玉米丝氨酸羧肽酶基因(ZmSCP)的克隆及功能分析

丝氨酸羧肽酶论文 基因克隆论文 表达模式论文 遗传转化论文 功能分析论文
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植物在其长期进化过程中常受到一些病原微生物的侵袭;植物和病原微生物在生态系统中长期并存,相互影响,乃至协同进化。在这一过程中植物逐渐形成了一系列防御机制来保护自己。植物抗病反应是一个非常复杂的过程,涉及到多种调控防卫反应,包括对病原微生物的识别、信号传导途径中的信号传导、抗病反应基因的调控和表达等。丝氨酸羧肽酶(serine carboxypeptidases, SCP)基因和丝氨酸羧肽酶类蛋白(serine carboxypeptidases-like, SCPL)在植物伤应答反应、油菜素内酯等合成途径中起着重要作用。本研究以玉米高耐纹枯病自交系R15和烟草W38为实验材料,利用电子克隆、RACE技术从R15中克隆了玉米丝氨酸羧肽酶基因;利用半定量RT-PCR和Real-time PCR对目的基因表达模式进行分析;利用原核表达系统表达大量蛋白,并进行体外抑菌特性分析。同时,构建过量表达载体转化烟草初步探讨基因的生物学功能,主要研究结果如下:(1)结合电子克隆、RT-PCR技术和RACE技术对与丝氨酸羧肽酶基因同源的EST序列进行克隆。结果显示,该基因全长为1874 bp(GenBank登录号:JF682634),开放阅读框为999 bp,起始于154 bp,终止于1152 bp,5’-UTR区为153 bp,3’-UTR区为722 bp,具有连续的Poly A尾和典型的加尾信号AATTAA。Protparam程序分析表明该基因编码332个氨基酸,相对分子量为36.505 kD,等电点为4.75,为酸性蛋白。利用Genedoc软件分析同源性,结果显示ZmSCP基因编码蛋白与其他高等植物中该蛋白具有一定的同源性,同源性比例范围为42%-81%。进化树分析表明ZmSCP基因与水稻、高粱亲缘关系较近,属于同一进化分支。现将该基因命名为ZmSCP。(2)利用生物信息学方法对目的基因编码产物的氨基酸组成、蛋白质修饰位点、信号肽区域、亚细胞定位和保守结构域等进行预测和分析。结果显示,该基因编码的氨基酸有四种类型,其中疏水氨基酸最多;蛋白质序列可能有4种修饰方式,即1个N-端糖基化位点、2个蛋白激酶C磷酸化位点、2个酪蛋白激酶Ⅱ磷酸化位点,8个N-端豆蔻酰化的修饰位点;蛋白质序列无信号肽区域;亚细胞定位结果显示该蛋白多表达于细胞质及微体中;蛋白质序列保守结构域分析显示该基因编码产物具有S10结构域,属于S10超家族。(3)提取玉米基因组DNA,利用4种限制性内切酶EcoRⅠ、NotⅠ、SpeⅠ和Bgl II进行酶切。Southern杂交结果显示,四个杂交泳道均有几条杂交带,且呈弥散状,推测该基因可能属于多拷贝。(4)以玉米自交系R15为材料,利用半定量RT-PCR与荧光定量PCR相结合的方法对ZmSCP基因在不同逆境条件下mRNA表达模式进行研究。结果表明,目的基因在不同胁迫条件下,总体均呈诱导表达的趋势。其中,在立枯丝核菌AG1-IA诱导下,ZmSCP基因表达呈两步诱导趋势,第一次诱导出现在接菌后24 h,然后下降,第二次诱导出现在接菌后60 h,与不接菌相比,出现显著性差异。在ABA、JA、低温和盐胁迫下,ZmSCP基因表达均呈现上调趋势,表达高峰均出现在胁迫后48 h。(5)以立枯丝核菌AG1-IA诱导的高耐玉米纹枯病自交系R15幼苗为材料,通过RT-PCR扩增ZmSCP基因的开放阅读框,先后将其克隆到pMD-18T载体、亚克隆到pET32a(+)表达载体上,获得原核表达载体pET32a(+)-ZmSCP,鉴定正确后转化大肠杆菌BL21,在不同的诱导温度(28℃,37℃)、不同浓度(0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0mmol/L)的IPTG、不同诱导时间(0,2,4,6,8,10 h)下对诱导体系进行优化。结果表明,ZmSCP基因的最佳诱导体系为0.6 mmol/L IPTG在37℃诱导6 h,经Western blot检测证实有58 KD的融合蛋白存在,SDS-PAGE和Western blot均证明目的蛋白在大肠杆菌中成功表达。(6)目的蛋白经Ni-NTA树脂纯化,定量后设置三个不同浓度,以PBS溶液为对照与立枯丝核菌进行共培养,培养24h后观察菌丝的生长并进行拍照,同时测量抑菌圈大小,并在显微镜下观察菌丝的生长状况。结果表明,融合蛋白为20μg时,立枯丝核菌菌丝生长受到抑制,而且随着融合蛋白量的增加,抑制现象更加明显;且抑菌圈的大小与融合蛋白浓度呈正相关;显微照相结果显示随着蛋白浓度的增加,菌丝的生长减慢,且菌丝密度降低。(7)为进一步分析ZmSCP基因的功能,构建过量表达载体pCAMBIA1301-ZmSCP(启动子为35S)进行烟草转化。实验中共得到抗性植株21株,经基因组PCR、mRNA水平(半定量RT-PCR)和蛋白质(SDS-PAGE)水平分析表明,共获得7株阳性植株,命名为株系1-株系7。通过高浓度卡那抗性对转基因种子发芽率进行分析,统计抗性苗与非抗性苗的比例,结果显示抗性苗与非抗性苗比例约为3:1,初步表明ZmSCP能够在后代稳定遗传和表达。(8)通过对T1代转基因烟草植株抗逆性研究发现,转基因烟草对玉米纹枯病致病菌立枯丝核菌、烟草赤星病病菌、烟草黑径病病菌抗性有不同程度的提高,同时,这些转基因植株中防卫相关基因NtPR1、NtPR2、NtPR3、NtPR5和NtPAL的表达有所增加。另外,转基因植株对非生物胁迫,如干旱、高盐、氧化等均表现出一定的抗性,说明目的基因ZmSCP基因具有广谱抗性,也进一步说明植物抗病反应涉及到多种信号传导途径以及众多蛋白因子的协同作用。
