单分散、高饱和磁化强度超顺磁性微球的可控制备与生物医学应用

超顺磁性论文 共沉淀论文 纳米Fe_3O_4颗粒,磁流体论文 磁性复合微球,细乳液聚合论文 磁分级论
论文详情
纳米超顺磁性微球已在分离纯化、免疫检测、影像诊断、靶向给药与治疗等领域得到广泛应用。对于不同的生物医学应用,对磁性微球的表面与微观结构、物理化学性质以及微球的粒径大小与分布的要求均有较大差别。目前,超顺磁性复合微球的制备技术正朝着如何制备粒径更小(纳米尺度)、更均匀(单分散)、磁性物质含量更高(高饱和磁化强度)、表面与微观结构可根据应用需求进行设计与调控的方向发展。本论文就是针对上述发展趋势,提出创新的制备方法以及通过对其机理的深入研究,在纳米尺度实现集尺寸均一、磁性物质含量高等性能于一身的磁性功能复合微球的可控制备,并对其应用研究进行初探。本论文主要制备了粒径单分散、高饱和磁化强度聚合物磁性微球和高饱和磁化强度氧化硅磁微球,并将上述两类微球应用于核酸纯化与免疫层析检测研究。主要研究结果如下:(1)通过对传统细乳液聚合法制备磁性复合微球存在问题的分析,提出了一步细乳液法联合磁分级方法实现了高饱和磁化强度磁性微球的可控制备,得到的纳米磁性微球平均Fe3O4含量为73wt%以上,通过精密磁场分选,可得到数组单分散粒径的磁性复合微球。(2)提出了基于细乳液复合液滴成核的乳液聚合制备方法(双细乳液法),实现了粒径单分散、高饱和磁化强度磁性微球的可控制备。提出该方法的关键控制步骤是含有“纳米Fe3O4颗粒/辛烷”复合液滴的细乳液制备。通过对双细乳液聚合方法机理的研究,阐释影响磁性微球各项性能以及微观结构的重要因素,并发现Fe3+对聚合过程有阻聚作用。另外,磁细乳中辛烷以及交联共聚单体DVB对磁性复合微球形貌有影响,当磁细乳中辛烷含量较多时,得到的微球出现非常明显的非对称形貌,随着DVB用量的增加,微球微观偏析结构逐步改善。(3)在明晰双细乳制备方法机理的基础上,以核壳结构磁性复合微球为核,采用丙烯酸为共聚单体,制备表面具有羧基功能基团的磁性复合微球,羧基含量从0.27mmol/g~0.5mmol/g。(4)通过分析异相成核与生长对氧化硅磁微球形貌影响规律,提出了以磁性颗粒聚集体和聚合物磁微球为核,再结合改进溶胶-凝胶方法,可控制备了高饱和磁化强度、粒径单分散的多组分复合氧化硅磁微球。以Fe3O4/PS聚合物磁性微球为例,制备得到的氧化硅磁性微球在2nm氧化硅壳层厚度时,微球中纳米Fe3O4颗粒含量达70wt%。并通过研究改进的溶胶-凝胶反应的工艺条件,实现对氧化硅表面结构的调控。(5)在外磁场作用下,以Fe3O4/PS聚合物磁性微球为核可以制备得到稳定的氧化硅磁性链状结构,链状结构长度可以通过磁场强度进行调节;在磁场的调制作用下,得到的磁性微球可以形成超顺磁性的胶体光子晶体。(6)以本论文制备的氧化硅磁性微球为载体,研究氧化硅表面微观结构与核酸提取的相互关系,表明所合成的氧化硅微球可有效应用于核酸的提取;以表面功能化聚合物磁性微球为信号标记物,以hCG为模式待检分子,微球可有效地应用于定量磁性免疫层析检测系统。
摘要第6-8页
Abstract第8-9页
第一篇 绪论第16-47页
    1.1 磁性微球的定义、分类第16-17页
    1.2 磁性微球的种类与制备方法进展第17-31页
        1.2.1 高分子复合磁微球第17-27页
            1.2.1.1 乳液聚合与无皂乳液聚合第18-21页
            1.2.1.2 微乳液聚合第21-22页
            1.2.1.3 悬浮聚合第22-23页
            1.2.1.4 分散聚合第23-24页
            1.2.1.5 种子聚合第24-25页
            1.2.1.6 细乳液聚合第25-27页
        1.2.2 大分子复合微球第27页
            1.2.2.1 大分子组装微球第27页
            1.2.2.2 大分子修饰磁性颗粒表面第27页
        1.2.3 无机磁微球第27-31页
            1.2.3.1 无机氧化硅磁性微球制备技术进展第28-31页
    1.3 磁性微球的生物医学应用第31-36页
        1.3.1 生物分离第31-32页
            1.3.1.1 细胞分离第31-32页
            1.3.1.2 蛋白分离纯化第32页
            1.3.1.3 核酸提取第32页
        1.3.2 体外检测与诊断第32-35页
            1.3.2.1 磁性微球为载体的免疫诊断第33页
            1.3.2.2 磁性微球为载体的核酸扩增病毒检测第33-34页
            1.3.2.3 生物传感器第34-35页
        1.3.3 靶向给药第35-36页
    1.4 体外生物医学应用对磁微球的要求第36-39页
        1.4.1 粒径与粒径分布第36-37页
