螺旋藻肽的制备及其抗氧化性研究

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螺旋藻作为一种食品原料因其功能特性而得到广泛应用,FAO将其评为“人类21世纪最佳保健品”和“未来超级营养食品”(张文等,2013)。螺旋藻中藻胆蛋白含量高达50-70%。此外,还具有非常理想的氨基酸构成比例,人体所必需的8种氨基酸的含量接近或超过FAO规定的标准。螺旋藻对高胆固醇血症、高甘油血症、心血管疾病、炎症性疾病、癌症以及病毒性感染等一系列疾病有疗效。螺旋藻在食品制造业中还可以作为一种功能成分存在(Hemamalini,2013)。但是,螺旋藻在食品制造业中的应用受到其干粉溶解性差、腥味浓重的缺点的限制。藻胆蛋白经蛋白酶处理后,改善了物化特性并扩大了应用范围。与藻胆蛋白相比,其水解产物螺旋藻肽不仅具有较低的分子量与良好的物化特性,更容易被人体消化吸收。而且还具有提高人体免疫功能,消除并防止机体受到自由基破坏,全面调节人体代谢机能等生理作用,这其中以其抗氧化能力最受关注。本文主要研究了螺旋藻的破壁方法、优化了单酶法和双酶法水解螺旋藻制备抗氧化肽的工艺,研究了水解度对螺旋藻肽起泡性、乳化性及抗氧化能力的影响,还研究了酶解过程中色素的产生规律与防控措施以及螺旋藻肽功能性饮料的研制。搅拌法、超声波破碎法、反复冻融法及后二者联用都可以破坏螺旋藻藻体细胞,使内容物流出。研究结果表明,超声波破碎法,在超声模式相同、超声功率为5%、超声7s、间隔3s时,细胞中可溶性蛋白的含量是最多的;反复冻融法4℃下解冻的样品比37℃下解冻的样品溶液中可溶性蛋白的含量要高,冻融次数与可溶性蛋白含量之间存在正相关。两种方法联用时的破壁效果要好于单独使用一种方法。采用搅拌法破壁时,溶液中可溶性蛋白含量随着搅拌的进行含量增加,但是增速逐渐减缓,并且在搅拌时间为3h时,得到蛋白的量为25.8mg/m L。采用Box-Behnken法对碱性蛋白酶制备螺旋藻抗氧化肽的工艺条件进行优化,优化过程以DPPH自由基清除能力与收率为响应值。结果表明,相较于木瓜蛋白酶、胰蛋白酶与风味蛋白酶,碱性蛋白酶对螺旋藻的水解能力最强,其最适水解条件为温度55.46℃、pH 6.71、固液比为1:10.83(v/w)。在此条件下,酶解240min,螺旋藻肽的得率为58.50%,与优化前相比,提高了15.61%。经此法可获得具有明显抗氧化活性的螺旋藻肽,浓度为0.86g/L时,其DPPH自由基清除能力为77.60%,与优化前相比,提高了7.62%。采用中心组合实验对双酶水解螺旋藻制备螺旋藻抗氧化肽的生产工艺进行优化,响应值为DPPH自由基清除能力及收率。研究结果表明,双酶法的较佳工艺为温度54.89℃,碱性蛋白酶与木瓜蛋白酶的比为2.23:1,酶解时间6.53h,此时,理论上DPPH自由基清除能力与收率的最大值分别为78.00%和57.94%。水解度对螺旋藻肽的起泡性、乳化性及抗氧化能力有影响。研究结果表明,螺旋藻肽的水解度随着水解的进行逐渐增大。水解过程中,螺旋藻肽的起泡性、DPPH自由基清除能力、以及还原力均随着水解度的增加先增大后减小,羟基自由基清除能力随着水解的进行先减小后增大,达到最大后再减小。而泡沫稳定性、乳化性、乳化稳定性则随着水解度的增大逐渐减小。酶解过程中的色素随着水解的进行逐渐积累,适当添加抑制剂或者吸附剂可以有效的抑制色素的产生。水解开始时加入1.5%的H2O2,水解结束时色素抑制率可达31.07%;NaClO加入量为1.5%时,色素抑制率为21.47%;当加入3%的活性炭时,色素抑制率可达27.29%。以制得的螺旋藻肽为原料配制螺旋藻肽功能饮料。实验结果表明,在单因素实验的基础上,采用正交试验对饮料配制方法进行优化。对饮料品质影响的顺序依次为螺旋藻肽量、柠檬酸量、白砂糖量。获得的最佳配制方法为:每100mL螺旋藻肽饮料中添加螺旋藻肽0.5g,柠檬酸0.05g,白砂糖3g。
符号说明第4-9页
中文摘要第9-11页
Abstract第11-13页
1 前言第14-26页
    1.1 螺旋藻第14-17页
        1.1.1 螺旋藻的简介第14-15页
