因此,本组研究了人类高血压脑出血后脑组织PAR-1、HIF-1a和MMP-9、TIMP-1的动态表达,相关性及其与脑水肿的关系。验证PAR-1、HIF-1a、MMP-9、TIMP-1在脑出血后脑水肿形成中的作用,明确人脑出血后凝血酶介导的水肿的具体径路和作用环节。方法:对2009年1月-2010年7月因高血压脑出血在吉林大学第一医院神经外科,行开颅血肿清除术治疗病人24例,将入路通道范围内紧邻血肿的脑组织做为病例组标本,部分患者皮层“造瘘”起始处即远隔血肿部位脑组织,做为对照组标本,共6例。病例组按发病时间分为<6h、6-24h、24h-3d、>3d组,采用免疫组化法检测24例脑出血灶周组织及6例正常脑组织各时间点PAR-1、HIF-1a和MMP-9、TIMP-1表达情况,RT-PCR法检测HIF-1a和MMP-9,TIMP-1表达情况,Westernblot检测TIMP-1蛋白表达,并通过干湿称重法结合脑水肿进行分析,透视电镜观察血脑屏障动态改变,探讨PAR-1、HIF-1a和MMP-9、TIMP-1在脑水肿发生、发展过程中的可能作用,相关性及临床意义。结果:1.脑组织水含量的变化,脑出血后脑水肿程度随出血时间的延长逐渐加重,在出血6h内含水量即开始增高,24h后较明显增高,3d左右达到峰值,之后减轻(P<0.05)。2.电镜下ICH后6h内,细胞质较少,细胞质内核糖体较多,其它细胞器较少,水肿区神经细胞及星形胶质细胞的胞质和细胞核开始肿胀。6-24h损伤加重,水肿区神经细胞及星形胶质细胞的胞质和核轻度肿胀,神经元有较少量呈暗细胞样改变,还不明显,线粒体轻度肿胀,嵴变短或消失,次级溶酶体增加,核糖体减少,毛细血管周围的星形胶质细胞的足突肿胀,仍然与毛细血管基底膜相连,血管内皮细胞轻度肿胀。24h-3d,脑组织肿胀明显加重,神经元和胶质细胞溶解、线粒体肿胀、变形、固缩,嵴变短或消失,核糖体减少,胞浆空泡化,核染色质边集,细胞器结构紊乱不清、深染,BBB明显破坏,毛细血管无明显的变化。3d后,胞浆内线粒体轻度肿胀,粗面内质网及核糖体等细胞器基本正常,脑组织肿胀稍有好转,胶质细胞开始回缩。3.在人脑出血血肿灶周中PAR-1、HIF-1a、MMP-9、TIMP-1圴有表达,对照组与出血组相比均有显著性意义(P<0.05),且出血组各组之间比较均有差异(P<0.05)。出血6h后免疫阳性细胞数开始增加,24h-3d组阳性细胞数最多,之后逐渐下降。PAR-1、HIF-1a、MMP-9、TIMP-1与脑水肿成正相关。4.PAR-1与HIF-1a蛋白表达正相关(r=0.8809,P<0.05),PAR-1与MMP-9蛋白表达正相关(r=0.9080,P<0.05),HIF-1a与MMP-9蛋白表达正相关(r=0.8632,P<0.05)。结论:1、人脑出血灶周PAR-1、HIF-1a与MMP-9,TIMP-1的表达明显升高,与脑水肿密切相关。2、PAR-1、HIF-1a与MMP-9、TIMP-1的异常表达在高血压脑出血后脑水肿中起重要作用。3、PAR-1、HIF-1a与MMP-9显著相关,以协同或互补的方式共同参与、促进脑水肿的发生。
前言第4-5页
中文摘要第5-7页
Abstract第7-8页
第1章 绪论第14-17页
第2章 综述第17-33页
    2.1 凝血酶的研究进展第17-22页
        2.1.1 凝血酶与凝血酶受体第17-19页
        2.1.2 凝血酶的产生和作用途径第19页
        2.1.3 凝血酶与脑水肿第19页
        2.1.4 凝血酶在自发性ICH后脑水肿形成中的作用第19-20页
        2.1.5 凝血酶导致脑组织水肿的病理生理机制第20页
        2.1.6 凝血酶和HIF-1a第20页
        2.1.7 凝血酶与MMPs第20-21页
        2.1.8 凝血酶对BBB的损伤第21页
        2.1.9 抗凝血酶治疗的前景第21页
        2.1.10 凝血酶促进血管新生保护作用第21-22页
    2.2 缺氧诱导因子-1a研究进展第22-26页
        2.2.1 HIF-1a的分子生物学特征第22-23页
