枯草芽孢杆菌纤溶酶高产菌株选育、发酵条件优化及其分离纯化
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血栓栓塞性疾病是当前致死率高的病因之一,而溶栓疗法是治疗这类疾病的重要手段;纤溶酶可催化血栓的主要基质纤维蛋白水解从而化解血栓,因此纤溶酶作为血栓的特效治疗药剂而成为研究焦点。微生物是纤溶活性酶类的重要来源,日本学者从纳豆中发现纳豆激酶具有良好的纤溶活性;我国和韩国学者则从枯草芽孢杆菌发酵液中分离出相应的血栓溶解酶。由于野生型菌株产酶能力低,本文对一株枯草芽孢杆菌纤溶酶产生菌Bacillus subtilis XZ3④进行N+离子注入诱变,获得了高产菌株Bacillus subtilis XZI125,并对该菌的发酵条件进行优化,同时研究了枯草芽孢杆菌纤溶酶的分离纯化,旨在为枯草芽孢杆菌纤溶酶的开发应用提供直接理论依据。主要结论如下:1.以能量20 KeV,入射剂量为30×2.6×1013 ion/cm2~200×2.6×1013 ion/cm2的N+注入枯草芽孢杆菌纤溶酶产生菌B. subtilis XZ3④进行诱变育种,其存活率曲线为典型的“马鞍型”,即随着注入剂量的增加存活率呈现先降后升再降的趋势;筛选284株诱变菌,得到一株稳定的高产枯草芽孢杆菌纤溶酶的菌株B. subtilis XZI125,枯草芽孢杆菌纤溶酶酶活比原始菌株提高了160%,达到1230.45 u·ml-1。2.采用Plackett-Burman设计法,从26个因素中筛选出了影响B. subtilis XZI125液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶的9个主要影响因子:麸皮、甘油、硫酸铵、豆粕、植酸、二甲亚砜、发酵温度、发酵时间和装液量。3.在Plackett-Burman实验基础上,通过中心旋转组合设计(Central Composite Rotatable Design,CCRD)法建立了枯草芽孢杆菌纤溶酶酶活对发酵培养基6个关键组份的二次多项数学模型,并利用统计学方法以及后续试验对该模型进行了显著性检验和有效性验证。借助模型方程的响应面图及其等高线图,对关键影响因素间的交互作用进行了深入的研究与探讨,分析得出了各关键营养要素的合适浓度水平范围。对枯草芽孢杆菌纤溶酶模型方程解逆矩阵求得:即在麸皮1.70%、甘油1.30%、硫酸铵0.07%、豆粕3.94%、植酸282.64ppm、二甲亚砜5.84ppm时,获得的枯草芽孢杆菌纤溶酶酶活最大预测值为2382.00 u·ml-1,此预测可信度不仅被统计分析所验证,也被实践所证实。4.在Plackett-Burman和CCRD实验基础上,采用Box-Behnken统计学实验设计方法对影响B. aubtilis XZI125液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶的3个关键外界影响因素发酵温度、发酵时间和装液量的最佳水平范围及其交互作用进行了研究与探讨。通过对模型方程3D图及其等高线图的研究,发现在发酵温度31.58℃、发酵时间48.54h、装液量53.81ml的工艺条件下,获得的枯草芽孢杆菌纤溶酶酶活最大预测值可达2665.16 u·ml-1。5.在摇瓶液体发酵实验结果的基础上,于100L发酵罐中初步探索了溶解氧和pH对B. subtilis XZI125分批液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶的影响。结果表明:在通气量控制在1.0vvm的前提下,当恒定搅拌转速250rpm,恒定发酵液pH7.0时,下罐发酵粗酶液达到了2876.94 u·ml-1,比摇瓶液体发酵提高了211.78 u·ml-1。6.N+离子诱变筛选所得的酶活高产菌B. subtilis XZI125的发酵液经微滤(0.1μm无机陶瓷膜),超滤(中空纤维膜UPIS-503、UEOS-503)和HZD-2弱酸性阳离子交换层析分离纯化出一种电泳纯的枯草芽孢杆菌纤溶酶,其比活力为4291.03 u·mg-1,纯化倍数为18.34,回收率为24.58%,SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测得相对分子量为27.7KDa。
中文摘要 | 第9-11页 |
英文摘要 | 第11-13页 |
表格索引 | 第14-16页 |
图形索引 | 第16-20页 |
引言 | 第20-21页 |
第1章 文献综述 | 第21-32页 |
1.1 溶栓药物概述 | 第21页 |
1.2 NK的生化性质 | 第21-23页 |
1.2.1 NK的分子量和等电点 | 第21页 |