        1.1.2 螺旋藻的功能第15页
        1.1.3 螺旋藻的应用潜力及前景第15-17页
    1.2 藻胆蛋白第17-20页
        1.2.1 藻胆蛋白的简介第17-19页
        1.2.2 螺旋藻的破壁方法第19-20页
    1.3 螺旋藻多肽第20-23页
        1.3.1 螺旋藻肽的简介第20页
        1.3.2 生物活性肽研究现状及进展第20-21页
        1.3.3 生物活性肽的来源第21-22页
        1.3.4 抗氧化活性肽的制备方法第22页
        1.3.5 抗氧化活性的测定方法第22-23页
        1.3.6 螺旋藻肽的开发第23页
    1.4 美拉德反应第23-25页
        1.4.1 美拉德反应的简介第23-24页
        1.4.2 美拉德反应的抑制方法第24-25页
    1.5 课题研究的目的和意义第25-26页
2 材料与方法第26-34页
    2.1 材料与试剂第26页
    2.2 仪器与设备第26-27页
    2.3 实验方法第27-33页
        2.3.1 测试与分析方法第27页
            2.3.1.1 螺旋藻成分的测定第27页
        2.3.2 螺旋藻的破壁方法第27-28页
            2.3.2.1 可溶性蛋白含量的测定第27页
            2.3.2.2 超声波破碎法第27页
            2.3.2.3 反复冻融法第27页
            2.3.2.4 反复冻融-超声波法第27-28页
            2.3.2.5 搅拌法第28页
        2.3.3 碱性蛋白酶制备螺旋藻肽的工艺优化第28-29页
            2.3.3.1 蛋白酶的选择第28页
            2.3.3.2 单因素实验第28页
            2.3.3.3 Box-Behnken实验第28-29页
        2.3.4 双酶法制备螺旋藻肽的工艺优化第29-30页
            2.3.4.1 单因素实验第29页
            2.3.4.2 中心组合实验第29-30页
        2.3.5 水解度对螺旋藻肽功能特性的影响第30-32页
            2.3.5.1 水解度的测定第30页
            2.3.5.2 酶解时间对螺旋藻水解度的影响第30页
            2.3.5.3 还原力的测定方法第30页
            2.3.5.4 DPPH自由基清除能力的测定第30-31页
            2.3.5.5 羟基自由基的测定方法第31页
            2.3.5.6 螺旋藻肽收率的测定第31页
            2.3.5.7 起泡性及泡沫稳定性的测定第31页
            2.3.5.8 乳化性及乳化稳定性的测定第31-32页
            2.3.5.9 螺旋藻肽成分的测定第32页
            2.3.5.10 蛋白酶活的测定第32页
        2.3.6 酶解过程中色素的产生及预防第32-33页
            2.3.6.1 蛋白水解液色素抑制率的计算第32页
            2.3.6.2 H_2O_2对色素的抑制第32-33页
            2.3.6.3 NaClO对色素的抑制第33页
            2.3.6.4 活性炭对色素的抑制第33页
        2.3.7 螺旋藻肽功能性饮料的研制第33页
            2.3.7.1 单因素实验的设计第33页
            2.3.7.2 正交试验第33页
    2.4 数据分析第33-34页
3 结果与分析第34-62页
    3.1 螺旋藻的组成及含量第34页
    3.2 螺旋藻的破壁方法第34-37页
        3.2.1 超声波破碎法第34-35页
