HMGB1在卵巢癌血管生成中的作用研究
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侵袭和转移是卵巢癌患者死亡的重要因素,血管新生为侵袭和转移提供基础,所以在此过程中起关键作用,血管内皮生长因子(VEGF)是目前已知最强的血管通透剂,它能导致癌性腹水或肿瘤间质水肿,而且导致血浆、纤维等蛋白向血管外渗出,导致细胞外基质的改变,从而促进血管的形成,是重要的与恶性肿瘤侵袭、转移和腹水形成相关的生长因子。高迁移率族蛋白B1(HMGB1)是核内DNA结合蛋白由坏死细胞释放,诱导炎症反应,促进组织修复和血管生成。因HMGB1可诱导血管内皮细胞生长、迁移及芽发而被定义为促血管生成因子。HMGB1诱导的细胞迁移要求激活经典和非经典的NF-κB通路,这样会导致CXCL12基因的转录。HMGB1还可以保护CXCL12免受降解,诱导额外的CXCL12的分泌。CXCL12在血管新生中起重要作用,CXCL12上调VEGF表达,而VEGF上调CXCL12表达,CXCR4-CXCL12和VEGF在促进血管产生过程中有协同作用。HMGB1和CXCL12形成的异元复合体,仅通过CXCR4信号通路发挥炎症细胞募集的作用。因此,我们拟通过检测HMGB1对卵巢癌血管内皮生长因子VEGF和趋化因子12(CXCL12)表达的影响及机制来了解是否对卵巢癌的血管新生有影响,初步探讨卵巢癌中血管新生的机制。第一部分卵巢癌组织中HMGB1,CXCL12,VEGF的表达。目的:检测卵巢癌组织中HMGB1,CXCL12,VEGF的表达方法:选取54例已确诊为上皮性卵巢癌患者,对照组为同期因其它妇科疾病行手术切除正常卵巢组织标本20例,通过免疫组化方法,检测卵巢癌组织中HMGB1、CXCL12、VEGF的表达情况。结果:HMGB1在癌细胞、间质细胞的细胞质和细胞核中均有淡黄色至棕褐色颗粒;CXCL12在癌细胞和间质细胞的细胞质呈淡黄色至棕褐色;VEGF在癌细胞及间质细胞的细胞质呈淡黄色至棕黄色。结论:HMGB1、VEGF和CXCL12在卵巢癌组织中均有表达,且与淋巴结的转移有关。第二部分SKOV3,HUVECs细胞中HMGB1表达目的:检测HMGB1在SKOV3,HUVECs细胞中具体表达情况。方法:分别提取SKOV3,HUVECs细胞总蛋白、胞浆及胞核蛋白,后利用westernblot检测HMGB1在两者细胞中的表达情况。结果:HMGB1不仅在SKOV3细胞有蛋白表达,在HUVECs细胞中也有蛋白表达,但在SKOV3中蛋白表达高于HUVECs细胞中,HMGB1在SKOV3细胞胞浆的表达显著高于HUVECs细胞胞浆表达(P=0.009)胞核的表达显著高于HUVECs细胞胞核表达(P=0.000),SKOV3胞核中HMGB1蛋白的表达显著高于其胞浆(P=0.000)。HUVECs胞核中HMGB1蛋白的表达显著高于其胞浆表达(P=0.026)。结论:MGB1在SKOV3,HUVECs细胞中均有表达,可能与HMGB1所处状态的不同有关。第三部分HMGB1表达变化后对SKOV3血管生成的影响及作用机制研究目的:探讨HMGB1在SKOV3血管生成中的作用及其机制方法:将构建HMGB1真核表达质粒和人工合成针对HMGB1基因的siRNA分别转染SKOV3细胞,运用Western blot检测转染前后HMGB1,CXCL12的表达变化,利用流式细胞术检测SKOV3的凋亡。结果:HMGB1过表达真核表达质粒DNA转染SKOV3细胞后SKOV3凋亡减少,而人工合成针对HMGB1基因的siRNA转染SKOV3细胞后HMGB1,CXCL12,VEGF表达均减弱,SKOV3细胞凋亡增加,与对照组比差异显著有统计学意义(P<0.05)结论:HMGB1的下降可能影响CXCL12,VEGF的下降,且可能与SKOV3细胞的凋亡也有关系。
摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第1章 引言 | 第12-14页 |
第2章 HMGB1,VEGF 和 CXCL12 在卵巢癌组织中的表达 | 第14-20页 |
2.1 材料 | 第14-15页 |
2.1.1 临床资料 | 第14页 |
2.1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
2.1.3 主要仪器 | 第15页 |
2.2 实验方法 | 第15页 |
2.3 统计学处理 | 第15页 |
2.4 结果 | 第15-18页 |
2.4.1 HMGB1 的表达 | 第15-16页 |
2.4.2 VEGF 的表达 | 第16页 |
2.4.3 CXCL12 的表达 | 第16-18页 |
2.4.4 HMGB1,VEGF,CXCL12 表达的相关性 | 第18页 |
2.5 讨论 | 第18-20页 |
第3章 SKOV3,HUVECs 细胞中 HMGB1 表达 | 第20-28页 |
3.1 材料 | 第20-21页 |
3.1.1 细胞株 | 第20页 |
3.1.2 主要试剂 | 第20页 |
3.1.3 主要仪器 | 第20-21页 |
3.2 实验方法 | 第21-26页 |
3.2.1 实验器材的清洗与消毒 | 第21页 |
3.2.2 细胞培养 | 第21-22页 |
3.2.3 Western blot 相关液体配制 | 第22页 |
3.2.4 Western blot 检测 HMGB1 在 SKOV3,HUVECs 中的表达 | 第22-24页 |
3.2.5 统计学处理 | 第24-25页 |
3.2.6 Western blot 结果 | 第25-26页 |
3.3 讨论 | 第26-28页 |
第4章 HMGB1 表达变化后对 SKOV3 血管生成的影响及作用机制研究 | 第28-41页 |
4.1 材料 | 第28-29页 |
4.1.1 细胞株 | 第28页 |
4.1.2 主要试剂 | 第28-29页 |
4.1.3 主要仪器 | 第29页 |
4.2 实验方法 | 第29-32页 |
4.2.1 实验器材的清洗与消毒 | 第29页 |
4.2.2 细胞培养 | 第29-30页 |
4.2.3 真核表达质粒的构建 | 第30-31页 |
4.2.4 实验分组 | 第31页 |
4.2.5 体外转染 SKOV3 细胞 | 第31页 |
4.2.6 流式细胞术检测细胞的凋亡 | 第31页 |
4.2.7 统计学处理 | 第31-32页 |
4.3 结果 | 第32-34页 |
4.3.1 流式细胞术检测细胞的凋亡情况 | 第32-33页 |
4.3.2 小结 | 第33-34页 |
4.3.3 细胞培养及分组 | 第34页 |
4.3.4 运用 Western blot 检测各组中蛋白的表达 | 第34页 |
4.3.5 流式细胞术检测细胞的凋亡情况 | 第34页 |
4.4 结果 | 第34-37页 |
4.4.1 Western blot 结果分析 | 第34-35页 |
4.4.2 流式细胞术检测细胞的凋亡率 | 第35-37页 |
4.5 讨论 | 第37-41页 |
第5章 结论与展望 | 第41-42页 |
致谢 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-46页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第46-47页 |
综述 | 第47-60页 |
参考文献 | 第56-60页 |
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