叶酸调控神经干细胞增殖分化和凋亡对脑梗死大鼠的神经保护作用机制研究

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目的1.通过建立大鼠大脑中动脉栓塞(middle cerebral artery occlusion, MCAO)模型和体外缺氧神经干细胞(neural stem cells, NSCs)损伤模型,免疫荧光双标记检测NSCs增殖分化,观察叶酸对缺血缺氧损伤NSCs增殖分化的影响,明确叶酸能否通过促进NSCs增殖分化对脑梗死大鼠产生神经保护作用。2.通过检测Notch信号通路和ERK信号通路相关基因mRNA和蛋白表达,在抑制ERK通路条件下进一步观察NSCs增殖分化,探讨叶酸对缺血缺氧损伤NSCs增殖分化调控机制。3.通过凋亡率及凋亡基因芯片和线粒体凋亡途径相关蛋白表达检测,观察叶酸对缺氧损伤NSCs凋亡的影响,探讨叶酸对NSCs凋亡调控的可能机制,为研究叶酸对缺血缺氧性脑损伤的防治提供科学依据。方法1.SD大鼠随机分为假手术组(Sham-OP)、中动脉栓塞组(MCAO)、中动脉栓塞+叶酸低剂量组(MCAO+LFA)和中动脉栓塞+叶酸高剂量组(MCAO+HFA)。栓线法制备大鼠MCAO模型, Sham-OP组和MCAO组以生理盐水10ml/kg·bw·d灌胃, MCAO+LFA组和MCAO+HFA组以叶酸溶液4mg/kg·bw·d和12mg/kg·bw·d灌胃,干预28d后制备MCAO模型,进行神经功能评分和脑组织含水量检测,氯化四氮唑(TTC)染色检测脑梗死体积百分比,测定血清叶酸和同型半胱氨酸(Hcy)含量变化,TUNEL法检测神经细胞凋亡率,HE染色观察脑组织病理改变,Y迷宫检测各组学习记忆能力,免疫荧光双标记检测脑组织内源性NSCs增殖分化,Western blot测定脑组织β-Tubulin-Ⅲ蛋白表达。原位杂交检测脑组织在梗死后不同时间点Notch1、Hes1/5、Mash1、Ngn1/2基因mRNA表达,Western blot检测梗死侧脑组织Notch1、Hesl/5以及pERK1/2蛋白表达。U0126阻断ERK通路后,再次检测内源性NSCs增殖和pERKl/2蛋白表达。2.体外培养新生SD大鼠NSCs,细胞分为正常对照组(Control),缺氧损伤组(Hypoxia),缺氧叶酸低剂量组(Hypoxia+FA-L),缺氧叶酸高剂量组(Hypoxia+FA-H)和缺氧叶酸缺乏组(Hypoxia+FA-D)。各组叶酸终浓度分别为4μg/ml、44μg/ml和0.65μg/ml,在1%02中缺氧损伤8h。MTT法检测细胞活力,增殖第6d以免疫组化双标记法检测NSCs增殖,流式细胞仪检测细胞凋亡率,分化第6d以Western blot检测GFAP和β-Tubulin-Ⅲ蛋白。实时定量PCR检测细胞增殖和分化期Notch1、Hesl/5、Mash1、Ngnl/2以及ERK1/2基因mRNA表达,Western blot检测Notch1、Hes1/5和pERK1/2蛋白表达。U0126阻断ERK通路后检测NSCs增殖和pERK1/2蛋白表达。凋亡基因芯片检测Hypoxia和Hypoxia+FA-H组NSCs凋亡相关基因表达差异,Western blot检测各组NSCs的细胞色素C (Cyt C)、Bcl-2、Bax、Cleaved Caspase-3/9蛋白表达,检测各组培养基Hcy浓度。结果1.叶酸对脑梗死大鼠内源性NSCs和体外缺氧NSCs增殖分化的影响:叶酸补充可升高大鼠血清叶酸浓度,降低其血浆Hcy水平,叶酸干预组大鼠神经功能损伤程度和脑梗死体积小于MCAO组,学习记忆能力高于MCAO组,MCAO+HFA组大鼠脑组织含水量和神经细胞凋亡率低于MCAO(P<0.05)。各组大鼠内源性NSCs增殖能力在脑梗死后7d达到高峰,MCAO+HFA组大鼠脑组织BrdU+Nestin+细胞数量高于其他各组(P<0.05)。各组大鼠脑组织BrdU+GFAP+细胞和BrdU+NeuN+细胞数量在脑梗死后14d达到高峰,MCAO+HFA组高于其他各组(P<0.05),同时叶酸干预组脑组织β-Tubulin-Ⅲ蛋白表达高于MCAO组(P<0.05)。体外实验中,缺氧损伤后,两叶酸添加组细胞活力高于Hypoxia组,Hypoxia+FA-D组细胞活力低于Hypoxia组(P<0.05)。