        1.4.2 磁场响应程度第37-38页
        1.4.3 超顺磁性第38-39页
    1.5 本论文的目的、意义及研究内容、创新性第39-42页
        1.5.1 目的与意义第39-40页
        1.5.2 创新性:通过创新的合成路线使重要的三大特性同时实现第40页
        1.5.3 研究内容第40-42页
            1.5.3.1 粒径单分散、高饱和磁化强度聚合物磁性微球的制备第40-41页
            1.5.3.2 高饱和磁化强度硅磁微球的制备第41页
            1.5.3.3 磁微球与生物分子(核酸、蛋白)的相互作用以及在体外核酸分离与免疫诊断应用第41-42页
    参考文献第42-47页
第二篇 单分散、高饱和磁化强度聚合物磁性复合微球的制备第47-107页
    第一章:前言第47-55页
        1.1 几种重要制备方法的比较与分析第47-48页
        1.2 细乳液聚合方法中的基本理论与各重要组成的作用第48-51页
            1.2.1 超疏水剂(Ultra-hydrophobe)与细乳液的稳定性第49页
            1.2.2 剪切均质的影响第49-50页
            1.2.3 细乳液的特征第50-51页
        1.3 本文的研究思路第51-55页
            1.3.1 通过磁分级后处理过程,对微球大小进行分选第51-52页
            1.3.2 基于双细乳的乳液聚合方法第52-55页
    第二章 试验部分第55-65页
        2.1 试验第55-62页
            2.1.1 试剂与仪器第55-56页
            2.1.2 纳米Fe_3O_4 颗粒与辛烷磁流体的制备第56-58页
            2.1.3 一步细乳液聚合制备磁性复合微球第58-59页
            2.1.4 基于双细乳的种子乳液聚合法制备磁性复合微球第59-62页
        2.2 表征第62-65页
            2.2.1 表征仪器第62-63页
            2.2.2 制样方法与表征操作与条件第63-65页
                2.2.2.1 纳米Fe_3O_4 颗粒与磁性复合微球的粒径及微观结构表征第63页
                2.2.2.2 磁性复合微球的表面形貌表征第63-64页
                2.2.2.3 红外光谱分析第64页
                2.2.2.4 热失重分析第64页
                2.2.2.5 Zeta 电位分析第64页
                2.2.2.6 磁性复合微球羧基含量的表征第64页
                2.2.2.7 纳米Fe_3O_4 颗粒的晶体结构分析第64页
                2.2.2.8 磁学性能表征第64-65页
    第三章 结果与讨论(一)——高悬浮稳定性磁流体的制备第65-72页
        3.1 磁流体的制备第65-72页
            3.1.1 磁流体形成机制假设第65-68页
            3.1.2 磁流体形成机制的证明第68-70页
            3.1.3 油酸分子与纳米Fe_3O_4 颗粒吸附构型研究第70-72页
    第四章 结果与讨论(二)——一步细乳液聚合法制备磁性复合微球第72-77页
        4.1 磁场分选对磁性微球粒径的调控影响第72-74页
        4.2 磁性复合微球粒径大小与磁性物质含量的关系研究第74-77页
    第五章 结果与讨论(三)——双细乳法制备单分散、高饱和磁化强度磁性复合微球及其反应机理研究第77-95页
        5.1 双细乳法制备单分散、高饱和磁化强度纳米磁性复合微球第77-90页
            5.1.1 一步细乳液聚合法与双细乳液聚合法制备磁性复合微球的对比分析第77-78页
            5.1.2 表面活性剂浓度对微球粒径的影响第78-80页
            5.1.3 超声功率对磁细乳制备的影响第80-81页
            5.1.4 磁流体的浓度与磁微球各项性质的影响研究第81-84页
            5.1.5 磁流体的分散状况对磁微球的影响研究第84-85页
            5.1.6 St 单体液滴的大小、均匀程度等对磁微球的影响研究第85-90页
        5.2 FeCl_3 对聚合的阻聚作用以及温度对聚合反应的影响研究第90-95页
            5.2.1 反应温度对磁性复合微球制备的影响研究第90-92页
            5.2.2 FeCl_3 对聚合的阻聚作用研究第92-95页
    第六章 结果与讨论(四)——双细乳法制备核壳结构磁性复合微球以及表面功能化第95-104页
