受体来源大鼠ADSCs分化的类肝细胞诱导大鼠肝移植免疫耐受的实验研究

原位肝移植大鼠动物模型论文 急性排斥论文 DA大鼠论文 Lewis大鼠论文 脂肪源性干细胞论文 克隆
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第一部分大鼠原位肝移植模型的建立目的:建立稳定的大鼠肝移植反应模型的方法,为肝移植的相关研究提供稳定可靠的模型基础。同时对比DA→Lewis与SD→SD大鼠组合,了解高排斥反应组合模型DA-Lewis术后的生存率和生存时间。为进一步的实验摸索条件。方法:通过Kamad“二袖套法”,建立大鼠肝移植模型。并观察大鼠术后存活率和并发症的发生情况。第一阶段:进行200次双人肝移植训练,主要是熟悉手术过程,总结经验,同时对二袖套管法进行改进;第二阶段:进行了DA→Lewis与SD→SD大鼠组合肝移植对比,对比一般状态、生存期、肝功能、病理表现。结果:总共实施大鼠原位肝移植248例,在训练阶段主要要克服麻醉问题,血管吻合问题,如何缩短无肝期以及无肝期结束后的管理问题;在成熟期时手术,供体手术时间(35.78±5.78)min,热缺血时间(0.5±0.22)min,供肝修整时间(15.13±3.45)min,受体手术时间(57±16.5)min,受体手术开始至无肝期开始(37±7.11)min,无肝期为(21.33±3.65)min,无肝期结束至关腹(13.98±3.83)min,手术成功率为93.5%,成功地建立了稳定的大鼠肝移植模型。在正式实验中DA-Lewis表现出高排斥反应的表现,存活时间短,平均时间为8.900±0.390天,术后肝功能急剧上升,病理表现出明显的重度排斥反应。结论:大鼠原位肝移植模型的建立,需要在一定的显微外科基础和熟悉大鼠的腹部解剖结构的前提下,经过4-6月的不间断训练,方能获得成功。正确的供肝灌注、严密的腹腔止血、熟练的显微血管缝合技术、尽量缩短的无肝期、完善的术中补液纠酸及术后复温是保证手术成功的关键。DA-Lewis组合可以成功地复制出大鼠高排斥肝移植模型。第二部分大鼠脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞的免疫调节作用的体外实验研究目的:在脂肪源性干细胞传统的分离方法的基础上进行改进,克隆筛选纯化脂肪源性干细胞;建立大鼠脂肪源性干细胞转化为类肝细胞的程序化诱导体系。并在诱导过程中观察细胞分化的变化及对类肝细胞功能进行鉴定;并进一步研究该类肝细胞的免疫特性并探讨可能的机理。方法:1.消化离心法分离Lewis大鼠脂肪源性干细胞,有限密度稀释法克隆化及条件培养基筛选,进行原代培养,以克隆筛选的脂肪源性干细胞为实验组,未克隆筛选的脂肪源性干细胞为对照组,观察细胞形态,对比生长曲线、倍增时间,流式细胞仪鉴定脂肪源性干细胞表面标记CD49d、 CD34. CD44。2.将分离纯化的Lewis大鼠脂肪源性干细胞,分三个阶段加入含有FGF-4、 FGF-a. HGF及OSM细胞因子的诱导培养体系中,使脂肪源性干细胞向肝细胞转化。用RT-PCR检测ALB、 AFP及CK18mRNA的动态变化,进一步采用免疫荧光组织化学法及对氨的代谢及尿素合成能力鉴定该细胞向肝细胞转化的性能。3.检测诱导前后的Lewis大鼠脂肪源性干细胞对DA/lewis大鼠脾T淋巴细胞混合培养体系的免疫调节作用,并检测上清液中的IL-2、IL-10的浓度。结果:1.经克隆筛选的脂肪源性干细胞与未经克隆筛选的脂肪源性干细胞相比,前者形态均一,生长力旺盛,倍增时间短,多代培养后生长曲线无明显改变,通过流式细胞仪鉴定,实验组与对照组在3-6代之间均表达表面标记CD49d、CD44, CD34亻(?)表达。2.纯化后的脂肪源性干细胞大鼠脂肪源性干细胞通过向肝细胞的分段诱导方案,在0、14、21、28d分别检测ALB、AFP及CK18mRNA的表达,表达随诱导的延长而增强,通过荧光免疫分析,类肝细胞具有合成白蛋白的功能。对氨的代谢和尿素的合成功能在9-12d出现并持续存在。3.通过混合淋巴细胞培养以DA大鼠脾T淋巴细胞为刺激细胞,Lewis大鼠脾淋巴细胞为反应细胞的体系中淋巴细胞的增殖反应受到Lewis大鼠脂肪源性干细胞的抑制,抑制的强度与干细胞的浓度正相关,与是否诱导无关。