JSRV表面蛋白抗原表位的筛选及检测试剂盒的制备

绵羊肺腺瘤病毒论文 表面蛋白论文 抗原表位论文 夹心ELISA论文 LAMP论文 env论文 表达论
论文详情
研究背景:绵羊肺腺癌(ovine pulmonary adenocarcinoma, OPA)是由β-反转录病毒属绵羊肺腺瘤病病毒(jaagsiekte sheep retrovirus, JSRV)引起的一种传染性肺脏肿瘤性疾病,世界动物卫生组织将其列为B类传染病。目前国内对该病的诊断主要依靠常规病理学方法检测,严重障碍了我国对OPA的防控。主要目的:建立快速特异的实验室及适用于基层的诊断方法,为临床及基层检测诊断提供技术支持,为进一步分析表面蛋白( surface protein,SU)蛋白的功能、疫苗设计及对JSRV的生物学特性研究提供素材。研究方法:以获得的三株抗JSRV-SU蛋白的单克隆细胞分泌的McAb为一抗,应用噬菌体展示结合肽探针扫描技术,鉴定三株单抗所识别的线性表位;并应用非竞争性ELISA法测定三株单抗的功能性亲和常数;以阳性标准病料与健康阴性羊肺组织为样本,以纯化的多抗和单克隆抗体为基本检测试剂,建立双抗体夹心ELISA检测方法;针对外源性JSRV U3区设计特异性引物,建立JSRV的环介导等温扩增(Loop-mediatedisothennalamplification ,LAMP)检测方法,并以700ng健康羊基因组DNA为背景进行敏感性和特异性试验;通过基因克隆技术对JSRVenv及绵羊ras基因进行序列测定;运用基因重组方法构建JSRVenv重组真核表达质粒,并通过脂质体转染建立稳定表达细胞系。研究结果:1.三株单抗3B3、3D6、1D6的亲和常数分别为5.06×109 L/mol﹑5.82×109 L/mol﹑ 2.91×109 L/mol ;且其所对应的抗原表位分别为W156APEGTPD163,F71SYQSQHPHCI81,D98EKTGKR104;2.首次基于JSRV-SU蛋白的单抗建立了夹心ELISA法,并建立了阴性与阳性的判定标准(当P/N≥2.21时判为阳性;当P/N<1.85时判为阴性;当2.21>P/N≥1.85时判为可疑);3.在国内首次基于内外源性病毒长末端重复序列( long terminal repeat ,LTR)的差异建立了LAMP诊断方法,所建立的反应体系在恒温水浴锅中作用60min即可得到其特有的阶梯状条带,而且对内源性JSRV的扩增结果为阴性,该方法对JSRV前病毒DNA的最小检测限为10拷贝,灵敏性高于一步PCR方法。LAMP和特异性PCR及套式PCR方法检测临床样品的符合率分别为92 %和100%;4.通过基因克隆技术对JSRVenv及绵羊ras基因进行序列测定,结果发现,本研究克隆的pMD-exJSRVenv1属于Ⅱ型exJSRV;而pMD-exJSRVenv2属于Ⅰ型exJSRV;在exJSRV氨基酸序列中存在“YXXM”基序;绵羊ras基因与已知其他物种的该段基因作比对差异率较小,基本保守,且与牛的ras基因同源性最高;5.成功构建了含有env及tm基因的重组真核表达质粒pcDNA3.1-env及pcDNA3.1-TM-HA,并建立了稳定表达JSRV囊膜蛋白(Env)及其TM亚基的HepG2细胞系。结论:本研究建立了特异性检测JSRV的夹心ELISA法和LAMP法,对于我国养羊业的健康发展,具有重要的实用价值,对研究OPA防制措施等均有重要意义。另外,JSRV env基因的克隆和表达及对绵羊ras基因的序列分析,对于丰富JSRV的分子发病机理以及为进一步研究该蛋白与JSRV诱导OPA发病关系搭建了重要的实验平台。
摘要第3-5页
Abstract第5-6页
1 引言第17-52页
    1.1 绵羊肺腺癌概述第17-40页
        1.1.1 绵羊肺腺癌的临床及病理学特征第17-21页
        1.1.2 绵羊肺腺癌流行病学第21-23页
        1.1.3 绵羊肺腺癌的病原学第23-31页
        1.1.4 OPA 的发病机理第31-37页
        1.1.5 OPA 防控展望第37-39页
        1.1.6 OPA 作为人肺癌研究的动物模型第39-40页
    1.2 抗原表位的研究第40-46页
        1.2.1 蛋白质结构预测技术第40页
        1.2.2 肽探针扫描技术(Pepscan 技术)第40-41页
        1.2.3 噬菌体展示技术第41-45页
        1.2.4 生物传感器技术筛选表位第45-46页
