黄鲫(Setipinna taty)蛋白抗菌肽的制备及抗菌作用等生物活性研究

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本文以海产小杂鱼黄鲫为原料,通过蛋白酶切法制备抗菌肽类,研究抗菌作用及其他生物活性,为黄鲫的深加工利用提供理论依据。具体研究内容包括:黄鲫蛋白抗菌肽的制备;黄鲫蛋白抗菌肽的理化性质;黄鲫蛋白抗菌肽的分离纯化;黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌模式;黄鲫蛋白抗菌肽及热处理产物抗氧化作用;黄鲫蛋白抗菌肽及热处理产物抗肿瘤作用。比较黄鲫蛋白风味蛋白酶、胰蛋白酶、胃蛋白酶、碱性蛋白酶和木瓜蛋白酶水解液的抑菌作用,选用胃蛋白酶为实验用酶,经过响应面分析中心组合设计实验确定了胃蛋白酶水解黄鲫蛋白制备抗菌肽(HAHp)的最佳条件为:酶加入量1100 U/(g底物),反应pH 2.0,酶解时间2.4 h,水/底物比值为4。该抗菌肽的可溶性肽提取率为(81.78±0.04)%,水解度(DH)(18.12±0.39)%,凝胶分离结果显示该抗菌肽主要由分子量低于3000 Da的低聚肽组成,具有广谱抑菌作用。本文测定了黄鲫蛋白抗菌肽HAHp的溶解性、乳化性和发泡性,结果表明在pH值212条件下的溶解度达到80%以上,具有一定乳化性和泡沫形成能力。研究了加热温度和时间、酸碱条件、胰蛋白酶和β-内酰胺酶、金属离子、冻融次数对HAHp的抑菌作用影响,实验结果表明HAHp对热较稳定;在pH 2.49.4下,HAHp均有抑菌活性,但以pH 5.4弱酸条件时的抑菌活性最强;HAHp经胰蛋白酶分别水解15 h后仍表现出抑菌活性;耐受β-内酰胺酶;反复冻融6次后的抑菌活性无显著性改变;一价金属离子K+、Na+、Ca2+和Mg2+不影响HAHp的抑菌活性,但是HAHp与浓度大于2.5 mmol/L的Fe2+和Zn2+作用后,抑菌圈直径显著减小,Fe3+的存在则不利于HAHp抑菌活性保持。本文采用Sephadex G 25凝胶过滤和RP-HPLC分离得到黄鲫蛋白抗菌肽HAHp中的有效抗菌组分HAHp2-3-I,Source 5RPC ST柱色谱显示HAHp2-3-I含有具有抑菌活性的2个分离峰。液质联用技术(UPLC-MS)分析得到HAHp2-3-I是由10余条分子量11001700 Da小肽组成,鉴定得到MLTTPPHAKYVLQW,SHAATKAPPKNGNY,PTAGVANALQHA,QLGTHSAQPVPF和VNVDERWRKL5条阳离子肽,LATVSVGAVELCY,NPEFLASGDHLDNLQ和PEVVYECLHW 3条阴离子肽及LRSKAAAPAEQYE和TPGALLEHPTL 2条中性肽。化学合成3条阳离子型肽MLTTPPHAKYVLQW , SHAATKAPPKNGNY和PTAGVANALQHA均能表现出抑菌活性。采用大肠杆菌生长曲线测定、细胞膜渗透性检测及扫描电镜法探讨黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌模式,实验结果表明HAHp和其有效抗菌组分HAHp2-3-I均能有效抑制大肠杆菌的生长繁殖,HAHp能诱导大肠杆菌细胞膜渗透,扫描电镜结果揭示HAHp和HAHp2-3-I对大肠杆菌的菌体细胞膜有损伤作用。HAHp2-3-I中8条荷电肽与UniProtKB/SWISS-PROT和抗菌肽数据库APD中已知抗菌肽序列比对,结果均为新肽。阳离子肽MLTTPPHAKYVLQW、SHAATKAPPKNGNY和PTAGVANALQHA与两栖动物蛙类来源抗菌肽具有较高同源性。HAHp2-3-I中的荷电肽经多层神经网络(HNN)生物软件预测得到α——螺旋、无规卷曲和延展结构构成荷电肽的二级结构。本文研究发现黄鲫蛋白抗菌肽HAHp经过适当热处理后可以有效提高体外DPPH自由基清除能力,且DPPH自由基清除率与褐变指数在一定范围存在线性关系(y=105.41x+55.036,R2=0.9343)。氨基酸分析显示HAHp热处理产物HAHp-H中游离氨基酸含量显著低于HAHp的游离氨基酸总量,其中半胱氨酸全部损失,赖氨酸含量也降低,但是疏水氨基酸比例则由加热前45.92%提高至加热后48.74%。分子量分布表明热处理提高了HAHp-H中30005000 Da和小于500 Da组分含量,体外抗氧化实验结果表明HAHp-H能有效地清除DPPH自由基和羟自由基,并且还原力显著强于HAHp。