结论:结果证实克隆筛选的纯化方法是脂肪源性干细胞原代培养的有效、经济的纯化方法。脂肪源性干细胞在体外通过阶段诱导可成功转化为类肝细胞,该诱导分化方法可为肝细胞移植、肝组织工程等临床治疗提供一个有效可靠的种子细胞来源。经过纯化的脂肪源性干细胞在体外可以成功转化为类肝细胞,该细胞同时具有干细胞下调免疫反应及肝细胞的特征的双重特性。第三部分脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞对大鼠肝移植免疫排斥的影响目的:在大鼠原位肝移植高排斥模型(DA→Lewis)术中经门静脉注入由脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞之后,研究由脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞在移植肝的定位,及其对受体肝功能、免疫排斥、生存期的影响,初步探讨脂肪源性干细胞及其分化而来的类肝细胞运用于器官移植的安全性、效能以及机制。方法:1.随机DA与Lewis大鼠分为4组,每组各31对,采用改良Kamada两袖套法建立DA-Lewis大鼠肝移植模型:a.A组(排斥组)行原位肝移植术;b.B组(免疫抑制组)行原位肝移植术+口服他克莫司胶囊FK506(0.15mg/kg/d,灌胃1次/d×14d,术后2d开始);c. C组行原位肝移植术+术中门静脉输注ADSCs:d.D组行原位肝移植+术中门静脉输注诱导后的类肝细胞;2.观察并记录每组实验大鼠的一般情况(大鼠皮毛、眼睛色泽、活动和精神状态);每组各留6只观察生存期;3..每组术后第3、7、10、14天随机活杀6只大鼠,进行抽血,测定肝功能并用ELISA法测定外周血的细胞因子(IL-2、INF-Y、IL-10及IL-4)水平;4.用BrdU体外标记脂肪源性干细胞及类肝细胞,并用免疫荧光染色单标及双标记的方法了解BrdU标记的成功与否,在4个时相点将一部分肝组织制作成冰冻切片,行BrdU免疫荧光检测,了解类肝细胞在肝脏中的定位情况;5.取每只大鼠肝脏组织做成石蜡切片,HE染色光镜下观察,并计算排斥指数了解移植肝的排斥程度;6.于实验第30d将实验各组中尚存活的大鼠中,挑选出状态最好的大鼠进行取材,行混合淋巴培养,了解术后T淋巴细胞增殖能力。用流式细胞仪测定各组CD4+、CD8+变化,计算CD4+/CD8+。结果:1.4组均在相同的条件下采用相同的手术方式(改良两袖套法)建立动物模型,在术前体重及手术时间的比较4组间无明显差异(P>0.05),即具有可比性。存活率为94.66%(124/131)。2.从术后3天以细胞核BrdU染色阳性的脂肪源性干细胞及其形成的类肝细胞开始出现,散在分布于肝组织,同时有部份阳性细胞密集于汇管区及血管旁,随着时间的延长,逐渐形成灶状分布。3.B、C、D组中位生存时间明显高于A组(对照组),均存在统计学差异(P<0.05),D组中位生存时间最长,与C组相比有统计学意义,与B组相比无统计学差异。4.移植术后各组大鼠血清生化检查:在移植术后3、7、10d, B、C、D组肝功能逐渐好转,A组ALT、AST、TBIL急剧上升,与存活时间表现一致。在术后第14天,A组动物已完全死亡,数据缺失;B、C、D组肝功能进一步恢复,B、D组恢复较快,C组较慢,在部分指标(ALT、AST) D组优于B组(P<0.05)。5.A组IL-2、INF-Y明显高于其它各组(P<0.05), B、C、D组水平逐渐下降,B、D组与C组比较,下降更明显(P<0.05),B、D组之间无明显差异(P>0.05);A组IL-10及IL-4明显低于其它各组(P<0.05), B、C、D组水平逐渐升高,B、D组与C组比较,升高更明显(P<0.05)。6.肝脏病理示术后7d、10d,A组的急性排斥评分明显高于B、C、D组(p<0.05),B、D组随着时间延长,呈下降趋势,但两者之间无明显差异(P>0.05),C组排斥指数高于B、D组(P<0.05)。7.