摘要第4-7页
Abstract第7-9页
第一章 文献综述第18-46页
    1.1 植物对逆境胁迫的响应第19-35页
        1.1.1 植物对生物胁迫的响应第19-29页
            1.1.1.1 植物抗病基因第20-22页
            1.1.1.2 植物抗病相关基因第22-26页
            1.1.1.3 植物抗病信号传导途径第26-29页
        1.1.2 植物对非生物胁迫的响应第29-32页
            1.1.2.1 内源性保护物质第30-31页
            1.1.2.2 植物对非生物胁迫应答的信号传导途径第31-32页
        1.1.3 逆境胁迫相关转录因子第32-35页
            1.1.3.1 bZIP转录因子第33页
            1.1.3.2 MYB转录因子第33页
            1.1.3.3 DREB转录因子第33-34页
            1.1.3.4 NAC转录因子第34页
            1.1.3.5 WRKY转录因子第34-35页
    1.2 丝氨酸羧肽酶基因研究进展第35-39页
        1.2.1 丝氨酸羧肽酶结构与分布第35-37页
        1.2.2 氨酸羧肽酶分类第37页
        1.2.3 丝氨酸羧肽酶类蛋白第37-38页
        1.2.4 丝氨酸羧肽酶及其类蛋白的功能第38-39页
    1.3 基因功能研究方法第39-42页
        1.3.1 原核表达系统第39-40页
        1.3.2 酵母表达系统第40-41页
        1.3.3 基因的遗传转化第41-42页
        1.3.4 RNA沉默第42页
    1.4 本研究目的、意义及研究路线第42-46页
        1.4.1 本研究目的及意义第42-43页
        1.4.2 本研究内容及总体路线第43-46页
第二章 材料与方法第46-76页
    2.1 试验材料第46-51页
        2.1.1 供试材料第46页
        2.1.2 病原菌第46页
        2.1.3 酶、菌株与载体第46-48页
        2.1.4 培养基及常用溶液第48-50页
        2.1.5 试剂盒与试剂第50页
        2.1.6 主要仪器第50-51页
    2.2 试验方法第51-76页
        2.2.1 植物材料的培育及处理第51页
        2.2.2 病原菌培养及其接种方法第51-52页
        2.2.3 ZmSCP基因的克隆与鉴定第52-59页
            2.2.3.1 总RNA的提取、检测及cDNA第一链合成第52-53页
            2.2.3.2 ZmSCP基因的电子克隆第53页
            2.2.3.3 引物设计第53页
            2.2.3.4 中间片段的RT-PCR分析第53-54页
            2.2.3.5 目的片段克隆测序第54-56页
                2.2.3.5.1 目的片段回收第54页
                2.2.3.5.2 感受态细胞的制备(CaCl_2法)第54-55页
                2.2.3.5.3 连接反应第55页
                2.2.3.5.4 热击法进行转化第55页
                2.2.3.5.5 阳性克隆的鉴定第55-56页
            2.2.3.6 RACE(5'RACE和3'RACE)第56-57页
                2.2.3.6.1 RACE cDNA模板合成第56-57页
                2.2.3.6.2 RACE-PCR第57页
                2.2.3.6.3 目的片段克隆及测序第57页
            2.2.3.7 cDNA全长的获得第57页
            2.2.3.8 生物信息学分析第57-58页
            2.2.3.9 ZmSCP基因在玉米中拷贝数分析第58-59页
                2.2.3.9.1 米材料DNA提取第58页
                2.2.3.9.2 探针的制备第58-59页
                2.2.3.9.3 Southern blot第59页
