水生植物水葱对沉积物中十溴联苯醚的修复机制研究

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十溴联苯醚(Decabromodiphenyl Ether, BDE-209)由于优异的阻燃效能而最为全球性普遍使用的的溴剂阻燃剂。近年来,BDE-209被发现在环境中普遍存在,甚至南极的沉积物和企鹅中都可检测到其存在,由于其持久性、易于生物富集并且具有内分泌干扰作用而。由于BDE-209的高疏水性,水环境沉积物是BDE-209的主要蓄积库,中国是世界上沉积物BDE-209检出率与检出值最高的国家之一。目前,对于环境中的BDE-209污染的修复方法主要有光降解、高温和微生物降解,但这些方法大都不适用于水环境中BDE-209污染的修复。绿色、经济、可持续性的生物修复技术-植物修复是解决沉积物有机污染物最有前景的修复技术,由于在水环境沉积物污染物修复中微生物修复技术难以有效应用,因此植物修复技术具有更好的应用前景,但是目前关于沉积物PBDEs污染的植物修复技术研究尚未有报道。本研究前期通过筛选实验发现水生植物水葱(Scirpus validus Vahl)对沉积物中的BDE-209具有良好的修复效果。因此,本研究进一步开展水葱来对沉积物中的BDE-209的抗性及修复机制研究,包括水葱对BDE-209的抗性、生物富集能力及修复效率,增效方法、BDE-209代谢变化、根际微生物群落及降解菌分析等,本研究结果对水环境多溴联苯醚污染的生物修复具有参考价值。通过比较我国常见的四种挺水植物对BDE-209的修复效果,选择水葱(Scirpus validus Vahl)用于进一步研究。为了解水葱对BDE-209的抗性,研究了水葱对沉积物中BDE-209的生理学响应。结果表明沉积物中的BDE-209在2-30 mg·kg-1dw内不会对水葱产生不利影响(p>0.05),但其作为一种OPs在高浓度时(30mg·kg-1)在修复初期对水葱产生了胁迫,表现在根部丙二醛(MDA)增加,叶绿素含量、叶绿素荧光、根系活力有所降低,60天内植物体内抗氧化酶系统超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)及过氧化氢酶(CAT)活性增强,但BDE-209的早期胁迫并没有对水葱的生长造成明显影响,其生物量无显著差异(p>0.05)。以上结果表明水葱能在BDE-209高达30 mg·kg-1的底泥中正常生长,对该污染物有很强生理学抗性。研究了水葱对三种典型沉积物(淤泥、黄泥、砂质沉积物)中BDE-209的修复效率及吸收富集能力。经过18个月修复实验,淤泥修复组、黄泥修复组、砂质沉积物修复组中BDE-209分别减少了92.84%、84.04%及72.22%,去除率比各自对照组分别提高了148%、197%、233%。结果表明水葱可有效修复三种典型沉积物中BDE-209污染。水葱不仅可以通过根部从沉积物中吸收富集BDE-209,而且还具有向地上部分传导的能力。但是水葱组织对沉积物中BDE-209的吸收富集过程是一个被动过程,与沉积物中BDE-209的浓度紧密相关。由于BDE-209的高疏水性,水葱对BDE-209的BCFs与TFs都相对较小,表明其对BDE-209的吸收富集传导作用有限。BDE-209主要富集在水葱根部,只有少量传输到地上部分。水生植物修复沉积物BDE-209污染过程中,光解及其他非生物因素对沉积物中BDE-209去除贡献比例较小,分别占8.44%及8.23%,水葱根部及地上部分对沉积物中BDE-209吸收富集对BDE-209的去除贡献作用有限,仅仅占0.5%。沉积物土著微生物及水葱根际微生物才是植物修复BDE-209的主要成员,对照组中土著微生物的降解占83.35%,实验组中水葱根际微生物的作用占94.66%。采用GC/MS对BDE-209在根际沉积物、水葱根部及地上部分的降解产物进行了研究,在根际沉积物中发现了16种PBDEs同系物,主要为Nona-BDEs、Octa-BDEs、Hepta-BDEs、Hex-BDEs、Penta-BDEs、Tetra-BDEs及Tri-BDEs7种溴代PBDEs,水葱根部组织中检测出16种BDE-209代谢产物,主要为Nona-BDEs、Hex-BDEs、Penta-BDEs、Tetra-BDEs、Tri-BDEs及Di-BDEs 6种溴代PBDEs,地上部分发现7种BDE-209代谢产物,主要Hepta-BDEs、Penta-BDEs、Tetra-BDEs及Di-BDEs 4种溴代PBDEs,以上结果表明BDE-209在沉积物-水生植物系统中可通过脱溴作用代谢成低溴代PBDEs.为提高水葱对沉积物中BDE-209污染的修复效率,分析了表面活性剂及β-环糊精强化植物修复的效果以及水葱对增效剂的耐受能力。结果表明沉积物中浓度范围为300-1000 mg-kg-1的四种增效剂CATB、SDS、Tween80、β-CD在整个修复过程中对水葱的生长(株高及茎干直径)没有明显影响,说明水葱对这四种高浓度增效剂具有较强抗性。