平菇多糖的提取、纯化及免疫调节作用研究

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平菇是我国的大宗食用菌,营养丰富,口感独特,具有良好的保健功效,属药食两用食材。平菇多糖是平菇的重要组成部分,具有抗氧化、抗炎、降血脂等多种生物功能。本文对平菇多糖的提取、纯化、结构表征以及免疫调节活性进行了探索。主要研究内容及结果如下:(1)使用混合水平均匀设计的方法对超声波协同酶法提取平菇多糖的工艺进行探索和优化,结合试验结果与实际操作的可行性,通过多次重复试验,确定最佳提取条件:超声功率120 W,提取温度25℃,液料比22:1(mL/g),pH 7.5,加酶量0.5%,酶解处理6 min,超声处理69 min;此条件下平菇多糖的得率为36.71%,该方法简单可行且得率高。(2)对前面提取得到的平菇粗多糖进行分离、纯化。首先使用乙醇反复浸泡的方法对粗多糖进行脱色处理,然后使用Sevage法脱除其中的游离蛋白质,接着使用透析法除去无机盐等小分子物质。再将所得多糖依次通过DEAE-52纤维素柱和Sephadex G-100葡聚糖凝胶柱进行分离纯化,得到平菇多糖纯品POP-Ⅰ、POP-Ⅱ、POP-Ⅲ,含糖量分别为 93.96%、90.00%和 83.63%。(3)选择POP-Ⅰ、POP-Ⅱ、POP-Ⅲ三个级分中含量最高的POP-Ⅰ进行理化性质和初级结构的探究。通过刚果红试验、碘-碘化钾反应、β-消去反应及UV扫描图谱研究发现,POP-Ⅰ不具备三股螺旋结构,可能存在侧链和分支,可能含有糖蛋白糖肽键,含糖量极高,不含核酸,且蛋白质含量非常低;红外扫描结果显示POP-Ⅰ含有糖类的特征吸收峰,含有-COOH、C=O以及酰胺基等基团,且由吡喃糖苷键连接;扫描电镜照片显示,POP-Ⅰ的空间形貌主要为松散的碎片状,同时也含有少量的杆状结构,据此推测组成POP-Ⅰ的单糖之间具有较强的连接作用力;温度、pH、金属离子以及络合物等外界因素对POP-Ⅰ结构影响的研究表明POP-Ⅰ主要以无序结构存在,POP-Ⅰ可在碱性环境中发生β-消去反应,酸和碱均可改变POP-Ⅰ的构象;POP-Ⅰ与Ca2+、刚果红和硼酸均可发生络合反应,且与Ca2+的络合能力最强;高效液相色谱分析结果显示POP-Ⅰ的相对分子质量为48456.61Da;气相色谱-质谱检测结果显示POP-Ⅰ主要由Rha、GlcUA、Man、Glc和Gal五种单糖组成,摩尔比为 12.66:9.68:8.58:13.03:11.91。(4)体内动物试验结果表明平菇多糖的预防型干预能提高免疫低下小鼠的免疫力及抗氧化能力。具体表现为:①POP的预防型干预能够缓解由于环磷酰胺引起的Ig-M、Ig-G、Ig-A、IL-2、TNF-α、IFN-y含量下降,可以通过提高机体中和毒素、激活补体的能力,促进机体激活巨噬细胞、抑制病毒复制,进而提高机体的免疫力;②POP的预防型干预可以显著性地提高脾脏T淋巴细胞的增殖率,进而调节机体的免疫能力,同时还能帮助机体清除过多的活性氧、保护细胞膜结构的完整性、保护肝脏并降低异常升高的MDA含量、帮助机体清除自由基,进而恢复机体自由基的动态平衡。
摘要第3-5页
Abstract第5-6页
英文缩略词表第7-13页
第1章 绪论第13-21页
    1.1 平菇概述第13页
    1.2 平菇多糖的研究现状第13-19页
        1.2.1 平菇多糖的定义第13-14页
        1.2.2 平菇多糖的提取第14-15页
        1.2.3 平菇多糖的除杂第15-16页
        1.2.4 平菇多糖的纯化第16页
        1.2.5 平菇多糖的结构研究第16-17页
        1.2.6 平菇多糖的生物活性研究第17-19页
    1.3 本文研究意义及研究内容第19-21页
        1.3.1 研究意义第19页
        1.3.2 研究内容第19页
        1.3.3 创新点第19-21页
第2章 平菇多糖的提取工艺优化第21-33页
    2.1 引言第21页
    2.2 试验材料与仪器第21-22页
        2.2.1 试验材料与试剂第21-22页
        2.2.2 试验仪器第22页
    2.3 试验方法第22-24页
        2.3.1 平菇干粉制备第22页
        2.3.2 POP的提取工艺第22页
        2.3.3 单因素试验第22-23页
        2.3.4 均匀设计试验第23页
        2.3.5 POP的得率第23页
        2.3.6 试验统计与分析第23-24页
    2.4 结果分析第24-31页
        2.4.1 单因素试验第24-28页
        2.4.2 均匀设计试验第28-31页
    2.5 本章小结第31-33页
第3章 平菇多糖的分离纯化第33-43页
    3.1 引言第33页
    3.2 试验材料与仪器第33-34页
        3.2.1 试验材料与试剂第33页
        3.2.2 试验仪器第33-34页
    3.3 试验方法第34-37页