混合淋巴细胞培养:以DA大鼠脾细胞为刺激细胞,移植受体的脾细胞为反应细胞的混合淋巴培养体系中,B、C及D组OD值较阳性对照组降低(p<0.05),以SD大鼠脾细胞为刺激细胞移植受体的脾细胞为反应细胞的的混合淋巴培养体系中,B组的OD值低于阳性对照组,而C、D组与SD阳性对照组之间的比较没有明显差异,C、D实验组对DA及SD两种不同的刺激细胞反映出的OD值之间的比较有统计学差异(P<0.01),说明脂肪源性干细胞处理组及类肝细胞对DA刺激细胞刺激后建立起来的免疫下调状态是特异性的。8.A组CD4+/CD8+的比值进行性上升,显著高于B组、C和D组(P<0.05),第10天达到高峰(4.683±0.775)。术后3-10天B组、C和D组比值缓慢上升,到14天开始回落,但各时间点各组差异不大,无显著性差异。结论1.成功建立大鼠肝移植高排斥模型。2.单纯脂肪源性干细胞治疗组的移植肝内有肝纤维化出现以及脂肪变性,MSCs可能参与此过程的发生,可能影响其在体内的分化,不足以完全抑制移植术后的免疫排斥反应。3.由脂肪源性干细胞分化形成的类肝细胞治疗组受鼠对供肝产生耐受,且为供者特异性免疫耐受。4.由脂肪源性干细胞分化形成的类肝细胞治疗组对耐受的产生发挥一定的作用,并促进了肝细胞再生从而避免使用免疫抑制剂。
中英文对照缩略语总览第5-7页
目录第7-14页
前言第14-17页
中文摘要第17-23页
Abstract第23-30页
第一部分 大鼠肝移植模型的建立第31-60页
    引言第31-32页
    1. 材料与方法第32-37页
        1.1 器械与材料第32页
        1.2 手术方法第32-37页
            1.2.1 术前准备第32页
            1.2.2 麻醉第32-33页
            1.2.3 供体手术第33-34页
            1.2.4 修肝第34页
            1.2.5 受体手术第34-37页
            1.2.6 术后处理第37页
            1.2.7 大鼠高急性排斥反应肝移植模型的建立第37页
        1.3 统计方法第37页
    2. 结果第37-41页
        2.1. 训练阶段训练曲线(无肝期时间)第37-38页
        2.2. 大鼠高排斥反应肝移植模型的建立第38-41页
            2.2.1 DA→Lewis及SD→SD手术操作时间的记录第38-39页
            2.2.2 DA→Lewis及SD→SD术后肝功能的比较第39页
            2.2.3. DA→Lewis及SD→SD术后生存期的比较第39-40页
            2.2.4 DA→Lewis及SD→SD术后病理表现的比较第40-41页
    3. 讨论第41-47页
        3.1 手术方式的选择及动物的选择第41-42页
        3.2 麻醉第42-43页
        3.3 供体的手术第43-44页
        3.4 供肝的修整第44-45页
        3.5 受体手术第45-47页
            3.5.1 受体肝脏的分离第45页
            3.5.2 对无肝期的控制及精确的血管吻合第45-47页
            3.5.3 最大限度减少无肝期造成的血流动力学紊乱第47页
    4. 结论第47-48页
    5. 参考文献第48-60页
第二部分 大鼠脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞的免疫调节作用的体外实验的研究第60-103页
    引言第60-61页
    1. 材料与方法第61-72页
        1.1 材料与仪器第61-65页
            1.1.1 实验动物第61页
            1.1.2 主要试剂第61-62页
            1.1.3 主要设备及仪器第62-63页
            1.1.4 主要试剂的配制方法第63-65页
        1.2 实验方法第65-71页
            1.2.1 脂肪源性干细胞的分离、克隆筛选纯化培养第65-66页
            1.2.2 脂肪源性干细胞的传代第66-67页
            1.2.3 脂肪源性干细胞的冻存与复苏第67-68页