沉积物中加入600-1000 mg-kg-1 CATB、SDS、Tween80都可有效提高水葱修复沉积物中BDE-209的效率;180天对照组BDE-209去除了34.93%,300-1000 mg-kg-1 CTAB对BDE-209修复效率提高了2.85%-11.78%; 300-1000 mg-kg-1 SDS的对BDE-209的修复效率提高了4.52%-14.25%; 300-1000mg-kg-1 Tween80对BDE-209的修复效率提高了7.37%-19.33%; p-CD在300-1000 mg-kg-1对BDE-209的植物修复效率只增加了1.03%~7.78%,其对沉积物中BDE-209的去除没有明显促进作用。以上结果表明三种表面活性剂都可以作为沉积物BDE-209水葱修复的增效剂,其中Tween80效率较好。为揭示水葱修复沉积物中BDE-209过程中根际微生物的作用,采用DAPI荧光染色计数、平板计数法、及沉积物脱氢酶与脲酶活性分析了根际及非根际沉积物中微生物(细菌、真菌、放线菌)数量和活性。结果表明水葱的种植可显著提高沉积物中微生物的数量,三种沉积物根际中细菌数量较非根际增加了2-12倍,根际效应明显,根际沉积物真菌数量较非根际增加了1-4倍,水葱的种植对沉积物中放线菌的影响较小,淤泥和黄泥根际沉积物中放线菌数量较非根际区别不明显,砂质根际沉积物中放线菌数量明显高于非根际。同时,由于微生物数量的增加,三种沉积物根际微生物酶活力(脱氢酶及脲酶)在修复过程中都显著大于非根际,说明水葱的种植可以提高沉积物中微生物的活力。沉积物酶活表现出淤泥>黄泥>砂质沉积物的趋势。以上结果显示微生物数量及沉积物酶活的差别是造成水葱对三种典型沉积物中BDE-209修复效率不同的主要原因之一。为了解水葱根际沉积物中细菌群落特征并辨别主要降解菌,采用限制性内切酶片段长度多态性(restriction fragment length polymorphism, RFLP)分析了水葱根际沉积物中细菌多样性及差异。结果表明,水葱根际沉积物中细菌多样性丰富,最多包含分布于12个已知门类的细菌和一些未被认知的序列:a-变形菌(Alphaproteobacteria)、β-变形菌(Betaproteobacteria)、δ-变形菌(Deltaproteobacteria)、γ-变形菌(Gammaproteobacteria)、浮霉菌门(Planctomycetes)和酸杆菌门(Acidobacteria)、优杆菌属(eubacterium)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、黄杆菌属(Flavobacterium)、绿弯菌门(Chloroflexi)及未能归类的OTUs。BDE-209污染根际沉积物及未污染根际沉积物中优势菌群为β-变形菌(β-proteobacteria)、δ-变形菌(δ-Proteobacteria)、α-变形菌(α-proteobacteria)及酸杆菌(Acidobacteria)及绿弯菌(Chloroflexi),但是两种沉积物优势菌数量及细菌群落结构上有明显差异。本研究表明根际沉积物中优势菌β-Proteobacteria及α-Proteobacteria有可能是降解BDE-209的主要菌群。淡水河河道水质持续净化技术集成示范工程由沉淀塘、曝气、人工湿地和水生植物塘组成,目的是研究集成技术对河道有毒污染物和常规污染物的处理效果。由于植物修复是该工程的主要工艺环节,本文对该示范工程运行中有毒有机污染物的处理效果进行了监测分析。多次监测结果表明,示范工程对多环芳烃(polycyclic aromatic hydrocarbons, PAHs)处理效率达40%以上,其中5种同系物的去除率:萘(NAP) 44.13%-59.23%,芴(FLU) 44.1%-54.61%,菲(PHE)50.90%~54.70%,芘(PYR)61.88%~80.61%,荧葸(FLT)44.83%-56.64%。同时示范工程对淡水河中的十溴联苯醚(BDE-209)以及内分泌干扰物双酚A (bisphenol A, BPA)的处理效果均达到100%。结果表明淡水河河道水质持续净化技术集成示范工程的工艺对河水中有毒有机污染物具有良好的净化作用,具有推广价值。
中文摘要第6-9页
Abstract第9-12页
第一章 文献综述第18-37页
    1.1 多溴联苯醚(PBDES)介绍第18-21页
        1.1.1 PBDEs化学结构第18-19页
        1.1.2 PBDEs同系物组理化性质第19页
        1.1.3 PBDEs阻燃机制第19页
        1.1.4 商品化PBDEs第19-21页
    1.2 环境中PBDEs污染源第21-22页
    1.3 PBDES环境分配第22-23页
    1.4 PBDES在各种环境介质中的存在第23-26页
        1.4.1 水体中PBDEs第23页
        1.4.2 大气中PBDEs第23-24页
        1.4.3 土壤中PBDEs来源及分布第24页
        1.4.4 沉积物中PBDEs来源及分布第24-25页
        1.4.5 生物体中PBDEs来源及分布第25-26页
        1.4.6 人体中PBDEs来源及分布第26页
    1.5 PBDEs的生态学效应第26-27页
        1.5.1 PBDEs的内分泌干扰效应第26-27页
        1.5.2 PBDEs的神经毒性效应第27页
    1.6 PBDEs污染环境的修复与治理技术第27-29页
        1.6.1 PBDEs的光降解第27-28页