        6.1 表面功能化核壳复合微球的制备第95-101页
            6.1.1 核壳结构复合微球的制备第95-98页
            6.1.2 丙烯酸添加方式对聚合反应的影响第98-100页
            6.1.3 种子双细乳法制备羧基复合微球第100-101页
        6.2 磁细乳中辛烷对磁性复合微球形貌的影响第101-104页
    参考文献第104-107页
第三篇 粒径单分散、高饱和磁化强度氧化硅磁微球的制备研究第107-155页
    第一章 前言第107-111页
        1.1 几种重要制备方法的比较与分析第107-108页
        1.2 本文的研究思路第108-111页
            1.2.1 以Fe_3O_4/PS 聚合物磁性微球为核,联合溶胶-凝胶方法制备高饱和磁化强度、单分散粒径氧化硅磁性微球第108-109页
            1.2.2 以磁性颗粒聚集体为核,联合溶胶-凝胶方法制备高饱和磁化强度氧化硅磁性微球第109-111页
    第二章 实验部分第111-119页
        2.1 试验第111-116页
            2.1.1 药品与仪器第111-112页
            2.1.2 聚合物磁微球核的表面修饰与氧化硅磁微球的制备第112页
            2.1.3 纳米Fe_3O_4 颗粒球状聚集体与氧化硅磁微球的制备第112-116页
                2.1.3.1 阴离子表面活性剂组装球状磁性聚集体与氧化硅磁微球的制备第112-115页
                2.1.3.2 非离子表面活性剂组装球状磁性聚集体与氧化硅微球的制备第115-116页
        2.2 表征第116-119页
            2.2.1 表征仪器第116-117页
            2.2.2 制样方法与表征操作与条件第117-119页
                2.2.2.1 氧化硅磁性复合微球的粒径及微观结构表征第117页
                2.2.2.2 磁性复合微球的表面形貌表征第117页
                2.2.2.3 热失重分析第117-118页
                2.2.2.4 Zeta 电位分析第118页
                2.2.2.5 磁性复合微球氨基含量的表征第118页
                2.2.2.6 纳米Fe_3O_4 颗粒的晶体结构分析第118页
                2.2.2.7 磁学性能表征第118页
                2.2.2.8 氧化硅磁性微球的比表面积、孔容、孔径分布分析第118-119页
    第三章 结果与讨论 (一)——单分散、高饱和磁化强度氧化硅磁性微球制备第119-130页
        3.1 阐述Sol-Gel 制备方法中关键因素第119-122页
            3.1.1 比表面积、孔容、孔径的调控第119-121页
            3.1.2 表面硅羟基数量的调控第121-122页
        3.2 不同磁性核对氧化硅磁性复合微球制备的影响第122-130页
            3.2.1 以聚合物磁微球为磁核结合改进的溶胶凝胶法制备氧化硅磁微球第122-124页
            3.2.2 以纳米Fe_3O_4 颗粒球状聚集体为磁核结合改进的溶胶凝胶法制备氧化硅磁性微球第124-130页
    第四章 结果与讨论(二)——氧化硅壳层包覆影响因素研究第130-145页
        4.1 催化方式的对氧化硅磁性微球的影响研究第130-134页
            4.1.1 表面微观形貌分析第131-133页
            4.1.2 比表面积、孔容、孔径分布分析第133-134页
            4.1.3 表面硅羟基密度分析第134页
        4.2 溶剂的影响研究第134-136页
        4.3 醇/水比对氧化硅磁微球制备的影响研究第136页
        4.4 具有不同壳层厚度的硅磁微球的微观性能研究第136-138页
            4.4.1 硅磁微球的比表面积、孔容、孔径分布分析第136-137页
            4.4.2 表面硅羟基密度分析第137-138页
        4.5 前驱体种类对氧化硅磁性微球制备及性能的影响研究第138-142页
            4.5.1 MTMS 对微球表面性质的影响第138-140页
                4.5.1.1 比表面积、孔容、孔径分布分析第138-139页
                4.5.1.2 表面硅羟基密度分析第139-140页
            4.5.2 APS 对微球表面性质的影响第140-142页