1.2.2 NK的基因序列 | 第21-22页 |
1.2.3 NK的氨基酸序列 | 第22-23页 |
1.3 NK的酶学特性 | 第23-24页 |
1.3.1 NK的稳定性 | 第23-24页 |
1.3.2 NK的底物特异性 | 第24页 |
1.4 NK的分离纯化 | 第24页 |
1.5 NK的溶栓机理 | 第24-25页 |
1.6 NK的活性测定方法 | 第25-26页 |
1.6.1 纤维蛋白平板法 | 第25-26页 |
1.6.2 纤维蛋白块溶解时间(CLT) | 第26页 |
1.6.3 酶联免疫吸附法(ELISA) | 第26页 |
1.6.4 四肽底物法 | 第26页 |
1.7 NK的分子生物学研究 | 第26-27页 |
1.8 NK的开发现状及应用前景 | 第27-29页 |
参考文献 | 第29-32页 |
第2章 N~+离子注入枯草芽孢杆菌纤溶酶产生菌Bacillus subtilis XZ3④的诱变选育 | 第32-43页 |
2.1 材料与方法 | 第33-37页 |
2.1.1 材料 | 第33-34页 |
2.1.1.1 菌株 | 第33页 |
2.1.1.2 培养基 | 第33页 |
2.1.1.3 主要试剂 | 第33页 |
2.1.1.4 主要仪器设备 | 第33-34页 |
2.1.2 实验方法 | 第34-37页 |
2.1.2.1 尿激酶标准曲线的测定方法 | 第34-35页 |
2.1.2.2 枯草芽孢杆菌纤溶酶粗酶液的提取及酶活测定 | 第35页 |
2.1.2.3 产枯草芽孢杆菌纤溶酶的诱变出发菌株确定 | 第35-36页 |
2.1.2.4 Bacillus subtilis XZ3④生长曲线测定 | 第36页 |
2.1.2.5 Bacillus subtilis XZ3④单细胞菌体悬浮液的制备 | 第36页 |
2.1.2.6 低能离子(N~+)注入Bacillus subtitis XZ3④单细胞菌体悬浮液 | 第36-37页 |
2.1.2.7 酪蛋白琼脂培养基初筛诱变活菌 | 第37页 |
2.1.2.8 突变筛选标准的建立 | 第37页 |
2.1.2.9 摇瓶液体发酵复筛诱变活菌 | 第37页 |
2.1.2.10 突变株遗传稳定性检验 | 第37页 |
2.2 结果与讨论 | 第37-41页 |
2.2.1 低能离子(N~+)注入Bacillus subtilis XZ3④对其存活率的影响 | 第37-38页 |
2.2.2 低能离子(N~+)注入Bacillus subtilis XZ3④对其突变率的影响 | 第38-39页 |
2.2.3 突变株遗传稳定性检验 | 第39-41页 |
2.3 结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-43页 |
第3章 Bacillus subtilis XZI125液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶主要影响因子的筛选 | 第43-55页 |
3.1 材料与方法 | 第43-47页 |
3.1.1 材料 | 第43-44页 |
3.1.1.1 菌株 | 第43页 |
3.1.1.2 培养基 | 第43页 |
3.1.1.3 主要试剂 | 第43-44页 |
3.1.1.4 主要仪器设备 | 第44页 |
3.1.2 实验方法 | 第44-47页 |
3.1.2.1 菌种活化 | 第44页 |
3.1.2.2 种子液制备 | 第44页 |
3.1.2.3 尿激酶标准曲线的测定方法 | 第44页 |
3.1.2.4 枯草芽孢杆菌纤溶酶粗酶液的提取及酶活测定 | 第44页 |
3.1.2.5 实验设计 | 第44-47页 |
3.2 结果与讨论 | 第47-52页 |
3.2.1 液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶主要影响因子的确定 | 第49-51页 |
3.2.2 讨论 | 第51-52页 |
3.3 结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-55页 |
第4章 Bacillus subtilis XZI125液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶的培养基优化 | 第55-72页 |
4.1 材料与方法 | 第55-60页 |
4.1.1 材料 | 第55-56页 |
4.1.1.1 菌株 | 第55页 |
4.1.1.2 培养基 | 第55页 |
4.1.1.3 主要试剂 | 第55-56页 |
