仿刺参(Apostichopus japonicus)皂苷HPLC-ELSD分析方法的建立及其定性鉴别
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海参是我国一种传统的滋补食品,含多种生物活性成分。海参皂苷是海参主要的次生代谢产物,具有广泛的药理生理活性,如抗真菌、抗病毒、抗肿瘤、溶血作用、细胞毒性和免疫调节等。本论文以北方常见的食用仿刺参为研究对象,初步优化了仿刺参皂苷的提取方法,并选取HPLC-ELSD法对其皂苷提取液进行检测,通过对各检测条件的优化,最终确立了仿刺参皂苷的HPLC-ELSD检测条件;利用该HPLC色谱条件,采用HPLC-MS/MS技术对仿刺参中皂苷进行定性鉴定。本论文建立了一种考察仿刺参皂苷质量的简单、准确、快速的分析方法,其研究结果为辨别仿刺参的优劣、仿刺参制品的真伪及建立仿刺参的质量评价标准,提供了可靠的理论基础和科学依据,对加快仿刺参养殖和加工产业的发展、规范海参产品的消费市场具有重要意义。1.设计正交实验,对提取溶剂、料液比、提取时间、提取次数四个因子进行了考察,仿刺参中皂苷的最佳提取方法为:60%乙醇为提取溶剂,物料比为1:800,提取次数为5次,每次3h。通过对色谱柱、流动相、流速、柱温及蒸发光散射检测器(ELSD)参数的优化,确定了HPLC-ELSD的色谱条件为:Waters Symmetry C18色谱柱(150mm×4.6mm,5μm),采用5mmol/L醋酸铵水溶液-乙腈进行梯度洗脱,流速0.7mL/min,柱温40℃,进样量20μL,分析时间为60min,ELSD的参数:漂移管温度为60℃,雾化效率为50%,载气压力为25psi,增益(TMP)为100,对建立的方法进行了方法学验证。2.根据建立的HPLC色谱条件,采用HPLC-ESI-IT-MS/MS技术,对仿刺参皂苷提取液进行定性研究,发现皂苷在负离子模式下响应信号更好。通过ESI-IT-MS产生的[M-H]-/[M+NH4]+获得化合物的分子质量信息;通过源内碰撞诱导解离(CID)技术对[M-H]-进一步电离获得了海参皂苷类化合物的特征碎片离子峰信息,与文献对比,对仿刺参中主要皂苷进行定性鉴别,结果:在TIC色谱图上,在14.0~30.5min之间的色谱峰中有16个考察峰为海参皂苷类化合物;且仿刺参皂苷HPLC色谱图和TIC色谱图上,在14.0~30.5min之间的出峰时间、峰数和峰响应值相一致,进而定性了HPLC色谱图上的各皂苷峰。
摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第1章 前言 | 第13-40页 |
1.1 海参的研究概况 | 第13-17页 |
1.1.1 海参资源的分布 | 第13页 |
1.1.2 海参的形态 | 第13页 |
1.1.3 海参的分类 | 第13-14页 |
1.1.4 海参的主要营养成分 | 第14-15页 |
1.1.5 我国海参的发展现状 | 第15-17页 |
1.1.5.1 海参养殖现状 | 第15-16页 |
1.1.5.2 海参的加工现状 | 第16-17页 |
1.2 海参皂苷 | 第17-38页 |
1.2.1 皂苷概述 | 第17-18页 |
1.2.2 海参皂苷的药理活性 | 第18-20页 |
1.2.2.1 抗真菌作用 | 第18-19页 |
1.2.2.2 抗肿瘤作用 | 第19页 |
1.2.2.3 溶血作用 | 第19页 |
1.2.2.4 抗艾滋病作用 | 第19-20页 |
1.2.2.5 细胞毒活性 | 第20页 |
1.2.2.6 免疫调节作用 | 第20页 |
1.2.3 海参皂苷的化学结构 | 第20-24页 |
1.2.3.1 海参烷型(holostane)海参皂苷 | 第21-23页 |
1.2.3.2 非海参烷型(nonholostane)海参皂苷 | 第23页 |
