BSO介导氧化应激联合顺铂促人肺腺癌A549干细胞球凋亡的研究
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背景:当前,非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)死亡率呈现逐年递增趋势,居恶性肿瘤死因之首。但由于肺癌肿瘤组织中存有高耐药导致顺铂(diamminedichloroplatinum,DDP)化疗失败,成为临床迫切解决的课题。“肿瘤干细胞假说”理论认为肿瘤干细胞(cancer stem cells,CSCs)是肿瘤组织中的极少数具有干细胞特性的细胞群体,尚未充分分化的原始细胞,具有自我更新和多向分化潜能。单个CSCs即具有致瘤性,可能是肿瘤再发的始动细胞。本课题前期研究已成功分离出肺腺癌CSCs,相比非CSCs具有低线粒体DNA拷贝数、胞内低活性氧(reactive oxygen species,ROS)浓度、低葡萄糖及低耗氧等独特的能量代谢特征,同时认为维持CSCs胞内低ROS浓度与其自我更新、多向分化及高致瘤性密切相关。鉴于ROS在肿瘤放疗促凋亡的重要作用,我们认为CSCs胞内ROS浓度的高低亦可影响肿瘤化疗药物的疗效,促CSCs胞内ROS蓄积的联合化疗或可成为肿瘤综合治疗新策略。因此,本研究拟人肺腺癌A549细胞经无血清培养基(serum-free medium,SFM)培养A549干细胞球,探讨A549细胞与A549干细胞球间的谷胱甘肽-硫-转移酶π(glutathione-S-transferase-π,GST-π)表达及胞内ROS浓度差异情况;同时针对该两种细胞分别以空白对照组、顺铂组、GST-π抑制剂丁硫氨酸-亚砜亚胺(DL-buthionine-S,R-sulfoximine,BSO)联合DDP组及N-乙酰-L-半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)联合DDP组干预,并检测各组与之对应的ROS浓度及凋亡率。目的:1、比较A549单细胞克隆不同形态的胞内ROS浓度。2、比较A549细胞和A549干细胞球不同药物组合干预后GST-π的表达、胞内ROS浓度及凋亡率的差异,同时探讨三者的相关性。方法:1、采用荧光显微镜检测A549单细胞克隆不同形态的胞内ROS浓度。2、通过Western Blot检测A549细胞和A549干细胞球不同药物组合干预24h后GST-π蛋白表达水平。3、利用流式细胞术检测A549细胞和A549干细胞球不同药物组合干预24h后胞内ROS浓度及凋亡率。结果:1、A549紧密型克隆细胞胞内ROS浓度明显低于松散型(24.13±1.79vs77.89±6.71P<0.01)。2、A549干细胞球较A549细胞高表达GST-π蛋白(1.45±0.07vs1.25±0.06P<0.05),同时维持胞内低ROS浓度(272.67±16.04vs326.33±12.34P<0.01);顺铂干预后前者胞内ROS浓度上升幅度较后者小(585±12.12vs768.67±9.02P<0.01),凋亡增加幅度亦较后者小(13.74±1.51vs23.23±1.08P<0.01)。3、A549细胞及A549干细胞球经过NAC联合顺铂与单用顺铂干预后相比,两种细胞均表现胞内ROS浓度显著下降(A549细胞547.67±9.07vs768.67±9.02P<0.01,A549干细胞球452.33±16.16vs585.00±12.12P<0.01),凋亡亦较单用顺铂减少(A549细胞12.47±1.50vs23.23±1.08P<0.01,A549干细胞球8.43±1.10vs13.74±1.51P<0.01)。4、A549干细胞球及A549细胞经过BSO联合顺铂干预后相比,前者更低表达GST-π蛋白(0.51±0.05vs0.83±0.05P<0.05)、胞内ROS浓度明显蓄积(1651.00±28.62vs1486.67±10.02P<0.01)、并伴有凋亡增幅明显(34.20±2.01vs29.05±1.08P<0.01)。结论:1、 A549干细胞球高表达GST-π蛋白并维持胞内低ROS浓度,可能是LCSCs化疗耐药的原因之一。2、抗氧化剂NAC能够有效清除肿瘤胞内ROS,抑制顺铂凋亡效应。3、BSO抑制GST-π表达,并触发ROS大量蓄积,介导氧化应激促进A549干细胞球化疗凋亡,能够起到化疗增敏效应。
摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
中英缩略词表 | 第10-11页 |
第1章 前言 | 第11-14页 |
第2章 材料与方法 | 第14-24页 |
2.1 实验材料 | 第14-16页 |
2.1.1 实验细胞株 | 第14页 |
2.1.2 主要试剂及来源 | 第14-15页 |
2.1.3 主要仪器和设备 | 第15页 |
2.1.4 主要试剂及液体配制 | 第15-16页 |
2.2 实验方法 | 第16-23页 |
2.2.1 细胞培养及实验分组 | 第16-19页 |
2.2.2 荧光显微镜检测 A549 单细胞克隆集落不同形态的 ROS 荧光值 | 第19页 |
2.2.3 Western Blot 法分别检测 A549 细胞及 A549 干细胞球不同分组的GST-π蛋白表达 | 第19-22页 |
2.2.4 流式细胞仪分别检测 A549 细胞及 A549 干细胞球不同分组的胞内 ROS 水平 | 第22-23页 |
2.2.5 流式细胞仪分别检测 A549 细胞及 A549 干细胞球不同分组的凋亡率 | 第23页 |
2.3 统计方法 | 第23-24页 |
第3章 结果 | 第24-33页 |
3.1 培养细胞的形态观察 | 第24-26页 |
3.1.1 A549 细胞及 A549 单细胞克隆培养的形态 | 第24页 |
3.1.2 A549 干细胞球的形态 | 第24-26页 |
3.2 Western Blot 法检测结果 | 第26-28页 |
3.2.1 Western Blot 法检测 A549 细胞及 A549 干细胞球不同分组 GST-π蛋白表达 | 第26-28页 |
3.3 流式细胞仪检测结果 | 第28-33页 |
3.3.1 流式细胞仪分别检测 A549 细胞及 A549 干细胞球不同分组的胞内 ROS 水平 | 第28-30页 |
3.3.2 流式细胞仪分别检测 A549 细胞及 A549 干细胞球不同分组的凋亡率 | 第30-33页 |
第4章 讨论 | 第33-38页 |
4.1 CSCs 能量代谢特征 | 第33-34页 |
4.2 CSCs 的铂类耐药机制 | 第34-35页 |
4.3 ROS 与肿瘤化疗凋亡相关机制 | 第35页 |
4.4 助氧化剂 BSO 介导氧化应激联合顺铂促进 CSCs 凋亡 | 第35-38页 |
第5章 结论 | 第38-39页 |
5.1 结论 | 第38页 |
5.2 展望 | 第38-39页 |
致谢 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-43页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第43-44页 |
综述 | 第44-50页 |
参考文献 | 第49-50页 |
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