        3.3.1 平菇粗多糖分离纯化工艺第34页
        3.3.2 POP的色素脱除第34页
        3.3.3 POP的游离蛋白质脱除第34-35页
        3.3.4 POP的透析除杂第35页
        3.3.5 POP的DEAE-52纤维素柱层析第35-36页
        3.3.6 POP的SEPHADEX G-100凝胶柱层析第36页
        3.3.7 POP的含糖量测定第36-37页
    3.4 结果与分析第37-41页
        3.4.1 POP的色素脱除结果第37页
        3.4.2 POP的游离蛋白脱除结果第37-38页
        3.4.3 POP的透析除杂结果第38-39页
        3.4.4 POP的DEAE-52纤维素柱层析结果第39页
        3.4.5 POP的SEPHADEX G-100葡聚糖凝胶柱层析结果第39-40页
        3.4.6 POP的含糖量测定第40-41页
    3.5 本章小结第41-43页
第4章 平菇多糖的结构表征第43-57页
    4.1 引言第43页
    4.2 试验材料与仪器第43-44页
        4.2.1 试验材料与试剂第43-44页
        4.2.2 试验仪器第44页
    4.3 试验方法第44-46页
        4.3.1 紫外光谱扫描第44页
        4.3.2 刚果红试验第44页
        4.3.3 碘-碘化钾反应第44页
        4.3.4 B-消去反应第44-45页
        4.3.5 红外光谱扫描第45页
        4.3.6 环境扫描电镜观察第45页
        4.3.7 不同外界因素对POP-Ⅰ构象的影响第45页
        4.3.8 分子量测定第45页
        4.3.9 气相色谱试验第45-46页
        4.3.10 数据分析第46页
    4.4 结果与分析第46-55页
        4.4.1 紫外扫描光谱第46-47页
        4.4.2 刚果红试验第47-48页
        4.4.3 碘-碘化钾反应第48页
        4.4.4 B-消去反应第48-49页
        4.4.5 红外光谱扫描第49页
        4.4.6 POP-Ⅰ的环境扫描电镜观察第49-50页
        4.4.7 不同外界因素对POP-Ⅰ构象的影响第50-53页
        4.4.8 POP-Ⅰ的分子量测定第53-54页
        4.4.9 POP-Ⅰ的GC-MS分析第54-55页
    4.5 本章小结第55-57页
第5章 平菇多糖的免疫调节活性研究第57-73页
    5.1 引言第57页
    5.2 试验材料与仪器第57-58页
        5.2.1 试验材料与试剂第57-58页
        5.2.2 试验仪器第58页
    5.3 试验方法第58-60页
        5.3.1 POP的提取第58页
        5.3.2 试验动物的分组及给药第58页
        5.3.3 体重变化趋势测定第58页
        5.3.4 计算小鼠免疫器官指数第58-59页
        5.3.5 脾淋巴细胞增殖率测定第59页
        5.3.6 计算小鼠心、肾、肝及肝周脂肪指数第59页
        5.3.7 计算小鼠睾丸、附睾及附睾脂肪指数第59页
        5.3.8 小鼠迟发型超敏反应第59-60页
        5.3.9 小鼠全血四项指标测定第60页
        5.3.10 小鼠LDH及ACP测定第60页
        5.3.11 小鼠血清指标测定第60页
        5.3.12 小鼠肝组织抗氧化指标测定第60页
        5.3.14 数据统计分析第60页
    5.4 结果与分析第60-71页
        5.4.1 POP对小鼠体重的影响第60-62页
        5.4.2 POP对小鼠免疫器官及脾T淋巴细胞增殖能力的影响第62页
        5.4.3 POP对心脏、肾、肝及肝周脂肪指数的影响第62-63页
        5.4.4 POP对睾丸、附睾及附睾脂肪指数的影响第63-64页
        5.4.5 POP对小鼠迟发型超敏反应的影响第64页
        5.4.6 小鼠全血四项指标测定第64-65页
        5.4.7 POP对小鼠脾脏组织LDH及ACP活性的影响第65-66页
        5.4.8 小鼠血清指标测定第66-69页
        5.4.9 肝组织抗氧化指标测定第69-71页
    5.5 本章小结第71-73页
第6章 结论第73-75页
    6.1 结论第73页
    6.2 展望第73-75页
参考文献第75-83页
致谢第83-85页
攻读学位期间的研究成果第85页
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