4.1.1.4 主要仪器设备 | 第56页 |
4.1.2 实验方法 | 第56-60页 |
4.1.2.1 菌种活化 | 第56页 |
4.1.2.2 种子液制备 | 第56页 |
4.1.2.3 尿激酶标准曲线的测定方法 | 第56页 |
4.1.2.4 枯草芽孢杆菌纤溶酶粗酶液的提取及酶活测定 | 第56页 |
4.1.2.5 实验设计 | 第56-60页 |
4.2 结果与讨论 | 第60-70页 |
4.3 结论 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-72页 |
第5章 Bacillus subtilis XZI125产枯草芽孢杆菌纤溶酶的液体发酵工艺优化 | 第72-82页 |
5.1 材料与方法 | 第72-76页 |
5.1.1 材料 | 第72-73页 |
5.1.1.1 菌株 | 第72页 |
5.1.1.2 培养基 | 第72页 |
5.1.1.3 主要试剂 | 第72-73页 |
5.1.1.4 主要仪器设备 | 第73页 |
5.1.2 实验方法 | 第73-76页 |
5.1.2.1 菌种活化 | 第73页 |
5.1.2.2 种子液制备 | 第73页 |
5.1.2.3 尿激酶标准曲线的测定方法 | 第73页 |
5.1.2.4 枯草芽孢杆菌纤溶酶粗酶液的提取及酶活测定 | 第73页 |
5.1.2.5 实验设计 | 第73-76页 |
5.2 结果与讨论 | 第76-80页 |
5.3 结论 | 第80-81页 |
参考文献 | 第81-82页 |
第6章 Bacillus subtilis XZI125分批液体发酵产枯草芽孢杆菌纤溶酶初探及酶的分离纯化 | 第82-96页 |
6.1 材料与方法 | 第82-86页 |
6.1.1 材料 | 第82-84页 |
6.1.1.1 菌株 | 第82-83页 |
6.1.1.2 培养基 | 第83页 |
6.1.1.3 主要试剂 | 第83页 |
6.1.1.4 主要仪器设备 | 第83-84页 |
6.1.2 实验方法 | 第84-86页 |
6.1.2.1 分批液体发酵中试 | 第84-85页 |
6.1.2.1.1 菌种活化 | 第84页 |
6.1.2.1.2 种子液制备 | 第84页 |
6.1.2.1.3 全自动GJ-100C型发酵罐培养研究 | 第84页 |
6.1.2.1.4 溶氧(DO)测定 | 第84-85页 |
6.1.2.1.5 pH测定 | 第85页 |
6.1.2.1.6 尿激酶标准曲线的测定方法 | 第85页 |
6.1.2.1.7 枯草芽孢杆菌纤溶酶粗酶液的提取及酶活测定 | 第85页 |
6.1.2.2 枯草芽孢杆菌纤溶酶分离纯化 | 第85-86页 |
6.1.2.2.1 工艺流程 | 第85页 |
6.1.2.2.2 微滤(MF) | 第85页 |
6.1.2.2.3 超滤(UF) | 第85页 |
6.1.2.2.4 阳离子交换层析 | 第85页 |
6.1.2.2.5 蛋白质含量的测定 | 第85-86页 |
6.1.2.2.6 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS PAGE) | 第86页 |
6.2 结果与讨论 | 第86-94页 |
6.2.1 溶氧对枯草芽孢杆菌纤溶酶分批发酵的影响 | 第86-88页 |
6.2.2 不控制pH和控制恒定pH对枯草芽孢杆菌纤溶酶分批发酵的影响 | 第88-90页 |
6.2.2.1 不控制pH时的枯草芽孢杆菌纤溶酶发酵过程 | 第88-89页 |
6.2.2.2 控制恒定pH时的枯草芽孢杆菌纤溶酶发酵过程 | 第89-90页 |
6.2.3 膜分离(微滤超滤)纯化效果 | 第90-91页 |
6.2.3.1 微滤 | 第90页 |
6.2.3.2 超滤 | 第90-91页 |
6.2.4 阳离子交换层析 | 第91-93页 |
6.2.4.1 洗脱的最佳离子强度 | 第91-92页 |
6.2.4.2 HZD-2弱酸性阳离子交换层析 | 第92-93页 |
6.2.5 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS PAGE) | 第93-94页 |
6.3 结论 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-96页 |
全文结论 | 第96-98页 |
攻读硕士期间发表的学术论文 | 第98-99页 |
致谢 | 第99页 |
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