        1.2.5 利用抗原抗体反应方法筛选表位第46页
    1.3 环介导的等温扩增技术第46-51页
        1.3.1 LAMP 技术原理第46-49页
        1.3.2 LAMP 技术优点第49-51页
    1.4 研究的目的及意义第51-52页
2 实验一 JSRV 囊膜基因表面蛋白单克隆抗体的制备及鉴定第52-73页
    2.1 材料与方法第52-60页
        2.1.1 材料第52-53页
        2.1.2 试剂与药品第53-54页
        2.1.3 主要仪器第54页
        2.1.4 杂交瘤细胞的复苏第54页
        2.1.5 杂交瘤细胞分泌稳定性检测第54页
        2.1.6 抗体亚类的测定第54-55页
        2.1.7 单克隆抗体的特异性检测第55-56页
        2.1.8 单克隆抗体的制备及纯化第56-57页
        2.1.9 单克隆抗体效价的测定第57-58页
        2.1.10 JSRV-SU 蛋白抗原表位的初步定位第58-59页
        2.1.11 单克隆抗体功能性亲和常数的测定第59-60页
    2.2 结果第60-70页
        2.2.1 杂交瘤细胞分泌稳定性检测第60页
        2.2.2 单克隆抗体亚型的鉴定第60-61页
        2.2.3 单克隆抗体的特异性检测第61-63页
        2.2.4 单克隆抗体纯化后鉴定第63-64页
        2.2.5 单克隆抗体效价的测定第64-65页
        2.2.6 JSRV-SU 蛋白抗体抗原表位的初步定位第65-69页
        2.2.7 三株单抗的抗原抗体结合反应曲线及抗体亲和常数的推导第69-70页
    2.3 讨论第70-72页
    2.4 小结第72-73页
3 实验二 噬菌体展示结合肽扫描技术筛选 JSRV-SU 抗原表位第73-87页
    3.1 材料与方法第74-80页
        3.1.1 菌株、表达载体和质粒第74页
        3.1.2 试剂与药品第74页
        3.1.3 主要仪器第74-75页
        3.1.4 主要溶液的配置第75页
        3.1.5 方法第75-80页
    3.2 结果第80-85页
        3.2.1 利用噬菌体展示随机12 肽库进行模拟抗原表位筛选第80-83页
        3.2.2 运用肽扫描技术筛选抗原表位第83-85页
    3.3 讨论第85-86页
    3.4 小结第86-87页
4 实验三 绵羊肺腺瘤病夹心 ELISA 诊断方法的初步建立第87-98页
    4.1 材料第87-88页
        4.1.1 样品的来源及处理第87-88页
        4.1.2 主要试剂及质粒、抗体第88页
        4.1.3 主要仪器与耗材第88页
    4.2 方法第88-91页
        4.2.1 重组 JSRV-SU 蛋白的大量表达与纯化第88-89页
        4.2.2 兔抗 JSRV-SU 多抗的制备及纯化第89页
        4.2.3 夹心 ELISA 检测方法的建立第89-91页
    4.3 结果第91-96页
        4.3.1 重组 JSRV-SU 蛋白的大量表达与纯化第91页
        4.3.2 兔抗 JSRV-SU 多抗的制备及提纯第91-92页
        4.3.3 夹心 ELISA 检测方法的建立第92-96页
    4.4 讨论第96-97页
    4.5 小结第97-98页
5 实验四 绵羊肺腺瘤病 LAMP 快速诊断方法的建立第98-113页
    5.1 材料与方法第99-102页
        5.1.1 样品的来源及处理第99页
        5.1.2 常用试剂第99页
        5.1.3 引物设计第99-100页
        5.1.4 基因组 DNA 的提取第100页
        5.1.5 LAMP 诊断方法的优化及建立第100-102页
        5.1.6 临床样品的检测第102页
    5.2 结果第102-111页
        5.2.1 标准 LTR 序列的扩增第102页
        5.2.2 标准 LTR 的序列测定第102-103页