        4.6 反应时间的影响研究第142-143页
        4.7 反应温度的影响研究第143-145页
    第五章 结果与讨论(三)——氧化硅磁性复合微球在外磁场作用下的组装行为研究第145-152页
        5.1 在外磁场作用下制备磁性氧化硅链状结构第145-146页
        5.2 磁致可调制光子晶体的初探第146-152页
    参考文献第152-155页
第四篇 磁性微球在核酸分离与免疫检测中的应用初探第155-185页
    第一章 前言第155-159页
        1.1 氧化硅磁微球用于核酸提取第155-156页
            1.1.1 氧化硅吸附核酸原理第155-156页
                1.1.1.1 静电作用第156页
                1.1.1.2 疏水作用第156页
                1.1.1.3 氢键作用第156页
        1.2 磁性微球用免疫层析检测技术第156-158页
        1.3 本文的研究目标与思路第158-159页
            1.3.1 氧化硅磁微球用于核酸提取应用研究第158页
            1.3.2 功能聚合物微球用于免疫层析检测第158-159页
    第二章 实验部分第159-167页
        2.1 试验第159-164页
            2.1.1 药品与仪器第159-160页
            2.1.2 氧化硅磁微球用于核酸提取实验第160-162页
                2.1.2.1 核酸溶液配制第160-161页
                2.1.2.2 DNA 提取操作步骤第161-162页
            2.1.3 羧基磁微球用于免疫层析检测实验第162-164页
                2.1.3.1 免疫磁珠的制备第162-163页
                2.1.3.2 免疫层析试纸的构建第163-164页
        2.2 表征第164-167页
            2.2.1 表征仪器第164-165页
            2.2.2 制样方法与表征操作与条件第165-167页
                2.2.2.1 核酸纯度与浓度检测第165页
                2.2.2.2 琼脂糖凝胶电泳第165页
                2.2.2.3 BCA 试剂盒检测蛋白含量第165页
                2.2.2.4 免疫磁珠粒径表征第165-166页
                2.2.2.5 免疫层析磁信号定量检测第166-167页
    第三章 结果与讨论 (一)——氧化硅磁微球用于核酸提取应用研究第167-176页
        3.1 氧化硅磁微球表面微观结构和特性与核酸分子的相互作用研究第167-169页
            3.1.1 氧化硅磁微球比表面积对提取DNA 分子的影响第167页
            3.1.2 氧化硅磁微球孔容对提取DNA 的影响第167-168页
            3.1.3 氧化硅磁微球孔径对提取DNA 的影响第168-169页
            3.1.4 氧化硅磁微球表面硅羟基密度对提取DNA 的影响第169页
        3.2 氧化硅磁性微球对质粒DNA 分子的提取应用研究第169-173页
            3.2.1 盐酸胍浓度对质粒DNA 提取得率的影响第169-170页
            3.2.2 pH 值对DNA 提取效率的影响第170-171页
            3.2.3 离子强度对质粒DNA 提取效率的影响第171-172页
            3.2.4 磁珠用量对DN A 提取效率的影响第172-173页
            3.2.5 不同方法提取质粒DNA 比较第173页
        3.3 氧化硅磁性微球对全血基因组DNA 提取应用研究第173-176页
            3.3.1 磁珠用量对提取DNA 的影响第173-174页
            3.3.2 盐酸胍离盐液浓度对提取效果的影响第174-176页
    第四章 结果与讨论(二)——羧基磁微球用于免疫层析检测第176-181页
        4.1 以hCG 为模式的磁性免疫层析定性检测第176-178页
        4.2 以hCG 为模式的磁性免疫层析定量检测第178-181页
    参考文献第181-185页
第五篇 全文总结第185-187页
攻读博士期间发表论文与专利第187-190页
致谢第190-191页
论文购买
论文编号ABS3650601,这篇论文共191页
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