        3.2.2 反复冻融法第35-36页
        3.2.3 超声波破碎法与反复冻融法联用对可溶性蛋白含量的影响第36页
        3.2.4 搅拌时间对可溶性蛋白含量的影响第36-37页
    3.3 酶解条件的优化第37-50页
        3.3.1 碱性蛋白酶制备螺旋藻肽水解条件的优化第37-38页
            3.3.1.1 水解用酶的选择第37-38页
        3.3.2 单因素实验结果第38-42页
            3.3.2.1 温度对螺旋藻肽水解度、DPPH自由基清除能力与收率的影响第38-39页
            3.3.2.2 pH对螺旋藻肽水解度、DPPH和自由基清除能力与收率的影响第39-40页
            3.3.2.3 固液比对螺旋藻肽水解度、DPPH自由基清除能力与收率的影响第40-41页
            3.3.2.4 酶添加量对螺旋藻肽水解度、DPPH自由基清除能力与收率的影响第41-42页
        3.3.3 Box-Behnken实验结果第42-45页
        3.3.4 双酶法水解螺旋藻制备抗氧化活性肽的工艺优化第45页
            3.3.4.1 蛋白酶的选择第45页
        3.3.5 单因素实验结果第45-47页
            3.3.5.1 碱性蛋白酶与木瓜蛋白酶比例对螺旋藻肽水解度、DPPH自由基清除能力与收率的影响第45-46页
            3.3.5.2 温度对螺旋藻肽水解度、DPPH自由基清除能力与收率的影响第46页
            3.3.5.3 酶解时间对螺旋藻肽水解度、DPPH自由基清除能力与收率的影响第46-47页
        3.3.6 中心组和实验结果第47-50页
    3.4 水解度对螺旋藻肽起泡性、乳化性及抗氧化能力的影响第50-55页
        3.4.1 酶解时间对水解度的影响第50-51页
        3.4.2 水解度对螺旋藻肽起泡性及泡沫稳定性的影响第51-52页
        3.4.3 水解度对螺旋藻肽乳化性及乳化稳定性的影响第52-53页
        3.4.4 抗氧化能力的测定第53-55页
            3.4.4.1 水解度对螺旋藻肽DPPH自由基清除能力的影响第53-54页
            3.4.4.2 水解度对羟基自由基清除能力的影响第54-55页
            3.4.4.3 水解度对螺旋藻肽还原力的影响第55页
    3.5 酶解过程中色素的产生规律及防控第55-57页
        3.5.1 酶解过程中色素的产生第55-56页
        3.5.2 H_2O_2加入量对美拉德反应抑制的影响第56页
        3.5.3 NaClO加入量对美拉德反应抑制的影响第56-57页
        3.5.4 活性炭的加入量对美拉德反应抑制的影响第57页
    3.6 螺旋藻肽成分的测定第57-58页
    3.7 螺旋藻肽饮料的研制第58-62页
        3.7.1 评分标准第58页
        3.7.2 螺旋藻肽加入量对产品风味的影响第58-59页
        3.7.3 柠檬酸加入量对产品风味的影响第59页
        3.7.4 白砂糖加入量对产品风味的影响第59-60页
        3.7.5 正交试验结果与分析第60-61页
        3.7.6 正交试验方差分析结果第61页
        3.7.7 螺旋藻肽饮料的理化指标第61-62页
4 讨论第62-64页
5 结论第64-66页
参考文献第66-74页
致谢第74-75页
攻读学位期间发表论文情况第75页
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论文编号ABS3073620,这篇论文共75页
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