        5.2.3 LAMP 检测方法的优化第103-107页
        5.2.4 反应产物内切酶鉴定第107-108页
        5.2.5 重复性试验第108页
        5.2.6 特异性及敏感性测定第108页
        5.2.7 临床样品的检测第108-111页
    5.3 讨论第111-112页
    5.4 小结第112-113页
6 实验五 内外源性 JSRV env 基因的克隆及其序列分析第113-120页
    6.1 材料与方法第113-115页
        6.1.1 样品的来源及处理第113页
        6.1.2 常用试剂第113-114页
        6.1.3 引物设计与合成第114页
        6.1.4 基因组 DNA 的提取第114页
        6.1.5 内外源性 JSRV env 基因的 PCR 扩增第114页
        6.1.6 目的片段的克隆及序列分析第114-115页
    6.2 结果第115-118页
        6.2.1 绵羊肺腺瘤病自然病例肺肿瘤组织基因组 DNA 的提取第115页
        6.2.2 目的基因 PCR 扩增结果第115页
        6.2.3 序列分析第115-118页
    6.3 讨论第118-119页
    6.4 小结第119-120页
7 实验六 表达绵羊肺腺瘤病毒囊膜蛋白及其 TM 亚基细胞系的建立第120-129页
    7.1 材料与方法第121-124页
        7.1.1 主要材料第121页
        7.1.2 主要试剂和工具酶第121-122页
        7.1.3 引物设计与合成第122页
        7.1.4 目的基因的扩增第122页
        7.1.5 重组表达载体的构建及鉴定第122-123页
        7.1.6 细胞转染第123页
        7.1.7 Western blot 方法检测第123-124页
        7.1.8 间接免疫荧光检测第124页
    7.2 结果第124-127页
        7.2.1 PCR 扩增目的基因结果第124-125页
        7.2.2 重组表达质粒的构建第125页
        7.2.3 稳定表达 JSRV Env 及 TM-HA 细胞系的建立第125-127页
    7.3 讨论第127-128页
    7.4 小结第128-129页
8 实验七 绵羊ras 基因第一、二外显子的扩增及序列测定第129-135页
    8.1 材料与方法第130-132页
        8.1.1 样品的来源及处理第130页
        8.1.2 常用试剂第130页
        8.1.3 主要仪器第130-131页
        8.1.4 引物设计与合成第131页
        8.1.5 基因组 DNA 的提取第131页
        8.1.6 ras 基因的 PCR 扩增第131-132页
        8.1.7 目的片段的克隆及序列分析第132页
    8.2 结果第132-134页
        8.2.1 绵羊肺腺瘤病自然病例肺肿瘤组织基因组 DNA 的提取第132页
        8.2.2 目的基因 PCR 扩增结果第132页
        8.2.3 序列分析第132-134页
    8.3 讨论第134页
    8.4 小结第134-135页
9 总体结论第135-136页
10 创新点及研究展望第136-137页
    10.1 创新点第136页
    10.2 不足之处第136页
    10.3 研究展望第136-137页
致谢第137-138页
参考文献第138-156页
作者简介第156页
论文购买
论文编号ABS539216,这篇论文共156页
会员购买按0.30元/页下载,共需支付46.8
不是会员,注册会员
会员更优惠充值送钱
直接购买按0.5元/页下载,共需要支付78
只需这篇论文,无需注册!
直接网上支付,方便快捷!
相关论文

点击收藏 | 在线购卡 | 站内搜索 | 网站地图
版权所有 艾博士论文 Copyright(C) All Rights Reserved
版权申明:本文摘要目录由会员***投稿,艾博士论文编辑,如作者需要删除论文目录请通过QQ告知我们,承诺24小时内删除。
联系方式: QQ:277865656