本文采用MTT法测定了黄鲫蛋白抗菌肽HAHp和热处理产物HAHp-H体外抑制人前列腺癌DU-145、肺癌1299和食道癌109细胞增殖能力,结果表明HAHp和HAHp-H对前列腺癌DU-145和肺癌1299的抑增殖效果要好于食道癌109。HAHp和HAHp-H抑制前列腺癌细胞DU-145的IC50值分别为41.14 mg/mL和13.67 mg/mL;抑制肺癌细胞1299的IC50值HAHp和HAHp-H则分别为40.28 mg/mL和25.17 mg/mL;HAHp和HAHp-H在浓度为40 mg/mL时才表现出对食道癌细胞109增殖抑制作用。而且,HAHp-H对肿瘤细胞增殖抑制率高于同浓度的HAHp。采用细胞形态结构和HE染色法观察到人前列腺癌细胞DU-145与HAHp和HAHp-H作用48h后,细胞形态结构变化明显,出现细胞凋亡特征。
摘要第5-7页
Abstract第7-9页
0 前言第16-31页
第一章 黄鲫蛋白抗菌肽的制备第31-53页
    第一节 黄鲫蛋白抗菌肽用酶选择第31-39页
        引言第31页
        1 材料与仪器第31-32页
            1.1 实验材料第31页
            1.2 主要试剂第31-32页
            1.3 主要仪器设备第32页
        2 实验方法第32-34页
            2.1 黄鲫常规营养成分测定第32页
            2.2 黄鲫氨基酸组成分析第32页
            2.3 黄鲫蛋白酶解液的制备第32-33页
            2.4 黄鲫各蛋白酶解液的抑菌作用比较第33页
            2.5 具有抑菌作用的黄鲫蛋白酶解液相对分子质量分布第33-34页
        3 结果与分析第34-37页
            3.1 黄鲫营养成分分析第34页
            3.2 黄鲫氨基酸组成分析第34-35页
            3.3 黄鲫各蛋白酶解液的抑菌作用比较第35-36页
            3.4 具有抑菌作用的黄鲫蛋白酶解液相对分子质量分布第36-37页
        4 讨论第37-38页
        5 小结第38-39页
    第二节 黄鲫蛋白抗菌肽制备工艺优化第39-53页
        引言第39页
        1 材料与仪器第39-40页
            1.1 实验材料第39页
            1.2 主要试剂第39-40页
            1.3 主要仪器设备第40页
        2 实验方法第40-42页
            2.1 抑菌活性测定:抑菌圈法第40页
            2.2 酶解液蛋白浓度快速测定第40-41页
            2.3 响应面分析实验第41页
            2.4 黄鲫蛋白抗菌肽的蛋白提取率、可溶性肽含量及水解度第41-42页
            2.5 黄鲫蛋白抗菌肽的分子量分布第42页
            2.6 氨基酸组成分析第42页
            2.7 黄鲫蛋白抗菌肽的抗菌谱和抗菌效力第42页
        3 结果与讨论第42-52页
            3.1 响应面分析第42-48页
            3.2 验证性实验第48-49页
            3.3 黄鲫蛋白抗菌肽的蛋白提取率、可溶性肽含量及水解度第49页
            3.4 黄鲫蛋白抗菌肽的分子量分布第49-50页
            3.5 氨基酸组成分析第50-51页
            3.6 黄鲫蛋白抗菌肽的抗菌谱和抗菌效力第51-52页
        4 小结第52-53页
第二章 黄鲫蛋白抗菌肽的理化性质第53-66页
    第一节 黄鲫蛋白抗菌肽的食品功能性第53-58页
        引言第53页
        1 材料与仪器第53页
            1.1 实验材料第53页
            1.2 主要试剂第53页
            1.3 主要仪器设备第53页
        2 实验方法第53-54页
            2.1 溶解性第53-54页
            2.2 乳化性和乳化稳定性第54页
            2.3 发泡性和泡沫稳定性第54页
            2.4 数据统计分析第54页
        3 结果与讨论第54-57页
            3.1 溶解性第55页