            1.2.4 脂肪源性干细胞流式细胞仪检测细胞表面标志第68页
            1.2.5 脂肪源性干细胞向类肝细胞诱导的实验第68页
            1.2.6 诱导过程中用倒显微镜观察细胞形态变化第68页
            1.2.7 诱导过程中RT-PCR检测肝细胞特征性蛋白的表达第68-69页
            1.2.8 诱导过程中检测上清液中尿素及血氨的浓度变化第69页
            1.2.9 类肝细胞首次传代后行免疫荧光组织化学检测细胞白蛋白的表达第69页
            1.2.10 Leiws大鼠脂肪源性干细胞及iPS的免疫学特性的检查第69-71页
            1.2.11 MLR体系中IL-2及IL-10测定第71页
        1.3 统计学处理第71-72页
    2. 结果第72-87页
        2.1 大鼠脂肪源性干源性干细胞分离、纯化及鉴定第72-77页
            2.1.1 细胞数目、形态观察第72-74页
            2.1.2 纯化处理后的ADSCs(实验组)与未纯化处理的ADSCs(对照组)多代传代后的生长曲线及倍增时间的比较第74-75页
            2.1.3 脂肪源性干细胞的抗原表达第75-77页
        2.2. ADSCs体外诱导的鉴定第77-82页
            2.2.1 形态学检查第77-79页
            2.2.2 用RT-PCR法检测第79-80页
            2.2.3 肝脏的代谢试验第80-81页
            2.2.4 ALB免疫荧光染色第81-82页
        2.3 ADSCs及类肝细胞的免疫调节作用第82-87页
            2.3.1. 不同浓度脂肪源性干细胞对混合淋巴细胞培养体系的作用第82页
            2.3.2. 不同浓度类肝细胞对混合淋巴细胞培养体系的作用第82-83页
            2.3.3 不同浓度脂肪源性干细胞及类肝细胞对混合淋巴细胞培养体系的作用的比较第83-84页
            2.3.4 混合淋巴培养体系上清液中IL-2及IL-10水平的测定第84-87页
    3. 讨论第87-95页
        3.1 大鼠脂肪源性干细胞的分离与纯化第88-90页
        3.2 大鼠脂肪源性干细胞向肝细胞诱导分化及其形成的类肝细胞的鉴定第90-93页
        3.3 大鼠脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞的免疫调节作用及机理的探讨第93-95页
    4 结论第95-96页
    5. 参考文献第96-103页
第三部分 受体来源的大鼠脂肪源性干细胞诱导形成的类肝细胞对大鼠肝移植免疫排斥的影响第103-166页
    引言第103-104页
    1. 材料与方法第104-118页
        1.1 材料第104-109页
            1.1.1 实验动物第104-105页
            1.1.2 实验仪器及器械第105-106页
            1.1.3 实验材料与药品手术材料第106-107页
            1.1.4 实验试剂的配制第107-109页
        1.2 实验方法第109-117页
            1.2.1 类肝细胞的准备第109页
            1.2.2 Leiws诱导后大鼠脂肪源性间充质干细胞的类肝细胞的体外示踪标记第109页
            1.2.3 由Leiws大鼠ADSCs诱导的iPS的体外示踪标记的荧光免疫鉴定第109-110页
            1.2.4 类肝细胞的分装第110-111页
            1.2.5 大鼠肝移植模型的建立及实验分组第111页
            1.2.6 实验取材第111-112页
            1.2.7 一般观察、监测指标第112页