增殖第6d,两叶酸添加组BrdU+estin+细胞率高于Hypoxia组,且Hypoxia+FA-H组高于Hypoxia+FA-L组;而Hypoxia+FA-D组BrdU+Nestin+细胞率则低于Hypoxia组(P<0.05)。分化第6d,Hypoxia+FA-H组GFAP蛋白表达高于Hypoxia组,(3-tubulin-III蛋白表达低于Hypoxia组,Hypoxia+FA-D组该两种蛋白表达均低于其他各组(P<0.05)。2.叶酸对脑梗死大鼠脑组织和体外缺氧NSCs Notch和ERK信号通路相关基因表达的影响:大鼠脑梗死后7d, MCAO+HFA组Notch1、Hesl/5 mRNA和蛋白表达高于其他各组,两叶酸干预组Mashl mRNA表达低于MCAO组(P<0.05),MCAO+HFA组Ngnl/2 mRNA表达强度低于其他各组(P<0.05)。体外实验中,无论增殖期还是分化期,Notch1、Hesl/5mRNA和蛋白在Hypoxia+FA-H组表达量最高,在Hypoxia+FA-D组表达量最低(P<0.05)。Mash1、Ngn1/2 mRNA在Hypoxia+FA-H组表达量最低(P<0.05)。大鼠脑梗死后7d,MCAO+LFA组和MCAO+HFA组pERK1/2蛋白表达高于MCAO组(P<0.05)。U0126阻断ERK通路后,可以降低叶酸干预组pERK1/2蛋白的高表达和脑组织BrdU+Nestin+细胞数(P<0.05)。体外实验中,Hypoxia+FA-L组和Hypoxia+FA-H组在增殖期pERK1/2蛋白表达高于Hypoxia组和Hypoxia+FA-D组(P<0.05)。U0126阻断ERK通路可降低叶酸干预组的细胞活力和BrdU+Nestin+细胞率,同时抑制pERK1/2蛋白表达(P<0.05)。3.叶酸对体外缺氧NSCs凋亡的影响和线粒体凋亡途径的作用:增殖第6d,Hypoxia组细胞凋亡率高于Control组、Hypoxia+FA-L组和Hypoxia+FA-H组,而低于Hypoxia+FA-D组(P<0.05)。Hypoxia+FA-H组与Hypoxia组相比,表达上调的基因有bcl2和Hprtl,下调的基因有p53、apaf-1、bax以及caspase-3/9o Western blot检测结果显示Cyt C、Bax、Cleaved Caspase-3和Cleaved Caspase-9蛋白表达量在两叶酸添加组均低于Hypoxia组,Hypoxia+FA-D组高于Hypoxia组;Bcl-2蛋白在两叶酸添加组均高于Hypoxia组,Hypoxia+FA-D组低于Hypoxia组(P<0.05)。结论叶酸对脑梗死大鼠的神经保护作用与促进其内源性NSCs增殖有关,体外实验证明叶酸对缺氧损伤NSCs的增殖和向星形胶质细胞细胞分化有促进作用,对体外缺氧NSCs向神经元分化有一定抑制作用,叶酸缺乏则抑制缺血缺氧环境中NSCs的增殖分化。Notch信号通路和ERK信号通路在叶酸对NSCs增殖分化影响中起重要作用,而叶酸对体外缺氧NSCs凋亡的抑制作用与线粒体途径有关。
中文摘要第4-7页
Abstract第7-10页
缩略语/符号说明第14-16页
前言第16-20页
    研究现状、成果第16-19页
    研究目的、方法第19-20页
一、叶酸对脑梗死大鼠内源性NSCs增殖分化的作用第20-55页
    1.1 对象与方法第20-34页
        1.1.1 实验材料第20-25页
        1.1.2 方法第25-33页
        1.1.3 统计分析第33-34页
    1.2 结果第34-47页
        1.2.1 叶酸对脑梗死大鼠血清叶酸含量的影响第34页
        1.2.2 叶酸对脑梗死大鼠血浆Hcy水平的影响第34-35页
        1.2.3 叶酸对脑梗死大鼠神经功能的影响第35-36页
        1.2.4 叶酸对脑梗死大鼠认知能力的影响第36-37页
        1.2.5 叶酸对脑梗死大鼠脑组织含水量的影响第37页
        1.2.6 叶酸对脑梗死大鼠脑梗死体积的影响第37-38页
        1.2.7 叶酸对脑梗死大鼠脑组织形态的影响第38-39页
        1.2.8 叶酸对脑梗死大鼠神经细胞凋亡的影响第39-40页
        1.2.9 叶酸对脑梗死大鼠内源性NSCs增殖的影响第40-42页