            3.2 乳化性和乳化稳定性第55-56页
            3.3 发泡性和泡持性第56-57页
        4 小结第57-58页
    第二节 黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌影响因素第58-66页
        引言第58页
        1 材料与仪器第58-59页
            1.1 实验材料第58页
            1.2 主要试剂第58页
            1.3 主要仪器设备第58-59页
        2 实验方法第59-60页
            2.1 抑菌性测定第59页
            2.2 黄鲫蛋白抗菌肽的热稳定性第59页
            2.3 黄鲫蛋白抗菌肽对酸碱稳定性第59页
            2.4 黄鲫蛋白抗菌肽对胰蛋白酶稳定性第59页
            2.5 黄鲫蛋白抗菌肽对β-内酰胺酶稳定性第59页
            2.6 冻融次数对黄鲫蛋白抗菌肽抑菌作用的影响第59页
            2.7 金属离子对黄鲫蛋白抗菌肽抑菌作用的影响第59-60页
            2.8 数据统计分析第60页
        3 结果与讨论第60-65页
            3.1 黄鲫蛋白抗菌肽的热稳定性第60页
            3.2 黄鲫蛋白抗菌肽对酸碱稳定性第60-61页
            3.3 黄鲫蛋白抗菌肽对胰蛋白酶稳定性第61-62页
            3.4 黄鲫蛋白抗菌肽对β——内酰胺酶稳定性第62-63页
            3.5 冻融次数对黄鲫蛋白抗菌肽抑菌作用的影响第63页
            3.6 金属离子对黄鲫蛋白抗菌肽抑菌作用的影响第63-65页
        4 小结第65-66页
第三章 黄鲫蛋白抗菌肽的分离纯化第66-85页
    引言第66-67页
    1 材料与仪器第67页
        1.1 实验材料第67页
        1.2 主要试剂第67页
        1.3 主要仪器设备第67页
    2 实验方法第67-69页
        2.1 凝胶过滤分离第67-68页
        2.2 凝胶过滤脱盐第68页
        2.3 反相高效液相(RP-HPLC)分离纯化第68页
        2.4 Source 5RPC ST 4.6/150 分析柱分离第68页
        2.5 黄鲫蛋白抗菌肽的肽谱分析第68-69页
            2.5.1 超高效液相色谱(UPLC)分离第68-69页
            2.5.2 LTQ-Orbitrap 质谱鉴定肽序列第69页
        2.6 黄鲫蛋白抗菌肽的化学合成第69页
    3 结果与分析第69-83页
        3.1 黄鲫蛋白抗菌肽的Sephadex G 25 凝胶分离第69-71页
        3.2 二次Sephadex G 25 凝胶分离(凝胶过滤脱盐)第71-72页
        3.3 反相高效液相(RP-HPLC)分离纯化第72-73页
        3.4 Source 5RPC ST 4.6/150 分析柱分离第73-74页
        3.5 黄鲫蛋白抗菌肽的肽谱分析第74-82页
            3.5.1 超高效液相色谱(UPLC)分离第74-75页
            3.5.2 抗菌肽HAHp2-3-I 的肽谱解析第75-82页
        3.6 化学合成肽的抑菌结果第82-83页
    4 讨论第83-84页
    5 小结第84-85页
第四章 黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌模式第85-96页
    引言第85页
    1 材料与仪器第85-86页
        1.1 实验材料第85页
        1.2 主要试剂第85-86页
        1.3 主要仪器设备第86页
    2 实验方法第86-88页
        2.1 黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌模式第86-87页
            2.1.1 黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌曲线第86页