1.2.3.3 刺参科海参皂苷的结构特点 | 第23-24页 |
1.2.4 海参皂苷的纯化制备 | 第24-27页 |
1.2.4.1 海参皂苷的提取 | 第25页 |
1.2.4.2 海参皂苷的除杂 | 第25页 |
1.2.4.3 海参皂苷的分离纯化 | 第25-27页 |
1.2.5 海参皂苷的结构鉴定 | 第27-28页 |
1.2.5.1 紫外光谱(UV) | 第27页 |
1.2.5.2 红外光谱(IR) | 第27页 |
1.2.5.3 质谱(MS) | 第27页 |
1.2.5.4 核磁共振光谱(NMR) | 第27-28页 |
1.2.5.5 化学方法 | 第28页 |
1.2.6 皂苷的质量控制 | 第28-38页 |
1.2.6.1 定性鉴别 | 第28-33页 |
1.2.6.2 定量分析 | 第33-38页 |
1.3 本课题的研究内容、目的和意义 | 第38-40页 |
第2章 仿刺参(Apostichopus japonicus)皂苷 HPLC-ELSD 分析方法的建立 | 第40-54页 |
2.1 仪器和试剂 | 第40-41页 |
2.2 原料 | 第41页 |
2.3 实验方法 | 第41-44页 |
2.3.1 供试品溶液的制备 | 第41-42页 |
2.3.1.1 海参皂苷提取方法的优化 | 第41-42页 |
2.3.2 皂苷的性质鉴定 | 第42页 |
2.3.3 皂苷的 HPLC-ELSD 色谱分析条件 | 第42-44页 |
2.4 方法学验证 | 第44页 |
2.4.1 精密度 | 第44页 |
2.4.2 重复性 | 第44页 |
2.4.3 稳定性 | 第44页 |
2.5 结果与讨论 | 第44-53页 |
2.5.1 皂苷成分的性质鉴定 | 第44页 |
2.5.2 提纯方法的选择及优化 | 第44-45页 |
2.5.3 流动相及梯度程序的选择 | 第45-48页 |
2.5.4 色谱柱的选择 | 第48-49页 |
2.5.5 流速的优化 | 第49页 |
2.5.6 柱温的优化 | 第49-50页 |
2.5.7 检测器的选择及 ELSD 参数的优化 | 第50-51页 |
2.5.8 分析时间的确定 | 第51页 |
2.5.9 方法学验证的结果和分析 | 第51-53页 |
2.5.9.1 精密度实验的结果和分析 | 第51-52页 |
2.5.9.2 重复性实验的结果和分析 | 第52页 |
2.5.9.3 稳定性实验的结果和分析 | 第52-53页 |
2.6 需改进之处 | 第53页 |
2.7 小结 | 第53-54页 |
第3章 仿刺参(Apostichopus japonicus)皂苷的 HPLC-MS/MS分析 | 第54-72页 |
3.1 仪器和试剂 | 第55-56页 |
3.2 原料 | 第56页 |
3.3 实验方法 | 第56-57页 |
3.3.1 供试品溶液的制备 | 第56页 |
3.3.2 色谱条件 | 第56-57页 |
3.3.3 质谱条件 | 第57页 |
3.4 结果与讨论 | 第57-70页 |
3.4.1 电离模式的选择 | 第57-59页 |
3.4.2 仿刺参总皂苷的 HPLC 图与 TIC 图比较 | 第59页 |
3.4.3 仿刺参皂苷化合物的定性鉴定 | 第59-70页 |
3.5 需要改进之处 | 第70页 |
3.6 小结 | 第70-72页 |
总结 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-80页 |
致谢 | 第80-81页 |
个人简历 | 第81-82页 |
发表的学术论文 | 第82页 |
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