        1.6.2 PBDEs的化学降解第28页
        1.6.3 PBDEs的微生物降解第28-29页
    1.7 植物修复及在有机污染物修复中的应用第29-32页
        1.7.1 植物修复简介第29-30页
        1.7.2 植物对有机污染物OPs的修复第30-31页
        1.7.3 植物修复OPs研究进展第31-32页
    1.8 本文的研究内容、目的和意义第32-37页
        1.8.1 研究内容第32-34页
        1.8.2 技术路线第34-35页
        1.8.3 研究目的及意义第35-37页
第二章 沉积物中十溴联苯醚对水葱的生理学效应第37-87页
    2.1 前言第37页
    2.2 实验材料第37-39页
        2.2.1 沉积物及水生植物第37-38页
        2.2.2 主要化学试剂第38-39页
        2.2.3 主要分析仪器及规格第39页
    2.3 实验方法第39-43页
        2.3.1 实验地点概况第39页
        2.3.2 沉积物理化指标分析方法第39页
        2.3.3 实验设置第39-40页
        2.3.4 植物生理生化实验方法第40-41页
        2.3.5 植物和土壤样品的采集及保存第41页
        2.3.6 沉积物中及植物样品中BDE-209的萃取第41-42页
        2.3.7 沉积物中及植物样品中BDE-209的净化第42页
        2.3.8 BDE-209仪器分析第42页
        2.3.9 回收率与质量控制(QA/QC)第42页
        2.3.10 作图与数据统计分析第42-43页
    2.4 结果与分析第43-56页
        2.4.1 沉积物及水葱样品BDE-209加标回收率第43-44页
        2.4.2 BDE-209修复水生植物的筛选第44-45页
        2.4.3 沉积物中不同浓度BDE-209对水葱生物量的影响第45-48页
        2.4.4 沉积物中不同浓度BDE-209对水葱MDA含量的影响第48-49页
        2.4.5 沉积物中不同浓度BDE-209对水葱根系活力的影响第49-50页
        2.4.6 沉积物中不同浓度BDE-209对水葱叶绿素及叶绿素荧光的影响第50-51页
        2.4.7 沉积物中不同浓度BDE-209对水葱体内抗氧化酶系的影响第51-53页
        2.4.8 根际和非根际沉积物中BDE-209去除率变化第53-55页
        2.4.9 BDE-209在水葱体内的分布第55-56页
    2.5 讨论第56-58页
    2.6 本章小结第58-59页
    第三章 S.VALIDUS VAHL对沉积物中BDE-209的去除能力与机制研究第59页
    3.1 前言第59页
    3.2 实验材料第59-63页
        3.2.1 沉积物及水生植物的采集第59-62页
        3.2.2 主要化学试剂第62-63页
        3.2.3 主要分析仪器及规格第63页
    3.3 实验方法第63-66页
        3.3.1 实验地点概况第63页
        3.3.2 BDE-209污染沉积物的制备第63-64页
        3.3.3 实验设置第64页
        3.3.4 沉积物及植物样品低溴代PBDEs GC/MS分析前处理第64-65页
        3.3.5 样品的GC/MS检测第65页
        3.3.6 植物生理学分析方法第65页
        3.3.7 沉积物中BDE-209的测定方法第65页
        3.3.8 植物体BDE-209的测定方法第65页
        3.3.9 质量控制与保证第65页
        3.3.10 公式计算第65页
        3.3.11 作图与资料统计分析第65-66页
    3.4 结果与分析第66-82页
        3.4.1 三种典型沉积物样品BDE-209加标回收率第66-67页
        3.4.2 修复过程中水葱生物量变化第67-69页
        3.4.3 水葱对淤泥中BDE-209的修复效率第69页
        3.4.4 水葱对黄泥中BDE-209的修复效率第69-70页
        3.4.5 水葱对砂质沉积物中BDE-209的修复效率第70-71页
        3.3.6 水葱对淤泥中BDE-209的吸收富集及传导第71-73页
        3.3.7 水葱对黄泥中BDE-209的吸收富集及传导第73-75页
        3.3.8 水葱对砂质沉积物中BDE-209的吸收富集及传导第75-77页
        3.4.9 水生植物修复沉积物中BDE-209机制分析第77-78页
        3.4.10 BDE-209在根际沉积物中的降解产物分析第78-79页
        3.4.11 BDE-209在水葱根部的降解产物分析第79-81页