            2.1.2 黄鲫蛋白抗菌肽对细胞膜完整性影响第86-87页
            2.1.3 扫描电镜分析第87页
        2.2 黄鲫蛋白抗菌肽同源性及二级结构分析第87-88页
            2.2.1 同源性分析第87页
            2.2.2 二级结构分析第87-88页
    3 结果与分析第88-94页
        3.1 黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌模式第88-91页
            3.1.1 黄鲫蛋白抗菌肽的抑菌曲线第88页
            3.1.2 对细胞膜完整性影响第88-90页
            3.1.3 扫描电镜结果分析第90-91页
        3.2 黄鲫蛋白抗菌肽同源性及二级结构分析第91-94页
            3.2.1 序列相似性分析第91-93页
            3.2.2 黄鲫蛋白抗菌肽二级结构分析第93-94页
    4 讨论第94-95页
    5 小结第95-96页
第五章 黄鲫蛋白抗菌肽及热处理产物抗氧化作用第96-110页
    引言第96页
    1 材料与仪器第96-97页
        1.1 实验材料第96页
        1.2 主要试剂第96-97页
        1.3 主要仪器设备第97页
    2 实验方法第97-100页
        2.1 加热温度和时间对黄鲫蛋白抗菌肽自由基清除能力影响第97-98页
        2.2 褐变指数第98页
        2.3 游离氨基酸测定第98页
        2.4 氨基酸组成分析第98页
        2.5 黄鲫蛋白抗菌肽及其热处理产物的分子量分布第98-99页
        2.6 体外抗氧化能力第99页
            2.6.1 DPPH 自由基清除能力第99页
            2.6.2 羟自由基清除能力第99页
            2.6.3 金属螯合能力第99页
            2.6.4 还原力第99页
        2.7 数据统计分析第99-100页
    3 结果与分析第100-108页
        3.1 加热温度和时间对黄鲫蛋白抗菌肽自由基清除率影响第100-101页
        3.2 黄鲫蛋白抗菌肽加热产物的褐变指数与DPPH 自由基清除能力关系第101页
        3.3 氨基酸分析第101-104页
        3.4 黄鲫蛋白抗菌肽热处理产物的分子量分布第104-105页
        3.5 热处理产物体外抗氧化作用第105-108页
            3.5.1 体外清除DPPH 自由基能力第105-106页
            3.5.2 体外清除羟自由基能力第106页
            3.5.3 体外还原能力第106-107页
            3.5.4 金属螯合能力第107-108页
    4 讨论第108-109页
    5 小结第109-110页
第六章 黄鲫蛋白抗菌肽及热处理产物的抗肿瘤作用第110-119页
    引言第110页
    1 材料第110-111页
        1.1 实验材料第110页
        1.2 主要试剂第110-111页
        1.3 主要仪器设备第111页
    2 实验方法第111-113页
        2.1 细胞培养第111页
        2.2 抗肿瘤细胞活性(MTT 法)第111-112页
        2.3 形态学观察和HE 染色第112-113页
        2.4 数据统计分析第113页
    3 结果与分析第113-117页
        3.1 黄鲫蛋白抗菌肽及热处理产物对肿瘤细胞株的抑制指数第113-114页
        3.2 黄鲫蛋白抗菌肽及热处理产物对前列腺癌DU-145 细胞形态影响第114-116页
        3.3 HE 染色第116-117页
    4 讨论第117-118页
    5 小结第118-119页
全文总结第119-120页
参考文献第120-138页
致谢第138-139页
发表的学术论文第139页
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