        1.2.10 叶酸对脑梗死大鼠内源性NSCs分化的影响第42-47页
    1.3 讨论第47-54页
        1.3.1 叶酸对脑梗死大鼠的神经保护作用第47-48页
        1.3.2 神经干细胞增殖分化的鉴定第48-50页
        1.3.3 神经干细胞与局灶性脑梗死第50-51页
        1.3.4 叶酸对脑梗死大鼠内源性NSCs增殖分化的影响第51-53页
        1.3.5 叶酸对脑梗死大鼠神经细胞凋亡的影响第53-54页
    1.4 小结第54-55页
二、叶酸对脑梗死大鼠内源性NSCs增殖分化作用机制研究第55-85页
    2.1 对象与方法第55-59页
        2.1.1 实验材料第55-56页
        2.1.2 方法第56-58页
        2.1.3 统计分析第58-59页
    2.2 结果第59-78页
        2.2.1 叶酸对脑梗死大鼠脑组织Notch信号通路相关基因mRNA表达的影响第59-71页
        2.2.2 叶酸对脑梗死大鼠脑组织Notch通路相关蛋白表达的影响第71-74页
        2.2.3 叶酸通过ERK通路对脑梗死大鼠NSCs增殖的影响第74-78页
    2.3 讨论第78-84页
        2.3.1 Notch信号通路在叶酸影响脑梗死大鼠NSCs增殖分化中的作用第78-82页
        2.3.2 ERK信号通路在叶酸影响脑梗死大鼠NSCs增殖中的作用第82-84页
    2.4 小结第84-85页
三、叶酸对体外缺氧NSCs增殖分化和凋亡的作用第85-102页
    3.1 对象与方法第85-90页
        3.1.1 实验材料第85-87页
        3.1.2 方法第87-89页
        3.1.3 统计分析第89-90页
    3.2 结果第90-97页
        3.2.1 NSCs培养鉴定第90-91页
        3.2.2 叶酸对缺氧损伤NSCs形态的影响第91页
        3.2.3 叶酸对缺氧损伤NSCs增殖的影响第91-94页
        3.2.4 叶酸对缺氧损伤NSCs分化的影响第94-95页
        3.2.5 叶酸对缺氧损伤NSCs凋亡的影响第95-97页
    3.3 讨论第97-101页
        3.3.1 缺氧损伤模型的建立第97-98页
        3.3.2 叶酸对缺氧NSCs增殖分化的影响第98-100页
        3.3.3 叶酸对缺氧NSCs凋亡的影响第100-101页
    3.4 小结第101-102页
四、叶酸对体外缺氧NSCs增殖分化和凋亡调控机制研究第102-137页
    4.1 对象与方法第102-112页
        4.1.1 实验材料第102-103页
        4.1.2 方法第103-111页
        4.1.3 统计分析第111-112页
    4.2 结果第112-129页
        4.2.1 叶酸对缺氧NSCs Notch通路相关基因mRNA表达的影响第112-116页
        4.2.2 叶酸对缺氧NSCs Notch通路相关蛋白表达的影响第116-119页
        4.2.3 叶酸通过ERK通路对缺氧NSCs增殖的影响第119-122页
        4.2.4 叶酸对缺氧NSCs凋亡影响的作用机制第122-129页
    4.3 讨论第129-135页
        4.3.1 Notch信号通路在叶酸对缺氧损伤NSCs增殖分化影响中的作用第129-131页
        4.3.2 ERK信号通路在叶酸对缺氧损伤NSCs增殖影响中的作用第131页
        4.3.3 线粒体途径在叶酸对缺氧损伤NSCs凋亡影响中的作用第131-135页
    4.4 小结第135-137页
全文结论第137-138页
论文创新点第138-139页
参考文献第139-151页
发表论文和参加科研情况说明第151-153页
综述第153-179页
    参考文献第172-179页
致谢第179页
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