        3.4.12 BDE-209在水葱地上部分的降解产物分析第81-82页
    3.5 讨论第82-85页
    3.6 本章小结第85-87页
第四章 表面活性剂及B-环糊精对S.VALIDUS VAHL修复沉积物BDE-209污染的增效修复作用第87-98页
    4.1 前言第87页
    4.2 实验材料第87-89页
        4.2.1 沉积物及水生植物第87-88页
        4.2.2 药品、材料及规格第88-89页
        4.2.3 实验仪器及规格第89页
    4.3 实验方法第89-91页
        4.3.1 实验地点概况第89页
        4.3.2 BDE-209污染沉积物的制备及表面活性剂的添加第89-90页
        4.3.3 实验设置第90页
        4.3.4 沉积物中BDE-209的测定方法第90页
        4.3.5 质量控制与保证第90-91页
        4.3.6 数据统计与分析第91页
    4.4 结果与分析第91-95页
        4.4.1 水葱生物量第91-92页
        4.4.2 不同浓度阳离子表面活性剂对水葱修复沉积物中BDE-209的影响第92-93页
        4.4.3 不同浓度阴离子表面活性剂对水葱修复沉积物中BDE-209的影响第93-94页
        4.4.4 不同浓度非离子表面活性剂对水葱修复沉积物中BDE-209的影响第94-95页
        4.4.5 不同浓度β-CD对水葱修复沉积物中BDE-209的影响第95页
    4.5 讨论第95-97页
    4.6 本章小结第97-98页
第五章 BDE-209植物修复过程中根际微生物群落特征分析第98-125页
    5.1 前言第98-99页
    5.2 实验材料第99页
        5.2.1 主要试剂及仪器第99页
    5.3 实验方法第99-105页
        5.3.1 沉积物样品的采集第99页
        5.3.2 DAPI法测定根际及非根际细菌数量沉积物样品的前处理第99页
        5.3.3 DAPI荧光染色计数第99-100页
        5.3.4 根际及非根际沉积物真菌数量测定方法第100页
        5.3.5 根际及非根际沉积物放线菌数量测定方法第100-101页
        5.3.6 根际及非根际沉积物脱氢酶活力的测定第101页
        5.3.7 根际及非根际沉积物脲酶活力的测定第101页
        5.3.8 根际及非根际沉积物总DNA提取与纯化第101页
        5.3.9 根际及非根际细菌16S rDNA PCR扩增第101-102页
        5.3.10 PCR产物的纯化第102页
        5.3.11 PCR产物连接第102页
        5.3.12 根际及非根际细菌16S rDNA克隆文库的构建第102-103页
        5.3.13 阳性克隆的筛选第103页
        5.3.14 限制性片段长度多态性(Restriction Fragment Length Polymorphism,RFLP)分型第103页
        5.3.15 克隆文库分析第103页
        5.3.16 系统发育分析第103-104页
        5.3.17 数据统计与分析第104-105页
    5.4 结果与分析第105-121页
        5.4.1 修复过程中根际及非根际细菌数量变化第105-106页
        5.4.2 修复过程中根际及非根际放线菌数量变化第106-108页
        5.4.3 修复过程中根际及非根际真菌数量变化第108-110页
        5.4.4 修复过程中根际及非根际DHA变化第110-111页
        5.4.5 修复过程中根际及非根际UA变化第111-112页
        5.4.6 水葱根际沉积物总DNA的提取第112页
        5.4.7 沉积物细菌16S rRNA基因的扩增第112-113页
        5.4.8 RFLP酶切分析第113-114页
        5.4.9 细菌16S rRNA基因克隆文库组成及系统发育分析第114-121页
    5.5 讨论第121-123页
    5.6 本章小结第123-125页
第六章 淡水河水质持续净化示范工程对水体有毒有机污染物的处理效果第125-132页
    6.1 前言第125页
    6.2 材料与方法第125-130页
        6.2.1 实验材料第125-126页
        6.2.2 样品采集第126页
        6.2.3 水样中有毒有机污染物分析方法第126-127页
        6.2.4 淡水河水质持续净化示范工程参数及示意图第127-130页
    6.3 监测结果与分析第130-131页
    6.4 本章小结第131-132页
第七章 总结与展望第132-134页
参考文献第134-152页
在校期间发表的论文、科研成果等第152-154页
致谢第154页
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