        2.2.2 HIF-1的活性调节第23-24页
        2.2.3 HIF-1a与靶基因第24页
        2.2.4 HIF-1的分布第24页
        2.2.5 HIF-1a与缺血性卒中表达的双重作用第24-25页
        2.2.6 HIF-1a和ICH第25-26页
        2.2.7 HIF-1a和MMP-9第26页
    2.3 MMP-9/TIMP-1的研究进展第26-33页
        2.3.1 概述第27页
        2.3.2 基质金属蛋白酶的分类第27页
        2.3.3 MMP-9的活性调节第27-28页
        2.3.4 TIMPs第28-29页
        2.3.5 MMP-9与BBB第29-30页
        2.3.6 MMP-9与ICH第30-31页
        2.3.7 MMP-9与出血性转化第31页
        2.3.8 人工合成的MMPs抑制剂第31-32页
        2.3.9 MMP-9与ICH新生血管新生第32-33页
第3章 人ICH灶周水肿及病理改变第33-43页
    3.1 前言第33页
    3.2 材料与仪器第33-34页
        3.2.1 病例材料第33页
        3.2.2 实验分组第33页
        3.2.3 主要实验仪器第33-34页
        3.2.4 实验试剂第34页
    3.3 实验方法第34-36页
        3.3.1 组织包埋第34页
        3.3.2 脑组织进行苏木精-伊红(HE)染色第34-35页
        3.3.3 透射电镜观察第35-36页
        3.3.4 脑组织含水量测定第36页
    3.4 结果分析与统计学处理第36-39页
        3.4.1 脑组织的病理改变第36-37页
        3.4.2 透射电镜改变第37-39页
        3.4.3 脑组织含水量测定第39页
    3.5 讨论第39-42页
        3.5.1 ICH后脑水肿第39-41页
        3.5.2 ICH后BBB的破坏第41-42页
    3.6 小结第42-43页
第4章 PAR-1,HIF-1a,MMP-9,TIMP-1在ICH灶周组织的表达第43-53页
    4.1 前言第43页
    4.2 材料与试剂第43-47页
    4.3 实验方法第47-51页
        4.3.1 免疫组化SP法检测PAR-1,HIF-1a,MMP-9,TIMP-1第47页
        4.3.2 RT-PCR检测HIF-1a,MMP-9,TIMP-1mRNA第47-49页
        4.3.3 Westernblot方法检测TIMP-1的表达第49-51页
    4.4 结果分析与统计学处理第51-53页
第5章 实验结果第53-71页
    5.1 免疫组化的表达第53-62页
        5.1.1 PAR-1的表达第53-55页
        5.1.2 HIF-1a的表达第55-57页
        5.1.3 MMP-9的表达第57-60页
        5.1.4 TIMP-1的表达第60-62页
    5.2 RT-PCR的表达第62-66页
    5.3 TIMP-1基因Westernblot的表达第66-67页
    5.4 直线回归分析第67-71页
第6章 讨论第71-79页
    6.1 凝血酶对ICH后脑水肿的影响第71-74页
    6.2 HIF-1a对ICH后脑水肿的影响第74-76页
    6.3 MMP-9/TIMP-1对ICH后脑水肿的影响第76-79页
第7章 结论第79页
本研究创新性和自我评价第79-80页
参考文献第80-99页
作者简介及在学期间所取得的科研成果第99-100页
致谢第100页
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