            1.2.8 生存期分析第112页
            1.2.9 血清肝功能的检测第112页
            1.2.10 血清细胞因子检测第112-113页
            1.2.11 病理切片的制作第113-114页
            1.2.12 冰冻切片的制作第114页
            1.2.13 示踪剂Brdu免疫荧光染色第114页
            1.2.14 急性排斥反应指数的判断第114-116页
            1.2.15 脾脏T淋巴细胞转化实验第116-117页
            1.2.16 大鼠外周血T淋巴细胞表面标志CD4、CD8的表达第117页
        1.3. 统计方法第117-118页
    2. 结果第118-142页
        2.1 大鼠肝移植急性排斥模型的建立第118-121页
        2.2 血清肝功能的检测第121-125页
            2.2.1 术后血清ALT水平的检测第121-122页
            2.2.2 术后血清AST的检测第122-123页
            2.2.3 术后血清TBIL的检测第123-125页
        2.3 血清细胞因子检测的结果第125-129页
            2.3.1 血清IL-2水平的检测第125-126页
            2.3.2 血清INF-γ水平的检测第126-128页
            2.3.3 血清IL-10水平的检测第128页
            2.3.4 血清IL-4水平的检测第128-129页
        2.4 移植肝的病理组织学检查及各实验组排斥指数的比较第129-136页
            2.4.1 各实验组的病理学观察第129-134页
            2.4.2. 各组的排斥指数的比较第134-136页
        2.5 ADSCs及类肝细胞免疫荧光染色示踪第136-140页
            2.5.1 ADSCs及类肝细胞的体外标记结果第136-138页
            2.5.2 ADSCs及类肝细胞的肝内定位及与术后时间的关系第138-140页
        2.6 ADSCs及类肝细胞移植术后大鼠免疫免疫状态的检测第140-142页
            2.6.1 混合淋巴试验第140-141页
            2.6.2 术后T淋巴细胞亚群变化检测的结果第141-142页
    3. 讨论第142-157页
        3.1 实验动物的选择第144-145页
        3.2 实验设计的目标第145-146页
        3.3 ADSCs及类肝细胞向移植肝的归巢及动态的变化第146-148页
        3.4 ADSCs及类肝细胞对高排斥模型实验各组肝功能的影响第148-150页
        3.5 ADSCs及类肝细胞对高排斥模型实验各组免疫系统的影响第150-154页
        3.6. 对术后T淋巴细胞亚群的流式细胞仪的检测第154-155页
        3.7 术后输入干细胞对肝移植术后急性排斥反形态学的影响第155-157页
    4. 结论第157-158页
    5. 参考文献第158-166页
综述 脂肪源性干细胞在肝移植中运用的现状与展望第166-188页
    一、肝移植的国内外的临床运用现状第166-167页
    二、肝移植存在的问题第167-168页
    三、同种异体肝移植的免疫排斥的机理第168-170页
    四、同种异体肝移植免疫耐受形成的原理第170-174页
    五、肝移植免疫耐受第174-175页
    六、间质干细胞的免疫调节功能第175-177页
    七、ADSCS的发现、分化及免疫特性第177-180页
    参考文献第180-188页
攻读学位期间发表的文章第188-189页
致谢第189-190页
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