        2.2.4 ZmSCP基因表达模式分析第59-61页
            2.2.4.1 米材料的准备及处理第59-60页
            2.2.4.2 半定量RT-PCR与荧光定量PCR第60-61页
                2.2.4.2.1 引物设计第60页
                2.2.4.2.2 总RNA提取和cDNA第一链合成第60页
                2.2.4.2.3 实时荧光定量PCR引物的特异性检测第60页
                2.2.4.2.4 定量标准品的制备第60页
                2.2.4.2.5 FQ-PCR反应及结果分析第60页
                2.2.4.2.6 半定量RT-PCR第60-61页
        2.2.5 ZmSCP基因的原核表达及体外抑菌特性分析第61-67页
            2.2.5.1 ZmSCP基因ORF的分离第61页
            2.2.5.2 原核表达载体的构建第61-63页
            2.2.5.3 ZmSCP基因在大肠杆菌中的诱导表达第63-64页
                2.2.5.3.1 最佳诱导时间的分析第63-64页
                2.2.5.3.2 最佳诱导剂浓度分析第64页
                2.2.5.3.3 最佳诱导温度分析第64页
            2.2.5.4 表达产物的SDS-PAGE分析第64-65页
            2.2.5.5 融合蛋白的Western blot检测第65-66页
            2.2.5.6 目的蛋白对立枯丝核菌抑菌特性分析第66-67页
                2.2.5.6.1 目的蛋白的纯化第67页
                2.2.5.6.2 目的蛋白体外抑菌特性分析第67页
        2.2.6 ZmSCP基因的转基因研究第67-76页
            2.2.6.1 植物材料准备第67页
            2.2.6.2 过量表达载体构建第67-69页
                2.2.6.2.1 ZmSCP基因ORF的分离第67-68页
                2.2.6.2.2 酶切及连接第68-69页
            2.2.6.3 农杆菌转化第69-70页
                2.2.6.3.1 农杆菌感受态细胞的制备第69-70页
                2.2.6.3.2 冻融法转化农杆菌第70页
                2.2.6.3.3 转化子的PCR检测第70页
            2.2.6.4 农杆菌转化烟草第70-71页
            2.2.6.5 转基因阳性植株的筛选第71-72页
                2.2.6.5.1 烟草基因组DNA、RNA、蛋白质的提取第71页
                2.2.6.5.2 转基因阳性植株的分子检测第71-72页
            2.2.6.6 转基因烟草植株中防卫相关基因的表达分析第72-73页
            2.2.6.7 ZmSCP转基因烟草生长状况调查第73页
            2.2.6.8 ZmSCP转基因烟草植株抗病性鉴定第73-75页
                2.2.6.8.1 烟草赤星病病原菌处理第73-74页
                2.2.6.8.2 烟草青枯病病原菌处理第74页
                2.2.6.8.3 米纹枯病病原菌处理第74-75页
            2.2.6.9 ZmSCP转基因烟草植株叶片抗盐性测定第75页
            2.2.6.10 ZmSCP转基因烟草种子抗旱性分析第75页
            2.2.6.11 ZmSCP转基因烟草植株抗氧化性分析第75-76页
第三章 结果与分析第76-122页
    3.1 ZmSCP基因全长cDNA序列的克隆与序列分析第76-89页
        3.1.1 丝氨酸羧肽酶基因的电子克隆第76页
        3.1.2 玉米总RNA的提取和鉴定第76-77页
        3.1.3 ZmSCP基因全长cDNA序列的克隆第77页
        3.1.4 ZmSCP基因的生物信息学分析第77-87页
            3.1.4.1 ZmSCP基因编码的氨基酸及其在基因组中分布情况第77-80页
            3.1.4.2 不同植物的SCP基因编码的氨基酸同源性及进化树分析第80-82页
            3.1.4.3 丝氨酸羧肽酶的氨基酸组成分析第82-83页
            3.1.4.4 氨酸羧肽酶蛋白质的修饰位点预测第83-84页
            3.1.4.5 氨酸羧肽酶蛋白质信号肽的预测第84-85页
            3.1.4.6 丝氨酸羧肽酶蛋白质亚细胞定位结果预测第85-86页
            3.1.4.7 丝氨酸羧肽酶保守结构域分析第86-87页
        3.1.5 ZmSCP基因的拷贝数分析第87-89页
            3.1.5.1 探针效率检测第87-88页
            3.1.5.2 Southern杂交第88-89页
    3.2 ZmSCP基因表达模式分析第89-96页
        3.2.1 引物的特异性检测第89-90页
        3.2.2 荧光定量扩增效率检测第90-91页
        3.2.3 ZmSCP基因在逆境胁迫下的表达模式分析第91-96页
            3.2.3.1 ZmSCP基因在立枯丝核菌胁迫下的表达模式分析第91-92页
            3.2.3.2 ZmSCP基因在ABA胁迫下的表达模式分析第92-93页
            3.2.3.3 ZmSCP基因在JA胁迫下的表达模式分析第93-94页
            3.2.3.4 ZmSCP基因在低温胁迫下的表达模式分析第94-95页
            3.2.3.5 ZmSCP基因在盐胁迫胁迫下的表达模式分析第95-96页
    3.3 ZmSCP基因的原核表达及体外抑菌特性分析第96-102页
        3.3.1 ZmSCP基因开放阅读框的分离第96-97页
        3.3.2 重组表达质粒pET32a(+)-ZmSCP的构建第97-99页
        3.3.3 pET32a(+)-ZmSCP在大肠杆菌中的诱导表达第99-100页
        3.3.4 表达产物Western blot检测第100页
        3.3.5 目的蛋白体外抑菌特性分析第100-102页
            3.3.5.1 目的蛋白纯化第100-101页
            3.3.5.2 目的蛋白体外抑菌特性分析第101-102页
    3.4 ZmSCP基因的转化实验第102-122页
        3.4.1 ZmSCP基因开放阅读框的分离第103页
        3.4.2 植物双元表达载体pCAMBIA1301-ZmSCP的构建第103-105页
        3.4.3 ZmSCP转基因烟草植株的获得第105-107页
        3.4.4 ZmSCP转基因烟草植株的检测第107-110页
            3.4.4.1 转基因烟草的PCR检测第107-108页
            3.4.4.2 转基因烟草的RT-PCR检测第108-109页
            3.4.4.3 转基因烟草表达蛋白检测第109-110页
        3.4.5 转基因烟草植株中防卫相关基因的表达分析第110-111页
        3.4.6 ZmSCP转基因烟草生长状况调查第111-112页
        3.4.7 ZmSCP转基因烟草植株抗病性鉴定第112-116页
            3.4.7.1 烟草赤星病病原菌处理第112-114页
            3.4.7.2 烟草青枯病病原菌处理第114页
            3.4.7.3 米纹枯病病原菌立枯丝核菌胁迫处理第114-116页
        3.4.8 ZmSCP转基因烟草植株叶片抗盐性测定第116-118页
        3.4.9 ZmSCP转基因烟草种子抗旱性分析第118-119页
        3.4.10 ZmSCP转基因烟草抗氧化分析第119-122页
第四章 讨论第122-130页
    4.1 玉米ZmSCP基因的克隆第122-123页
    4.2 ZmSCP基因在玉米基因组中拷贝数分析第123页
    4.3 玉米ZmSCP基因对逆境胁迫的响应第123-124页
    4.4 玉米ZmSCP基因表达产物的抑菌特性分析第124-126页
        4.4.1 表达载体的选择及诱导体系优化第124-125页
        4.4.2 表达产物纯化第125-126页
        4.4.3 融合蛋白作用研究及应用前景第126页
    4.5 转ZmSCP基因烟草与植物逆境胁迫第126-130页
        4.5.1 转ZmSCP基因烟草启动植物防卫系统第126-127页
        4.5.2 玉米ZmSCP基因提高转基因烟草的抗病性第127页
        4.5.3 玉米ZmSCP基因提高转基因植株的耐盐性第127-128页
        4.5.4 转ZmSCP基因烟草种子抗旱性提高第128页
        4.5.5 玉米ZmSCP基因与转基因植株的抗氧化性有关第128-129页
        4.5.6 玉米ZmSCP基因在抗病育种中的价值第129-130页
第五章 总结与展望第130-134页
    5.1 结论第130-132页
    5.2 正在开展和拟开展的研究第132-133页
    5.3 展望第133-134页
参考文献第134-152页
致谢第152-156页
攻读学位期间发表文章第156-157页
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